im钱包安卓版下载
数字资产服务平台

im钱包安卓版下载是全球著名的数字资产交易平台之一,主要面向全球用户提供比特币、莱特币、以太币等数字资产的币币和衍生品交易服务。

比特派钱包苹果版下载链接|白色念珠菌

时间:2024-03-12 19:17:32

白色念珠菌 - 维基百科,自由的百科全书

白色念珠菌 - 维基百科,自由的百科全书

跳转到内容

主菜单

主菜单

移至侧栏

隐藏

导航

首页分类索引特色内容新闻动态最近更改随机条目资助维基百科

帮助

帮助维基社群方针与指引互助客栈知识问答字词转换IRC即时聊天联络我们关于维基百科

搜索

搜索

创建账号

登录

个人工具

创建账号 登录

未登录编辑者的页面 了解详情

贡献讨论

目录

移至侧栏

隐藏

序言

1名稱與分類

开关名稱與分類子章节

1.1種系發生

2基因组

开关基因组子章节

2.1研究工具

3型態

开关型態子章节

3.1酵母菌型─菌絲型轉換

3.2高頻率轉換

3.2.1白色型─混濁型轉換

3.2.2其他轉換

4生殖

5致病機制

开关致病機制子章节

5.1生物薄膜

6感染

开关感染子章节

6.1淺表與局部感染

6.1.1口腔感染

6.1.2食道感染

6.1.3陰道感染

6.1.4其他

6.2全身性感染

7註腳

8參考資料

9外部連結

开关目录

白色念珠菌

41种语言

العربيةمصرىБългарскиBanjarBosanskiCatalàCebuanoکوردیČeštinaDanskDeutschΕλληνικάEnglishEsperantoEspañolEestiEuskaraفارسیSuomiFrançaisGaeilgeGalegoעבריתMagyarBahasa IndonesiaItalianoNederlandsNorsk nynorskNorsk bokmålPolskiPortuguêsРусскийSimple EnglishSlovenščinaСрпски / srpskiSvenskaไทยTürkçeУкраїнськаTiếng ViệtWinaray

编辑链接

条目讨论

不转换

不转换简体繁體大陆简体香港繁體澳門繁體大马简体新加坡简体臺灣正體

阅读编辑查看历史

工具

工具

移至侧栏

隐藏

操作

阅读编辑查看历史

常规

链入页面相关更改上传文件特殊页面固定链接页面信息引用本页获取短URL下载二维码维基数据项目

打印/导出

下载为PDF打印页面

在其他项目中

维基共享资源维基物种

维基百科,自由的百科全书

白色念珠菌

生長於沙鮑弱氏瓊脂的白色念珠菌

科学分类

界:

真菌界 Fungi

门:

子囊菌门 Ascomycota

纲:

酵母菌綱 Saccharomycetes

目:

酵母菌目 Saccharomycetales

科:

酵母菌科 Saccharomycetaceae

属:

念珠菌屬 Candida

种:

白色念珠菌 C. albicans

二名法

Candida albicans(C.P.Robin(英语:Charles-Philippe Robin)) Berkhout(英语:Christine Marie Berkhout) (1923)

異名

Candida stellatoidea[1]

Monilia albicans [2][3]

Oidium albicans[4]

白色念珠菌(學名:Candida albicans)是一種能造成伺機性感染的酵母菌[5],常見於人類消化道與泌尿生殖道的菌群,約有四成至六成健康成人的口腔與消化道中都有白色念珠菌[6][7],平時與人體行片利共生,但可在人體免疫缺陷[8]時過度生長[7][9]而造成念珠菌症[7][9],是念珠菌屬最常見的致病菌種,與熱帶念珠菌(英语:Candida tropicalis)、近平滑念珠菌(英语:Candida parapsilosis)、光滑念珠菌(英语:Candida glabrata)和克魯斯念珠菌(英语:Candida krusei)合計造成了95%的念珠菌症感染[9][10][11],其中白色念珠菌便占了66%,但此比例正持續下降中[12]。白色念珠菌造成的感染有口腔、食道與陰道等處的局部粘膜感染,也有嚴重的全身性感染,有研究指出後者的致死率高達40%[13],另有一項統計顯示白色念珠菌造成的院內感染在美国每年造成2,800至11,200人死亡[14]。白色念珠菌也是最常在醫療器材上形成生物薄膜的真菌,生物薄膜中的白色念珠菌抗性比游離成長者還高,可隨著醫療器材入侵血液而造成嚴重感染[15][16]。

白色念珠菌多以雙倍體的型式存在,不同於多數真菌為單倍體,但近年漸有研究發現少數情況下白色念珠菌也可形成單倍體與四倍體[17],其雙倍體的基因組長度為29Mb[18],另外其基因組中,CUG密碼子對應的胺基酸為絲胺酸,與絕大多數生物中對應的白胺酸不同,是相當罕見的遺傳密碼例外情形。白色念珠菌常被當作真菌感染研究的模式生物,容易在實驗室中培養,並可以改變培養基成分的方式控制其生長型態[19]。白色念珠菌屬於雙態性真菌,可以酵母型或菌絲型兩種方式生長[20],除此之外還可在多種不同的形態表型間互相轉換,如白色型-混濁型轉換可以改變菌落的外形與基因表現,進而促進準性生殖[21]。

名稱與分類[编辑]

白色念珠菌的學名Candida albicans為一同義反覆,其中屬名Candida來自拉丁文的candidus,意指白色,種小名albicans來自拉丁文的albicō,意思亦為白色[22]。早在西元前400年,希波克拉底在其著作《論流行病》(Of the Epidemics)中即提到了鵝口瘡,可能是白色念珠菌感染的最早記載[2][23]。

白色念珠菌的同物異名有多達上百個[2][24],最早於1853年由法國生物學家查爾斯-菲力毗·羅賓(英语:Charles-Philippe Robin)發表描述,命名為Oidium albicans,1890年,德國真菌學家弗里德里希·威廉·措普夫(英语:Friedrich Wilhelm Zopf)調整其分類,改其學名為Monilia albicans(其中Monilia來自拉丁文的monile,意指項鍊[22])。1923年,荷蘭真菌學家克里斯汀·瑪麗·別爾克豪特(英语:Christine Marie Berkhout)發表了新屬念珠菌屬,並將白色念珠菌歸入該屬,改為現名Candida albicans[25]。

種系發生[编辑]

已有許多分子種系發生學的研究以不同數量、種類的基因序列分析念珠菌屬中各物種的親緣關係[11][26][27]。念珠菌屬中,與白色念珠菌關係最近的物種為都柏林念珠菌(英语:Candida dubliniensis)(C. dubliniensis),兩者組成的演化支與熱帶念珠菌(英语:Candida tropicalis)(C. tropicalis)互為姊妹群,而三者組成的演化支又與近平滑念珠菌(英语:Candida parapsilosis)(C. parapsilosis)和长孢洛德酵母(英语:Lodderomyces elongisporus)(Lodderomyces elongisporus)組成的演化支互為姊妹群,以上類群均以雙倍體的形式存在,不同於多數真菌為單倍體,顯示其共祖可能發生了單倍體-雙倍體的轉換。這些雙倍體的類群與其他單倍體的類群(季也蒙念珠菌(英语:Candida guilliermondii)、葡萄牙念珠菌(英语:Candida lusitaniae)與汉逊德巴利酵母(英语:Debaryomyces hansenii))共同組成念珠菌演化支(Candida clade),以上類群均將密碼子CUG編碼為絲胺酸,而不像絕大多數生物將其編碼為白胺酸,顯示念珠菌演化支的共祖可能發生了一次CUG密碼子對應的tRNA重组。念珠菌屬並非單系群[28],同屬念珠菌屬的光滑念珠菌(英语:Candida glabrata)不屬於念珠菌演化支,而是與釀酒酵母等酵母菌關係較近,共同組成酵母菌演化支(Saccharomyces clade),與其他念珠菌的親緣關係較遠[11]。

念珠菌演化支

(雙倍體)

白色念珠菌

都柏林念珠菌(英语:Candida dubliniensis)

熱帶念珠菌(英语:Candida tropicalis)

近平滑念珠菌(英语:Candida parapsilosis)

长孢洛德酵母(英语:Lodderomyces elongisporus)

(單倍體)

季也蒙念珠菌(英语:Candida guilliermondii)

汉逊德巴利酵母(英语:Debaryomyces hansenii)

葡萄牙念珠菌(英语:Candida lusitaniae)

酵母菌演化支

釀酒酵母等酵母屬物種、光滑念珠菌(英语:Candida glabrata)等

基因组[编辑]

掃描電子顯微鏡下的白色念珠菌

单倍体的白色念珠菌的基因组的大小約为15Mb(雙倍體約為29Mb)[29],由8條染色体对组成,二倍體中其中一組染色體分別称为chr1A、chr2A、chr3A、chr4A、chr5A、chr6A、chr7A和chrRA,另一組染色體具有相似的名称,但最后一个字為B,如chr1B、chr2B、...和chrRB。整个基因组包含6198个开放阅读框(ORF),截至2019年2月,这些ORF中仍有70%尚未被鉴定[30]。有研究使用四環素轉錄調控系統控制白色念珠菌各個基因的表現,建構了一個GRACE(基因置换和条件表达)資料庫,研究白色念珠菌基因组中各基因對其生長的必要性,結果顯示其中有567個基因是其生長所必須的[31][32]。研究白色念珠菌最常用的菌株是WO-1和SC5314菌株,WO-1菌株可高频率地在白色型(white)與混濁型(opaque)之间互相轉換,而SC5314菌株是用作基因組参考序列的菌株[33]。白色念珠菌两种常用菌株的基因组已經完成全基因組定序[8],其中SC5314菌株完成于2004年[34],是较早完成测序的真菌(英语:List of sequenced fungi genomes)之一。

白色念珠菌核基因組的一大特色是密碼子CUG對應的胺基酸不像其他生物中為白胺酸,而是絲胺酸,同屬念珠菌演化支的其他物種亦有此現象[11],這種遺傳密碼發生例外的情形在真核生物的细胞核基因组中是相當罕見的,在原核生物中也仅出現在起始密碼子[35][36][37]。此現象可能使白色念珠菌長期處在熱休克反應(英语:Heat shock response)的狀態,有助於提升其對逆境的抗性[38]。有研究分析比較白色念珠菌與釀酒酵母基因中的CUG密碼子,發現白色念珠菌的CUG密碼子(編碼絲胺酸)在釀酒酵母的同源序列中大多是對應編碼絲胺酸與其他親水胺基酸的密碼子,而釀酒酵母的CUG密碼子(編碼白胺酸)在白色念珠菌的同源序列中大多是對應編碼白胺酸與其他疏水胺基酸的密碼子,顯示CUG密碼子功能的改變并未对蛋白质的构象造成太大变化[11]。有研究将白色念珠菌识别CUG密碼子的tRNA导入到釀酒酵母中表現,使其轉譯時隨機將部分CUG密碼子辨認為對應絲胺酸,結果啟動了抗逆境反應,造成酵母維持在二倍體的狀態,且抑制了交配[39]。非標準的遺傳密碼使白色念珠菌蛋白質交互作用的研究難以在模式生物釀酒酵母中進行,對此已有研究團隊開發了白色念珠菌的雙雜合系統[40]。

白色念珠菌的基因组有高度杂合性,有着大量的SNP位点,常因染色体長度多型性(重複序列的長度不一)、相互易位、染色體刪除與個別染色體成為三體等因素,造成染色體數量或結構上的變異,諸如此類核型的改变會导致表型的改变,是這種真菌對不同環境适应的機制之一。随着白色念珠菌基因组資訊的成功解碼,關於這些機制的研究正持續進行中[41][42][43]。

研究工具[编辑]

白色念珠菌是用來研究真菌感染的重要模式生物[44],許多研究團隊開發了白色念珠菌的各種資料庫與其分子生物學研究的工具[8]。2004年,多位研究者合作開發了念珠菌基因組資料庫(Candida Genome Database, CGD),該資料庫是由酵母菌基因組資料庫(英语:Saccharomyces Genome Database)修改而來,許多開發者過去也曾參與酵母菌基因組資料庫的構建[45]。念珠菌基因組資料庫最初提供白色念珠菌SC5314菌株的基因組資訊,以全基因組霰彈槍定序法定序[46]。後來也陸續加入白色念珠菌的其他菌株與念珠菌屬的其他物種[45]。

對白色念珠菌進行基因轉殖後,常用的選擇性標記包括CaNAT1(抗諾爾絲菌素(英语:nourseothricin))、MPAr 與IMH3r(抗黴酚酸)等,也有使用營養缺陷型(英语:Auxotrophy)者,例如URA3基因的產物為乳清酸核苷-5'-磷酸脱羧酶,是合成單磷酸尿苷所需的酵素,為白色念珠菌生長所必須,因此URA3營養缺陷型的突變株只有在成功轉殖帶有URA3的質粒後才能在不含尿嘧啶的特殊培養基中生長,URA3因而可作為基因轉殖後的選擇性標記,但許多研究顯示轉殖的URA3從質粒整合進染色體上的位點不同,會使其表現量不同而影響白色念珠菌的致病能力,而可能造成研究中判斷轉殖基因功能的困難[47],為此已有研究團隊開發組胺酸(HIS1)、白胺酸(LEU2)與精胺酸(ARG4)營養缺陷型的菌株與相應質粒,這些基因的轉殖不會影響白色念珠菌的致病能力,以避免使用基因轉殖研究特定基因對致病能力影響時,對研究結果造成干擾[48]。

以質粒進行基因轉殖時,常用於釀酒酵母的質粒在白色念珠菌中多有在染色體外不穩定或基因表達效率低下的問題,有研究團隊開發了適用於白色念珠菌基因轉殖的CIp10(Candida integrating plasmid 10)質粒,以核糖體蛋白RP10[註 1]基因為整合進染色體中的同源序列,並帶有用作選擇性標記的URA3基因[50],因其整合進染色體的位置固定,可避免URA3表現量因整合位點不同而有異,進而影響致病能力[48]。CIp10質粒可以高效率的轉殖進白色念珠菌中,並有多個研究團隊對其進行微調,設計出各種衍生的質粒[51][52]。

型態[编辑]

白色念珠菌的菌落,下方為平滑型(smooth),上方則為皺紋型(wrinkled)

白色念珠菌有許多不同的形態表型,除了作為雙態性真菌,可以在酵母菌型態與菌絲型態間轉換之外,還可以進行通稱為「高頻率轉換」(high-frequency switching)之多種其他表型間的轉換,其中被研究最多的一種轉換則是某些菌株白色型-混濁型間的轉換[53],另外還有許多其他不同的轉換系統,例如SC5314菌株可在七種表型間互相轉換[54][55]。酵母菌型-菌絲型轉換的過程相當快速,且通常整個菌落的所有細胞都會一起轉換;高頻率轉換則可能只在菌落中的部分細胞中發生,且經轉換後的細胞通常仍能進行酵母菌型-菌絲型轉換。這些轉換均為可逆,且常受到二氧化碳濃度、氧氣濃度、培養基種類與溫度等環境因子的影響[56]。

酵母菌型─菌絲型轉換[编辑]

白色念珠菌為雙態性真菌,可以酵母菌或菌絲的型式生長,其中酵母菌型生長時可進行出芽生殖,有時出芽產生的子細胞沒有立即脫離,而形成類似菌絲的絲狀外觀,稱為假菌絲(pseudohypha)[57]。白色念珠菌在實驗室常用的標準培養液生長時通常呈酵母菌型,呈卵圓形,長約6微米[20],不過溫度、二氧化碳濃度、養分與酸鹼值的些許改變便可能使其轉換成菌絲型[58][59],在模擬人體生理環境的培養基中生長時亦呈菌絲型。在適合其生長的環境下,白色念珠菌菌絲萌發時直徑約為2.6微米,成熟菌絲直徑則約為3.4微米[20]。兩種型態在白色念珠菌感染人體時各有功能,酵母菌型較適合在血液中散播,菌絲型則有助於穿透組織、在器官中著生、躲避巨噬細胞的攻擊、以及在醫療器材上形成生物薄膜[57][60][61],這種型態轉換與其致病力密切相關,不過仍有研究指出有無法進行此轉換的菌株亦可進行感染。以小分子藥物抑制白色念珠菌的酵母菌型─菌絲型轉換可能有助於抑制其感染。[62][63]

另外白色念珠菌還在環境條件惡劣時,可以形成對逆境抗性較高的厚垣孢子。厚垣孢子多著生於從菌絲分枝出去之瓶狀突起的端點[64]。

白色念珠菌(酵母菌型,正進行出芽生殖)白色念珠菌(酵母菌型,形成假菌絲)白色念珠菌(菌絲型)

高頻率轉換[编辑]

上方為白色型的白色念珠菌,細胞呈圓形;下方則為混濁型,細胞形狀較長。比例尺為5微米

除了酵母菌型-菌絲型轉換外,白色念珠菌亦可進行高頻率轉換(high-frequency switching),在多種表型間相互轉換,這種轉換常是自然發生,並非由特定環境因子調控,且只發生在菌落中的部分細胞[56]。高頻率轉換最早於1985年由美國生物學家大衛·索爾(英语:David R. Soll)的團隊在SC5314菌株中發現,這種菌株可以在平滑(smooth)[註 2]、星狀(star)、不規則皺紋狀(irregular wrinkle)、環狀(ring)、點狀(stipple)、帽狀(hat)與絨毛狀(fuzzy)等七種表型間進行轉換,不同表型間轉換發生的頻率各異,介於萬分之一至十分之一之間,且紫外線的照射可大幅提升轉換發生的頻率[53][55]。高頻率轉換可能與某些基因表現的改變有關,有研究發現缺乏組蛋白脫乙醯酶SIR2的菌株出現高頻率轉換的機率大幅上升,顯示控制轉換的基因平時可能為SIR2所抑制[65]。在各種表型間轉換的能力有助於白色念珠菌在不同環境下的生長[66]。

白色型─混濁型轉換[编辑]

此調控圖中,白色與金色框線分別代表在白色型中與混濁型中表現增加的基因,藍色調控線條為根據上位效應實驗結果所繪,紅色調控線條表示WOR1對各基因的調控,為根據染色質免疫沉澱實驗結果所繪,而箭頭(表示促進)與橫槓(表示抑制)為根據兩種表型中各基因的表現增減判定。

白色型─混濁型轉換(white-to-opaque switching)是白色念珠菌第二種被發現的高頻率轉換,於1986年由大衛·索爾團隊在WO-1菌株中發現,其中白色型(white)的細胞呈圓形,形成白色、平滑的菌落,混濁型(opaque)的細胞形狀則較長,形成灰色且較為扁平的菌落[54]。此轉換是由WOR1(White to Opaque Regulator 1)蛋白調控,WOR1蛋白則受MTL基因調控,當MTLa與MTLα基因同時存在時,會產生a1-α2複合體,抑制WOR1蛋白的表現,進而抑制白色型─混濁型的轉換[67],又因混濁型是發生準性生殖的主要表型,進行準性生殖的機率比白色型高上百萬倍[68][69],自然環境中有高達95%的白色念珠菌都屬MTLa/α型,因此難有此轉換與交配發生[21][68]。

白色型─混濁型轉換受到許多環境因子調控,其中氧化壓力會促進白色念珠菌轉為混濁型,溫度的提升則會促進其轉為白色型,因此在宿主體內(攝氏37度)生長時白色念珠菌多為白色型,但缺氧[註 3]、二氧化碳與N-乙酰葡糖胺[註 4]濃度高的環境(例如消化道中)可以亦可刺激白色型─混濁型轉換,使白色念珠菌呈混濁型,因此感染宿主的白色念珠菌亦可能發生交配[71]。另外當白色念珠菌生長速率降低時,可能因細胞中得以累積足夠濃度的WOR1蛋白,不因細胞分裂而快速被稀釋,進而促進白色型─混濁型轉換[68]。白色型─混濁型轉換對白色念珠菌的致病力也有關聯。白色型較適於體內的全身性感染,混濁型則較適於皮膚的淺表感染,兩種型態對宿主免疫系統的反應與耐受性也有所不同,可能有助於感染[68]。

除了白色念珠菌外,同為念珠菌屬且亦可感染人體的都柏林念珠菌(英语:Candida dubliniensis)與熱帶念珠菌(英语:Candida tropicalis)也能進行白色型─混濁型轉換[72]。2014年,有研究發現除了白色型與混濁型外,還有一種「灰色型」可與兩型態相互轉換,灰色型的白色念珠菌造成皮膚感染的能力比另外兩種型態還強,發生交配的機率則介於兩者之間,且白色型─灰色型的轉換不需WOR1的參與。三種型態各有不同的基因表現,造成其型態、代謝、致病能力、適應宿主體內的環境與對逆境的抗性皆有所不同[72]。

其他轉換[编辑]

除了白色型─混濁型轉換外,還有許多新的白色念珠菌表型轉換機制陸續被發現,分別存在不同菌株中[56]。從人體陰道中分離的部分菌株可以在菌絲量多與菌絲量少的菌落型態之間互相轉換[73]。SC5314菌株還可進行白色型─消化道型的轉換,消化道型(Gastrointestinally-IndUced Transition, GUT)是存在宿主消化道中的類型,其外型與混濁型相似,細胞形狀較長、形成的菌落較扁,且從白色型轉換的過程亦需WOR1蛋白參與,但以電子顯微鏡觀察時可見其表面沒有混濁型常有的突起,且基因表現亦與混濁型不同,並因維持MTLa/α的基因型而不像混濁型可以進行交配。消化道中可能含有刺激白色型白色念珠菌轉換為消化道型的訊息,此型的白色念珠菌主要在宿主消化道中行片利共生,不對宿主健康造成負面影響[74][75]。

生殖[编辑]

白色念珠菌準性生殖的過程

主条目:準性生殖

白色念珠菌過去被認為只能以有絲分裂進行無性生殖,不能進行減數分裂和產生孢子,沒有以有性生殖繁殖的途徑。現代研究則發現白色念珠菌亦可進行準性生殖[76],但僅限於MTLa或MTLα基因型的個體,MTLa/α者因會抑制白色型-混濁型轉換而難以交配(詳見#白色型─混濁型轉換一節)[21]。混濁型的MTLa與MTLα的個體可分別釋放MFa與MFα費洛蒙,與彼此細胞表面的受體結合而啟動停止細胞週期、改變細胞型態等交配機制[77],並可形成一種稱為性菌膜(sexual biofilm)的生物薄膜,有助於交配進行[76][78]。最終兩細胞可進行核融合(英语:karyogamy)而形成四倍體。四倍體在某些環境下不穩定,有絲分裂時可能發生染色體不分離而產生非整倍體,進而在多次有絲分裂後回復為二倍體[79],其中染色體缺失的過程有協同效應,即丟失數個染色體後,在後續的有絲分裂中繼續丟失其他染色體的機率會提升[80]。有絲分裂時Spo11蛋白可以切割DNA,促使同源染色體間發生同源重組[76][79]。

白色念珠菌因為雙倍體,其準性生殖為二倍體-四倍體-二倍體的過程,而不同於其他真菌的單倍體-二倍體-單倍體。不過白色念珠菌的二倍體亦可能丟失染色體而形成單倍體,單倍體的a與α菌株亦可交配而形成二倍體[76][81]。

致病機制[编辑]

白色念珠菌可以分泌天冬胺酸蛋白酶(secreted aspartic proteinases, Saps)、磷脂酶與脂酶,可分解宿主細胞的胞外基質與細胞膜表面物質[82],有助其黏著、侵入宿主的組織中[83],甚至可能可以用以破壞免疫細胞[82]。2016年,有研究發現白色念珠菌感染宿主粘膜時,從酵母菌型轉為菌絲型後,會分泌一種稱為念珠菌素(英语:Candidalysin)的毒素(英语:Mycotoxin),念珠菌素長31個胺基酸,是由Kex2p蛋白酶切割Ece1p產生的一種多肽,可造成宿主上皮細胞的損傷,並刺激宿主的免疫反應[84]。

酵母菌型-菌絲型轉換對白色念珠菌的致病能力相當重要。吞噬細胞是宿主抗真菌免疫反應中的重要環節,白色念珠菌被巨噬細胞內吞後,並由酵母菌型轉換為菌絲型,最終穿透巨噬細胞而重新回到組織中。在巨噬細胞內部,白色念珠菌會啟動許多基因的表現,改變其代謝與促進型態轉換,其中許多基因為念珠菌所特有,釀酒酵母中不存在同源基因者,很可能與白色念珠菌的致病能力有關[85]。另外菌絲型的白色念珠菌菌絲表面有Hwp1(英语:Hwp1)(Hyphal wall protein 1)蛋白,該蛋白可與宿主上皮細胞表面的轉麩醯胺酶(英语:Transglutaminase)結合,有助白色念珠菌黏附於宿主細胞,進而造成感染[86]。

生物薄膜[编辑]

白色念珠菌形成的生物薄膜

白色念珠菌還可形成結構複雜的生物薄膜,由圓球形的酵母菌、假菌絲與菌絲等各種型態的細胞與胞外基質組成,其基因表現與游離的細胞有很大的不同,其中Efg1、Tec1、Bcr1、Ndt80、Brg1與Rob1等六個轉錄因子對生物薄膜的形成特別重要,另外可能有上千個基因都對生物薄膜的形成有所影響[87][88]。生物薄膜可以多種機制提高白色念珠菌對抗真菌劑的抗性,包括增加外排泵(英语:Efflux (microbiology))的表現以將藥物排出胞外,以胞外基質中的水解酶分解藥物,以及形成抗性很強的休眠細胞(persister cells)。生物薄膜中的酵母菌還可以向外傳播,這些細胞比起正常的酵母菌型細胞有較強的黏附力,形成新的生物薄膜的能力較強,具有較高的致病能力[88]。

白色念珠菌在環境中與人體中皆可形成生物薄膜。在醫療器材上,白色念珠菌是最常被發現的真菌種類[15],導尿管、靜脈導管、心律調節器、人工瓣膜(英语:Artificial heart valve)、人工關節、隱形眼鏡與假牙等醫療器材上均可能有白色念珠菌的生物薄膜生長。生物薄膜中的白色念珠菌較正常游離者對人體免疫系統的抗性較高,可能藉由醫療器材入侵循環系統,造成嚴重的全身性感染,還可能使這些醫療器材無法正常運作[88]。

在人體中,白色念珠菌還可能與許多細菌共同形成生物薄膜,包括口腔中的轉糖鏈球菌(英语:Streptococcus mutans)、格氏鏈球菌(英语:Streptococcus gordonii)、粘性放线菌或細梭菌(英语:Fusobacterium),腸道中的鬆脆桿菌(英语:Bacteroides fragilis)、產氣莢膜梭菌、大腸桿菌、克雷伯氏肺炎菌與糞腸球菌(英语:Enterococcus faecalis),陰道中的乳桿菌屬細菌與囊腫纖維症患者肺中的綠膿桿菌,白色念珠菌與這些細菌可透過實際接觸、分泌訊息分子或改變環境因子來影響彼此的行為,例如綠膿桿菌可分泌一種內酯,抑制生物薄膜中白色念珠菌菌絲的形成,但不影響其整體生長速率[88][89]。還有研究顯示白色念珠菌形成的生物薄膜提供了缺氧的微環境,使鬆脆桿菌與產氣莢膜梭菌等厭氧細菌得以生長,且這些細菌可能可以促進白色念珠菌形成生物薄膜,以利自己在有氧環境下生長。白色念珠菌與細菌共同形成的生物薄膜對人體健康的影響仍不清楚[88]。

感染[编辑]

维基百科中的醫學内容仅供参考,並不能視作專業意見。如需獲取醫療幫助或意見,请咨询专业人士。詳見醫學聲明。

主条目:念珠菌症

白色念珠菌為伺機性感染的致病真菌,平時可生長於人體的皮膚與粘膜組織中而不造成負面影響,但當其過度生長時可能造成念珠菌症的感染。念珠菌症又可依感染部位分為若干類型,包括感染口部的鵝口瘡、感染陰道的念珠菌性外陰陰道炎、感染食道的念珠菌性食道炎(英语:esophageal candidiasis)等,甚至可能造成全身的侵入性感染,侵犯多個器官,並造成念珠菌血症(Candidemia)[90]。念珠菌症在健康成人中比較少見,小於一個月的新生兒、愛滋病患者、癌症患者、糖尿病患者與服用抗生素與皮質類固醇等免疫缺乏者感染的風險較高[91]。白色念珠菌也常造成醫療照顧相關感染[92]。

淺表與局部感染[编辑]

口腔感染[编辑]

鵝口瘡為白色念珠菌感染口腔造成

主条目:鵝口瘡

據統計,世界上有一半的人群口腔中有白色念珠菌[6],甚至有更精密的方法顯示90%的人皆有,但絕大多數不造成任何感染症狀[93],免疫缺乏、高糖份的飲食、配戴假牙、抽菸與口乾皆會造成口腔中白色念珠菌出現的機率增加[94]。若白色念珠菌造成口腔粘膜損傷即為鵝口瘡,通常不伴隨其他症狀且沒有痛感,只有部分患者會有灼痛感[95],其他可能的症狀還包括味覺改變、觸感改變、患部發紅等[91]。醫護人員常透過簡單觀察口腔即作出鵝口瘡的診斷,有時則需取小量檢體進行培養,再於顯微鏡下觀察鑑別。治療鵝口瘡使用的抗真菌劑包括克催瑪汝、咪康唑與耐絲菌素,較嚴重者則可能施以氟康唑[91]。

食道感染[编辑]

念珠菌性食道炎(英语:esophageal candidiasis)為白色念珠菌造成的食道感染,多發生於愛滋病患者、接受化療的癌症患者等免疫缺乏的人群,但有時亦見於免疫力正常者中。念珠菌性食道炎的症狀包括疼痛與吞嚥困難,其診斷多為使用內視鏡,治療多使用氟康唑。感染念珠菌性食道炎的患者通常同時患有口腔感染[91]。

陰道感染[编辑]

白色念珠菌造成的陰道感染示意圖

主条目:念珠菌性外陰陰道炎

白色念珠菌為兩成女性陰道菌叢的正常成分,並不造成感染,若因激素、服用藥物或免疫力下降導致陰道環境改變,而使白色念珠菌大量增殖,便可能導致念珠菌性外陰陰道炎。免疫缺乏、服用避孕藥、服用抗生素與妊娠均會增加感染機會,症狀包括陰道痛癢、性交與排尿時有痛感與異常的分泌物,診斷多需取小量樣本進行培養,再於顯微鏡下觀察鑑別。治療方式於陰道塗抹抗真菌劑或口服氟康唑,嚴重者除繼續口服氟康唑外,還可能於患部施以硼酸、耐絲菌素或氟胞嘧啶[96]。

念珠菌性外陰陰道炎是第二常見的陰道炎,僅次於細菌性陰道病[97]。有高達75%的女性在其一生中得過至少一次念珠菌性外陰陰道炎,接近半數超過兩次[98][99]。約5%的女性在一年中被感染三次以上[99]。

其他[编辑]

除了以上部位之外,白色念珠菌還可感染指甲而造成念珠菌性甲癬(英语:Candidal onychomycosis)[100],感染甲溝造成念珠菌性甲溝炎[101],感染嘴角造成口角炎[102],感染舌頭導致正中菱形舌炎(英语:median rhomboid glossitis)[102],感染男性生殖器導致龜頭炎[103],感染毛囊導致毛囊炎[103],在消化道過度生長而造成腸胃不適等[104]。產道存有白色念珠菌的孕婦若發生早期羊膜囊破裂,可能造成新生兒感染先天性皮肤念珠菌病(英语:Congenital cutaneous candidiasis)[105]。

全身性感染[编辑]

白色念珠菌亦可造成全身性的感染,侵入血液、心臟、眼、骨骼等部位,其中最常見者為念珠菌血症(Candidemia),為常見的醫療照顧相關感染,在美國每年約有46000例[106],患者多為原本就患有其他重大疾病者[107],高風險者包括裝置靜脈導管的患者、住院期間長的患者、加護病房的患者、施用廣效型抗生素的患者、燒燙傷患者、接受全靜脈營養治療者與嗜中性白血球低下者[92]。

全身性念珠菌症通常是以血液樣本培養進行診斷,多數患者最初治療的推薦用藥為棘白菌素(英语:echinocandin),感染的菌株種類與抗藥性確認後則改為氟康唑,部分患者也會以氟康唑為起始用藥。成功將血液中的白色念珠菌清除並消除症狀後,療程還需持續兩週[108]。1999年,一篇發表於《Clinical Infectious Diseases(英语:Clinical Infectious Diseases)》的研究統計美國49間醫院3年間所有在院內發生的血液感染,共記錄了超過一萬起感染,其中念珠菌屬真菌為第四常見的病原,且以白色念珠菌為大宗[57][109]。念珠菌血症的死亡率可高達40%-60%[8][110],每年造成的醫療花費超過十億美元[57]。

註腳[编辑]

^ 與釀酒酵母的RPS10A, RPS10B基因同源[49]。

^ 又分為轉換前的原始平滑(original smooth)與轉換後由其他表型回復的回復平滑(revertant smooth),兩者型態可能有所差異。[55]

^ 可能原因為缺氧狀態下麥角固醇缺乏而刺激白色型─混濁型轉換[70]

^ 宿主腸道菌叢分泌的醣類[71]。

參考資料[编辑]

^

Candida albicans at NCBI Taxonomy browser (页面存档备份,存于互联网档案馆)

^ 2.0 2.1 2.2 Kurtzman, C. P.; Fell, Jack W. The yeasts, a taxonomic study 4. 1998. ISBN 978-0444813121. 

^

Simi, Vincent. Origin of the Names of Species of Candida (PDF). [2018-12-06]. (原始内容存档 (PDF)于2015-06-21). 

^ McClary, Dan Otho. Factors Affecting the Morphology of Candida Albicans. Annals of the Missouri Botanical Garden. May 1952, 39 (2): 137–164. JSTOR 2394509. doi:10.2307/2394509. 

^ Gow, N.A.R. Microbe Profile: Candida albicans: a shape-changing, opportunistic pathogenic fungus of humans. Microbiology. 2017, 163 (8): 1145–1147. PMID 28809155. doi:10.1099/mic.0.000499. 

^ 6.0 6.1 Kerawala C, Newlands C (编). Oral and maxillofacial surgery. Oxford: Oxford University Press. 2010: 446, 447. ISBN 978-0-19-920483-0. 

^ 7.0 7.1 7.2 Erdogan A, Rao SS. Small intestinal fungal overgrowth. Curr Gastroenterol Rep. April 2015, 17 (4): 16. PMID 25786900. doi:10.1007/s11894-015-0436-2. 

^ 8.0 8.1 8.2 8.3 Calderone A, Clancy CJ (编). Candida and Candidiasis 2nd. ASM Press. 2012. ISBN 978-1-55581-539-4. 

^ 9.0 9.1 9.2 Martins N, Ferreira IC, Barros L, Silva S, Henriques M. Candidiasis: predisposing factors, prevention, diagnosis and alternative treatment. Mycopathologia. June 2014, 177 (5–6): 223–240. PMID 24789109. doi:10.1007/s11046-014-9749-1. 

^ Pfaller MA, Diekema DJ. Epidemiology of invasive candidiasis: a persistent public health problem. Clin Microbiol Rev. January 2007, 20 (1): 133–163. PMC 1797637 . PMID 17223626. doi:10.1128/CMR.00029-06. 

^ 11.0 11.1 11.2 11.3 11.4 Geraldine Butler, Matthew D. Rasmussen, Christina A. Cuomo. Evolution of pathogenicity and sexual reproduction in eight Candida genomes. Nature. 2009, 459 (7247): 657-662. doi:10.1038/nature08064. 

^ M. A. Pfaller, D. J. Diekema. Epidemiology of Invasive Candidiasis: a Persistent Public Health Problem. Clinical Microbiology Reviews. 2007, 20 (1): 133-163. doi:10.1128/CMR.00029-06. 

^ Singh, Rachna; Chakrabarti, Arunaloke. Invasive Candidiasis in the Southeast-Asian Region. Prasad, Rajendra (编). Candida albicans: Cellular and Molecular Biology 2. Switzerland: Springer International Publishing AG. 2017: 27. ISBN 978-3-319-50408-7. 

^ Pfaller, M. A.; Diekema, D. J. Epidemiology of Invasive Candidiasis: A Persistent Public Health Problem. Clinical Microbiology Reviews. 2007, 20 (1): 133–63. PMC 1797637 . PMID 17223626. doi:10.1128/CMR.00029-06. 

^ 15.0 15.1 Kumamoto CA. Candida biofilms. Current Opinion in Microbiology. 2002, 5 (6): 608–11. PMID 12457706. doi:10.1016/s1369-5274(02)00371-5. 

^ Donlan RM. Biofilm formation: a clinically relevant microbiological process. Clinical Infectious Diseases. 2001, 33 (8): 1387–92. PMID 11565080. doi:10.1086/322972. 

^ Hickman MA, Zeng G, Forche A, Hirasawa MP, Abbey D, Harrison BD, Wang YM, Su CH, Bennett RJ, Wang Y, Berman J. The 'obligate diploid' Candida albicans forms mating-competent haploids. Nature. 2016, 494 (7435): 55–59. Bibcode:2013Natur.494...55H. PMC 3583542 . PMID 23364695. doi:10.1038/nature11865. 

^

Candida albicans SC5314 Genome Snapshot/Overview. www.candidagenome.org. [2018-03-27]. (原始内容存档于2018-11-16). 

^ Development of Candida albicans Hyphae in Different Growth Media – Variations in Growth Rates, Cell Dimensions and Timing of Morphogenetic Events (PDF) (132). 1986. 

^ 20.0 20.1 20.2 Frans M. Klis, Chris G. de Koster, Stanley Brul. Cell Wall-Related Bionumbers and Bioestimates of Saccharomyces cerevisiae and Candida albicans. Eukaryot Cell. 2014, 13 (1): 2–9. doi:10.1128/EC.00250-13. 

^ 21.0 21.1 21.2 Christina M. Hull, Ryan M. Raisner, Alexander D. Johnson. Evidence for Mating of the "Asexual" Yeast Candida albicans in a Mammalian Host. Science. 2000, 289 (5477): 307-310. doi:10.1126/science.289.5477.307. 

^ 22.0 22.1 William S. Haubrich. Medical Meanings: A Glossary of Word Origins. ACP Press. 2003: 39 [2019-02-22]. ISBN 1930513496. (原始内容存档于2021-11-02). 

^

McCool, Logan. The Discovery and Naming of Candida albicans (PDF). antimicrobe.org. [2019-02-22]. (原始内容存档 (PDF)于2018-05-05). 

^

Candida albicans. MycoBank. [2019-02-22]. (原始内容存档于2019-02-22). 

^

Simi, Vincent. Origin of the Names of Species of Candida (PDF). antimicrobe.org. [2018-12-06]. (原始内容存档 (PDF)于2015-06-21). 

^ Sung-Oui Suh, Meredith Blackwell, Cletus P. Kurtzman, Marc-André Lachance. Phylogenetics of Saccharomycetales, the ascomycete yeasts. Mycologia. 2006, 98 (6): 1006-1017. doi:10.1080/15572536.2006.11832629. 

^ Stephanie Diezmann, Cymon J. Cox, Gabriele Schönian, Rytas J. Vilgalys, Thomas G. Mitchell. Phylogeny and Evolution of Medical Species of Candida and Related Taxa: a Multigenic Analysis. Journal of Clinical Microbiology. 2004, 42 (12): 5624–5635. doi:10.1128/JCM.42.12.5624-5635.2004. 

^ Stefanie Mühlhausen, Martin Kollmar. Molecular Phylogeny of Sequenced Saccharomycetes Reveals Polyphyly of the Alternative Yeast Codon Usage. Genome Biol Evol. 2014, 6 (12): 3222–3237. doi:10.1093/gbe/evu152. 

^ Ted Jones, Nancy A. Federspiel, Hiroji Chibana, Jan Dungan, Sue Kalman, B. B. Magee, George Newport,Yvonne R. Thorstenson, Nina Agabian, P. T. Magee, Ronald W. Davis, Stewart Scherer. The diploid genome sequence of Candida albicans. PNAS. 2004, 101 (19): 7329–7334. doi:10.1073/pnas.0401648101. 

^

Skrzypek MS, Binkley J, Binkley G, Miyasato SR, Simison M, and Sherlock G. Candida albicans SC5314 Genome Snapshot/Overview. Candida Genome Database. 2019-02-19 [2018-12-06]. (原始内容存档于2018-11-16). 

^ Roemer T, Jiang B, Davison J, Ketela T, Veillette K, Breton A, Tandia F, Linteau A, Sillaots S, Marta C, Martel N, Veronneau S, Lemieux S, Kauffman S, Becker J, Storms R, Boone C, Bussey H. Large-scale essential gene identification in Candida albicans and applications to antifungal drug discovery. Mol Microbiol. 2003, 38 (19): 167–81. PMID 14507372. doi:10.1046/j.1365-2958.2003.03697.x. 

^

Candida Community News. www.candidagenome.org. [2018-03-27]. (原始内容存档于2018-10-27). 

^

Candida Strains. www.candidagenome.org. [2018-03-27]. (原始内容存档于2018-10-27). 

^ Jones T, Federspiel NA, Chibana H, Dungan J, Kalman S, Magee BB, Newport G, Thorstenson YR, Agabian N, Magee PT, Davis RW, Scherer S. The diploid genome sequence of Candida albicans. Proc Natl Acad Sci U S A. 2004, 101 (19): 7329–7334. PMC 409918 . PMID 15123810. doi:10.1073/pnas.0401648101. 

^ Ohama, T; Suzuki, Tsutomu; Mori, Miki; Osawa, Syozo; Ueda, Takuya; Watanabe, Kimitsuna; Nakase, Takashi. Non-universal decoding of the leucine codon CUG in several Candida species. Nucleic Acids Research. August 1993, 21 (17): 1039–4045. PMC 309997 . PMID 8371978. doi:10.1093/nar/21.17.4039. 

^ Arnaud, MB; Costanzo, MC; Inglis, DO; Skrzypek, MS; Binkley, J; Shah, P; Binkley, G; Miyasato, SR; Sherlock, G. CGD Help: Non-standard Genetic Codes. Candida Genome Database. [2011-10-30]. (原始内容存档于2018-11-01). 

^

Andrzej (Anjay) Elzanowski and Jim Ostell. The Alternative Yeast Nuclear Code. The Genetic Codes. Bethesda, Maryland, U.S.A.: National Center for Biotechnology Information (NCBI). 2010-07-07 [2011-10-30]. (原始内容存档于2011-05-13). 

^ Santos, MA; Cheesman, C; Costa, V; Moradas-Ferreira, P; Tuite, MF. Selective advantages created by codon ambiguity allowed for the evolution of an alternative genetic code in Candida spp.. Molecular Microbiology. February 1999, 31 (3): 937–947. PMID 10048036. doi:10.1046/j.1365-2958.1999.01233.x. 

^ Raquel M Silva, João A Paredes, Gabriela R Moura, Bruno Manadas, Tatiana Lima‐Costa, Rita Rocha, Isabel Miranda, Ana C Gomes, Marian JG Koerkamp, Michel Perrot, Frank CP Holstege, Hélian Boucherie, Manuel A S Santos. Critical roles for a genetic code alteration in the evolution of the genus Candida. EMBO J. October 2007, 26 (21): 4555–65. PMC 2063480 . PMID 17932489. doi:10.1038/sj.emboj.7601876. 

^ Stynen, B; Van Dijck, P; Tournu, H. A CUG codon adapted two-hybrid system for the pathogenic fungus Candida albicans. Nucleic Acids Res. October 2010, 38 (19): e184. PMC 2965261 . PMID 20719741. doi:10.1093/nar/gkq725. 

^ Rustchenko-Bulgac, E. P. Variations of Candida albicans Electrophoretic Karyotypes. J. Bacteriol. 1991, 173 (20): 6586–6596. PMC 208996 . PMID 1917880. doi:10.1128/jb.173.20.6586-6596.1991. 

^ Holmes, Ann R.; Tsao, Sarah; Ong, Soo-Wee; Lamping, Erwin; Niimi, Kyoko; Monk, Brian C.; Niimi, Masakazu; Kaneko, Aki; Holland, Barbara R.; Schmid, Jan; Cannon, Richard D. Heterozygosity and functional allelic variation in the Candida albicans efflux pump genes CDR1 and CDR2. Molecular Microbiology. 2006, 62 (1): 170–86. PMID 16942600. doi:10.1111/j.1365-2958.2006.05357.x. 

^ Jones, T.; Federspiel, N. A.; Chibana, H.; Dungan, J.; Kalman, S.; Magee, B. B.; Newport, G.; Thorstenson, Y. R.; Agabian, N.; Magee, P. T.; Davis, R. W.; Scherer, S. The diploid genome sequence of Candida albicans. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2004, 101 (19): 7329–7334. Bibcode:2004PNAS..101.7329J. PMC 409918 . PMID 15123810. doi:10.1073/pnas.0401648101. 

^ Maria C. Costanzo, Martha B. Arnaud, Marek S. Skrzypek, Gail Binkley, Christopher Lane, Stuart R. Miyasato, Gavin Sherlock. The Candida Genome Database: Facilitating research on Candida albicans molecular biology. FEMS Yeast Research. 2006, 6 (5): 671-684. doi:10.1111/j.1567-1364.2006.00074.x. 

^ 45.0 45.1 Marek S. Skrzypek, Jonathan Binkley, Gavin Sherlock. Using the Candida Genome Database. Methods Mol Biol: 31–47. doi:10.1007/978-1-4939-7737-6_3. 

^ van het Hoog, Marco; Rast, Timothy J; Martchenko, Mikhail; Grindle, Suzanne; Dignard, Daniel; Hogues, Hervé; Cuomo, Christine; Berriman, Matthew; Scherer, Stewart; Magee, BB; Whiteway, Malcolm; Chibana, Hiroji; Nantel, André; Magee, PT. Assembly of the Candida albicans genome into sixteen supercontigs aligned on the eight chromosomes. Genome Biology. 2007, 8 (4): R52. PMC 1896002 . PMID 17419877. doi:10.1186/gb-2007-8-4-r52. 

^ Cheng, S; Nguyen, M. H; Zhang, Z; Jia, H; Handfield, M; Clancy, C. J. Evaluation of the Roles of Four Candida albicans Genes in Virulence by Using Gene Disruption Strains That Express URA3 from the Native Locus. Infection and Immunity. 2003, 71 (10): 6101–3. PMC 201070 . PMID 14500538. doi:10.1128/IAI.71.10.6101-6103.2003. 

^ 48.0 48.1 Noble, S. M; Johnson, A. D. Strains and strategies for large-scale gene deletion studies of the diploid human fungal pathogen Candida albicans. Eukaryotic Cell. 2005, 4 (2): 298–309. PMC 549318 . PMID 15701792. doi:10.1128/EC.4.2.298-309.2005. 

^ Swoboda RK, Broadbent ID, Bertram G, Budge S, Gooday GW, Gow NA, Brown AJ. Structure and regulation of a Candida albicans RP10 gene which encodes an immunogenic protein homologous to Saccharomyces cerevisiae ribosomal protein 10. J Bacteriol. 1995, 177 (5): 1239-1246. doi:10.1128/jb.177.5.1239-1246.1995. 

^ Abdul Munir Abdul Murad, Philip R. Lee, Ian D. Broadbent, Caroline J. Barelle, Alistair J. P. Brown. CIp10, an efficient and convenient integrating vector for Candida albicans. Yeast. 2000, 14 (4): 325-327. doi:10.1002/1097-0061(20000315)16:4<325::AID-YEA538>3.0.CO;2-%23. 

^ Chauvel, Murielle; Nesseir, Audrey; Cabral, Vitor; Znaidi, Sadri; Goyard, Sophie; Bachellier-Bassi, Sophie; Firon, Arnaud; Legrand, Mélanie; Diogo, Dorothée; Naulleau, Claire; Rossignol, Tristan; d'Enfert, Christophe. A Versatile Overexpression Strategy in the Pathogenic Yeast Candida albicans: Identification of Regulators of Morphogenesis and Fitness. PLOS One. 2012, 7 (9): e45912. Bibcode:2012PLoSO...745912C. PMC 3457969 . PMID 23049891. doi:10.1371/journal.pone.0045912. 

^ Walker, Louise A.; MacCallum, Donna M.; Bertram, Gwyneth; Gow, Neil A.R.; Odds, Frank C.; Brown, Alistair J.P. Genome-wide analysis of Candida albicans gene expression patterns during infection of the mammalian kidney. Fungal Genetics and Biology. 2009, 46 (2): 210–9. PMC 2698078 . PMID 19032986. doi:10.1016/j.fgb.2008.10.012. 

^ 53.0 53.1 Neena Jain, Fahmi Hasan, Bettina C. Fries. Phenotypic Switching in Fungi. Curr Fungal Infect Rep. 2008, 2 (3). doi:10.1007/s12281-008-0026-y. 

^ 54.0 54.1 Slutsky, B; Staebell, M; Anderson, J; Risen, L; Pfaller, M; Soll, DR. "White-opaque transition": a second high-frequency switching system in Candida albicans.. J. Bacteriol. 1987, 1 (169): 189–197. PMC 211752 . PMID 3539914. doi:10.1128/jb.169.1.189-197.1987. 

^ 55.0 55.1 55.2 Slutsky, B; Buffo, J; Soll, D. R. High-frequency switching of colony morphology in Candida albicans. Science. 1985, 230 (4726): 666–9. Bibcode:1985Sci...230..666S. PMID 3901258. doi:10.1126/science.3901258. 

^ 56.0 56.1 56.2 Soll, DR. High-frequency switching in Candida albicans. Clin Microbiol Rev. 1992, 5 (2): 183–203. PMC 358234 . PMID 1576587. doi:10.1128/cmr.5.2.183. 

^ 57.0 57.1 57.2 57.3 Sudbery, P; Gow, N; Berman, J. The distinct morphogenic states of Candida albicans. Trends in Microbiology. 2004, 12 (7): 317–24. PMID 15223059. doi:10.1016/j.tim.2004.05.008. 

^ Si H, Hernday AD, Hirasawa MP, Johnson AD, Bennett RJ. Candida albicans White and Opaque Cells Undergo Distinct Programs of Filamentous Growth. PLoS Pathog. 2013, 9 (3): e1003210. PMC 3591317 . PMID 23505370. doi:10.1371/journal.ppat.1003210. 

^

Peter E. Sudbery. Growth of Candida albicans hyphae (PDF). Nature Reviews Microbiology. 2011, 9 (10): 737–748. PMID 21844880. doi:10.1038/nrmicro2636. 。參見figure 2 (页面存档备份,存于互联网档案馆)

^ Jiménez-López, Claudia; Lorenz, Michael C. Fungal Immune Evasion in a Model Host–Pathogen Interaction: Candida albicans Versus Macrophages. PLoS Pathogens. 2013, 9 (11): e1003741. PMC 3836912 . PMID 24278014. doi:10.1371/journal.ppat.1003741. 

^ Berman J, Sudbery PE. Candida Albicans: a molecular revolution built on lessons from budding yeast. Nature Reviews Genetics. 2002, 3 (12): 918–930. PMID 12459722. doi:10.1038/nrg948. 

^ Shareck, J.; Belhumeur, P. Modulation of Morphogenesis in Candida albicans by Various Small Molecules. Eukaryotic Cell. 2011, 10 (8): 1004–12. PMC 3165445 . PMID 21642508. doi:10.1128/EC.05030-11. 

^ Suzanne M Noble, Sarah French, Lisa A Kohn, Victoria Chen, Alexander D Johnson. Systematic screens of a Candida albicanshomozygous deletion library decouple morphogenetic switching and pathogenicity. Nature Genetics. 2010, 42 (7): 590–598. doi:10.1038/ng.605. 

^ Peter Staib, Joachim Morschhäuser. Chlamydospore formation in Candida albicans and Candida dubliniensis– an enigmatic developmental programme. Mycoses. 2006, 50 (1): 1-12. doi:10.1111/j.1439-0507.2006.01308.x. 

^ José Pérez‐Martín, José Antonio Uría, Alexander D. Johnson. Phenotypic switching in Candida albicans is controlled by a SIR2 gene. The EMBO Journal. 1999, 18 (9): 2580-2592. doi:10.1093/emboj/18.9.2580. 

^ Tao L, Du H, Guan G, Dai Y, Nobile C, Liang W, Cao C, Zhang Q, Zhong J, Huang G. Discovery of a "White-Gray-Opaque" Tristable Phenotypic Switching System in Candida albicans: Roles of Non-genetic Diversity in Host Adaptation. PLoS Biol. 2014, 12 (4): e1001830. PMC 3972085 . PMID 24691005. doi:10.1371/journal.pbio.1001830. 

^ Morschhäuser J. Regulation of white-opaque switching in Candida albicans. Med Microbiol Immunol.. 2010, 199 (3): 165–172. PMID 20390300. doi:10.1007/s00430-010-0147-0. 

^ 68.0 68.1 68.2 68.3 Lohse MB, Johnson AD. White-opaque switching in Candida albicans. Curr Opin Microbiol. 2009, 12 (6): 650–654. PMC 2812476 . PMID 19853498. doi:10.1016/j.mib.2009.09.010. 

^ Hnisz D, Tscherner M, Kuchler K. Opaque-white phenotype transition: a programmed morphological transition in Candida albicans. Methods Mol. Biol. Methods in Molecular Biology. 2011, 734 (2): 303–315. ISBN 978-1-61779-085-0. PMID 21468996. doi:10.1007/978-1-61779-086-7_15. 

^ Bernardo Ramírez-Zavala, Oliver Reuß, Yang-Nim Park, Knut Ohlsen,Joachim Morschhäuser. Environmental Induction of White–Opaque Switching in Candida albicans. PLoS Pathogens. 2008, 4 (6): e1000089. doi:10.1371/journal.ppat.1000089. 

^ 71.0 71.1 Guanghua Huang, Song Yi, Nidhi Sahni, Karla J. Daniels, Thyagarajan Srikantha, David R. Soll. N-Acetylglucosamine Induces White to Opaque Switching, a Mating Prerequisite in Candida albicans. PLoS Pathogens. 2010, 6 (3): e1000806. doi:10.1371/journal.ppat.1000806. 

^ 72.0 72.1 Li Tao, Han Du, Guobo Guan, Yu Dai, Clarissa J. Nobile, Weihong Liang, Chengjun Cao, Qiuyu Zhang, Jin Zhong, Guanghua Huang. Discovery of a “White-Gray-Opaque” Tristable Phenotypic Switching System in Candida albicans: Roles of Non-genetic Diversity in Host Adaptation. PLoS Biology. 2014, 12 (4): e1001830. doi:10.1371/journal.pbio.1001830. 

^

D R Soll, C J Langtimm, J McDowell, J Hicks, R Galask. High-frequency switching in Candida strains isolated from vaginitis patients. Journal of Clinical Microbiology. 1987, 25 (9): 1611-1622 [2019-03-01]. (原始内容存档于2019-03-01). 

^ Pande, Kalyan; Chen, Changbin; Noble, Suzanne M. Passage through the mammalian gut triggers a phenotypic switch that promotes Candida albicans commensalism. Nature Genetics. 2013, 45 (9): 1088–91. PMC 3758371 . PMID 23892606. doi:10.1038/ng.2710. 

^ Noble, Suzanne M.; Gianetti, Brittany A.; Witchley, Jessica N. Candida albicans cell-type switching and functional plasticity in the mammalian host. Nature Reviews Microbiology. 2016, 15 (2): 96–108. PMC 5957277 . PMID 27867199. doi:10.1038/nrmicro.2016.157. 

^ 76.0 76.1 76.2 76.3 Richard J Bennett. The parasexual lifestyle of Candida albicans. Current Opinion in Microbiology. 2015, 28: 10-17. doi:10.1016/j.mib.2015.06.017. 

^ Kevin Alby, Richard J. Bennett. Sexual reproduction in the Candida clade: cryptic cycles, diverse mechanisms, and alternative functions. Cell Mol Life Sci.. 2010, 67 (19): 3275–3285. doi:10.1007/s00018-010-0421-8. 

^ Yang-Nim Park, Karla J. Daniels, Claude Pujol, Thyagarajan Srikantha, David R. Soll. Candida albicans Forms a Specialized “Sexual” as Well as “Pathogenic” Biofilm. Eukaryotic Cell. 2013, 12 (8): 1120-1131. doi:10.1128/EC.00112-13. 

^ 79.0 79.1 Anja Forche, Kevin Alby, Dana Schaefer, Alexander D Johnson, Judith Berman, Richard J Bennett. The Parasexual Cycle in Candida albicans Provides an Alternative Pathway to Meiosis for the Formation of Recombinant Strains. PLoS Biology. 2008, 6 (5): e110. doi:10.1371/journal.pbio.0060110. 

^ Richard J. Bennett, Alexander D. Johnson. Completion of a parasexual cycle in Candida albicans by induced chromosome loss in tetraploid strains. The EMBO Journal: 2505-2515. doi:10.1093/emboj/cdg235. 

^ Meleah A. Hickman, Guisheng Zeng, Anja Forche, Matthew P. Hirakawa, Darren Abbey, Benjamin D. Harrison, Yan-Ming Wang, Ching-hua Su, Richard J. Bennett, Yue Wang, Judith Berman. The ‘obligate diploid’ Candida albicansforms mating-competent haploids. Nature. 2013, 494 (7435): 55-59. doi:10.1038/nature11865. 

^ 82.0 82.1 Schaller M, Borelli C, Korting HC, Hube B. Hydrolytic enzymes as virulence factors of Candida albicans. Mycoses. 2005, 48 (6): 365-377. doi:10.1111/j.1439-0507.2005.01165.x. 

^ Monika S, Małgorzata B, Zbigniew O. Contribution of Aspartic Proteases in Candida Virulence. Protease Inhibitors against Candida Infections. Curr Protein Pept Sci.. 2017, 18 (10): 1050-1062. doi:10.2174/1389203717666160809155749. 

^ Duncan Wilson; Julian R. Naglik; Bernhard Hube. The Missing Link between Candida albicans Hyphal Morphogenesis and Host Cell Damage. PLoS Pathog. 2016, 12 (10): e1005867. PMC 5072684 . PMID 27764260. doi:10.1371/journal.ppat.1005867. 

^ Lorenz, M. C; Bender, J. A; Fink, G. R. Transcriptional Response of Candida albicans upon Internalization by Macrophages. Eukaryotic Cell. 2004, 3 (5): 1076–87. PMC 522606 . PMID 15470236. doi:10.1128/EC.3.5.1076-1087.2004. 

^ Staab, J. F. Adhesive and Mammalian Transglutaminase Substrate Properties of Candida albicans Hwp1. Science. 1999, 283 (5407): 1535–1538. Bibcode:1999Sci...283.1535S. ISSN 0036-8075. doi:10.1126/science.283.5407.1535. 

^ Clarissa J. Nobile, Emily P.Fox, Jeniel E.Nett, Trevor R. Sorrells, Quinn M. Mitrovich, Aaron D. Hernday, Brian B. Tuch, David R.Andes, Alexander D. Johnson. A Recently Evolved Transcriptional Network Controls Biofilm Development in Candida albicans. Cell. 2012, 148 (1-2): 126-138. doi:10.1016/j.cell.2011.10.048. 

^ 88.0 88.1 88.2 88.3 88.4 Clarissa J. Nobile and Alexander D. Johnson. Candida albicans Biofilms and Human Disease. Annu Rev Microbiol.. 2015, 69: 71-92. doi:10.1146/annurev-micro-091014-104330. 

^ Deborah A. Hogan, Åshild Vik, Roberto Kolter. A Pseudomonas aeruginosa quorum‐sensing molecule influences Candida albicans morphology. Molecular Microbiology. 2004, 54 (5): 1212=1223. doi:10.1111/j.1365-2958.2004.04349.x. 

^

Invasive Candidiasis. Centers for Disease Control and Prevention. 2015-06-12 [2019-03-01]. (原始内容存档于2019-01-09). 

^ 91.0 91.1 91.2 91.3

Candida infections of the mouth, throat, and esophagus. Centers for Disease Control and Prevention. 2017-08-04 [2019-03-01]. (原始内容存档于2019-01-09). 

^ 92.0 92.1 Emily R. M. Sydnor, Trish M. Perl. Hospital Epidemiology and Infection Control in Acute-Care Settings. Clinical Microbioly Review. 2011, 24 (1): 141–173. doi:10.1128/CMR.00027-10. 

^ Greenberg MS, Glick M, Ship JA. Burket's oral medicine 11th. Hamilton, Ont.: BC Decker. 2008: 79–84. ISBN 9781550093452. 

^ Scully C. Oral and maxillofacial medicine : the basis of diagnosis and treatment 3rd. Edinburgh: Churchill Livingstone. 2013: 254–267. ISBN 9780702049484. 

^

Rhodus, NL. Treatment of oral candidiasis (PDF). Northwest Dentistry. Mar–Apr 2012, 91 (2): 32–3 [2019-03-01]. PMID 22662470. (原始内容 (PDF)存档于2013-11-02). 

^

Vaginal Candidiasis. Centers for Disease Control and Prevention. 2017-08-04 [2019-03-01]. (原始内容存档于2014-12-29). 

^ Ilkit, M; Guzel, AB. The epidemiology, pathogenesis, and diagnosis of vulvovaginal candidosis: a mycological perspective. Critical Reviews in Microbiology. August 2011, 37 (3): 250–61. PMID 21599498. doi:10.3109/1040841X.2011.576332. 

^ Vaginal yeast infections fact sheet. womenshealth.gov. 2014-12-23 [2015-03-05]. (原始内容存档于2015-03-04). 

^ 99.0 99.1 Egan ME, Lipsky MS. Diagnosis of vaginitis. Am Fam Physician. September 2000, 62 (5): 1095–104. PMID 10997533. (原始内容存档于2011-06-06). 

^ James, William D.; Berger, Timothy G. Andrews' Diseases of the Skin: clinical Dermatology. Saunders Elsevier. 2006: 305. ISBN 0-7216-2921-0. 

^ James, William D.; Berger, Timothy G. Andrews' Diseases of the Skin: clinical Dermatology. Saunders Elsevier. 2006: 310. ISBN 978-0-7216-2921-6. 

^ 102.0 102.1 Patil S, Rao RS, Majumdar B, Anil S. Clinical Appearance of Oral Candida Infection and Therapeutic Strategies. Front. Microbiol. December 2015, 6: 1391. PMC 4681845 . PMID 26733948. doi:10.3389/fmicb.2015.01391. 

^ 103.0 103.1 Hidalgo JA, Vazquez JA. Candidiasis: Clinical Presentation. Medscape. WebMD. 2015-08-18 [2016-06-22]. (原始内容存档于2016-06-01). 

^ Wang ZK, Yang YS, Stefka AT, Sun G, Peng LH. Review article: fungal microbiota and digestive diseases. Aliment. Pharmacol. Ther. April 2014, 39 (8): 751–766. PMID 24612332. doi:10.1111/apt.12665. 

^ James, William D.; Berger, Timothy G. Andrews' Diseases of the Skin: clinical Dermatology. Saunders Elsevier. 2006: 309. ISBN 0-7216-2921-0. 

^

Invasive Candidiasis Statistics. Centers for Disease Control and Prevention. 2017-01-25 [2019-03-01]. (原始内容存档于2014-12-29). 

^

Symptoms of Invasive Candidiasis. Centers for Disease Control and Prevention. 2015-06-12 [2019-03-01]. (原始内容存档于2014-12-29). 

^

Information for Healthcare Professionals about Invasive Candidiasis. Centers for Disease Control and Prevention. 2015-06-12 [2019-03-01]. (原始内容存档于2019-01-09). 

^ Michael B. Edmond, Sarah E. Wallace, Donna K. McClish, Michael A. Pfaller, Ronald N. Jones, and Richard P. Wenzel. Nosocomial Bloodstream Infections in United States Hospitals: A Three-Year Analysis. Clinical Infectious Diseases. 1999, 29 (2): 239–244. doi:10.1086/520192. 

^ Weinberger, M. Characteristics of candidaemia with Candida-albicans compared with non-albicans Candida species and predictors of mortality. J Hosp Infect. 2016-04-16, 61 (2): 146–54. PMID 16009456. doi:10.1016/j.jhin.2005.02.009. 

外部連結[编辑]

维基共享资源中相关的多媒体资源:白色念珠菌

Candida Genome Database (页面存档备份,存于互联网档案馆)

U.S. National Institutes of Health on the Candida albicans genome

Mycobank上白色念珠菌的頁面 (页面存档备份,存于互联网档案馆)

研究念珠菌的實驗室列表 (页面存档备份,存于互联网档案馆)

Protein-protein interactions for Candida albicans (页面存档备份,存于互联网档案馆)

查论编传染病 · 真菌病及中孢子虫纲(英语:Mesomycetozoea) (B35–B49, 110–118)浅表性及皮肤性真菌病(皮肤真菌病(英语:Dermatomycosis)):癣(皮肤)毛孢子菌病(毛外/毛内癣菌,头发)子囊菌门皮癣菌(癣)部位鬚(英语:Tinea barbae)/头 (秃疮癣) · 体 (环癣, 园癣) · 股 · 手 · 足 · 甲 (白色 · 甲下(远端/近端))斗士体癣 · 叠瓦癣 · 难辨认癣 ·病原絮状表皮癣菌 · 犬小孢癣菌 · 羊毛状微小孢子菌 · 毛癬菌( 下颔毛癬菌 · 断发毛癣菌 · 许兰毛癣菌 · 红色毛癣菌)其它威尼克外瓶黴 (黑癣) · 何德毛结节菌/病担子菌门马拉色菌属 (花斑癬, 糠秕孢子菌毛囊炎(英语:Pityrosporum folliculitis)) · 丝孢酵母属 (白色毛结节菌病(英语:White piedra))皮下、全身性及伺机性真菌病子囊菌门雙態性(酵母+霉菌)爪甲团囊菌目粗球孢子菌/普赛德斯球抱子菌 (弥漫性/皮肤/肺球孢子菌病) · 荚膜组织胞浆菌 (皮肤/肺/播散型组织胞浆菌病) · 杜氏组织胞浆菌/病 · 洛博芽生菌/病 · 巴西副球孢子菌/病其它皮炎芽生菌 (北美/南美芽生菌病) · 申克氏孢子絲菌/孢子丝菌病) · 马尔尼菲青霉菌/病)酵母样白色念珠菌(口腔/食道/外阴/皮肤/抗生素抗生素/甲/甲沟/先天性/肛周/全身性念珠菌症, 念珠菌疹/间擦疹/尿布疹, 芽生菌性指间糜烂) · 光滑念珠菌 · 热带念珠菌 · 葡萄牙假丝酵母 · 卡氏肺孢子虫病/肺炎霉菌样曲霉菌 (曲霉菌病/肿, 过敏性支气管肺/原发性皮肤曲霉病) · 甄氏外瓶霉/病 · 裴氏/紧密/疣状着色霉 (着色芽生菌病) · 白地霉( (地霉病) · 波氏足肿菌 (波氏阿利什利霉病)担子菌门新型隐球菌/隱球菌病, 丝孢酵母属 (丝孢酵母菌病)接合菌门/病毛霉菌目/病米根霉 · 印度毛霉 · 伞枝犁头霉 · 总状共头霉蟲黴目/病)蛙粪霉/病 · 冠状/异孢耳霉 (耳霉病)微孢子蟲/病比氏肠胞微孢子虫/肠脑炎微孢子虫中孢子虫纲(英语:Mesomycetozoea)西伯鼻孢子菌(英语:Rhinosporidium seeberi) ( 鼻孢子菌病(英语:Rhinosporidiosis))未分类链格孢病 · 真菌毛囊​​炎(英语:Fungal folliculitis) · 镰刀菌属/病 · 婴儿臀部肉芽肿(英语:Granuloma gluteale infantum) · 透明丝孢霉病 · 真菌性耳炎(英语:Otomycosis) · 暗色丝孢霉病

医学导航 · 真菌病

真菌 · 分類

疾病

藥物(抗真菌藥)

分類單元識別碼Candida albicans

维基数据: Q310443

維基物種: Candida albicans

AusFungi: 60022019

臺灣物種名錄: 143709

EoL: 1013921

EPPO: CANDAL

真菌索引: 256187

GBIF: 2599597

iNaturalist: 895618

IRMNG: 10482576

ITIS: 194598

MycoBank: 256187

NBN: BMSSYS0000003266

NCBI: 5476

NZOR: b68ca8b8-874a-49f7-9ff7-a62b630b0c79

Oidium albicans

维基数据: Q59452981

AusFungi: 60022020

真菌索引: 247312

GBIF: 2599599

IRMNG: 11304730

MycoBank: 247312

NZOR: b7ae58a4-9f40-4b87-aea9-01bcd7b10b59

真菌主题分子與細胞生物學主题遺傳學主题醫學主题

取自“https://zh.wikipedia.org/w/index.php?title=白色念珠菌&oldid=80846271”

分类:​念珠菌屬肠道菌群真菌性疾病酵母隐藏分类:​典范条目物种微格式条目含有拉丁語的條目含有英語的條目包含医学声明的条目

本页面最后修订于2024年2月9日 (星期五) 01:52。

本站的全部文字在知识共享 署名-相同方式共享 4.0协议之条款下提供,附加条款亦可能应用。(请参阅使用条款)

Wikipedia®和维基百科标志是维基媒体基金会的注册商标;维基™是维基媒体基金会的商标。

维基媒体基金会是按美国国內稅收法501(c)(3)登记的非营利慈善机构。

隐私政策

关于维基百科

免责声明

行为准则

开发者

统计

Cookie声明

手机版视图

开关有限宽度模式

白色念珠菌 - 知乎

白色念珠菌 - 知乎首页知乎知学堂发现等你来答​切换模式登录/注册白色念珠菌白色念珠菌(学名:Candida albicans)是一种能造成伺机性感染的酵母菌,常见于人类消化道与泌尿生殖道的菌群,约有四成至六成健康成人的口腔与消化道中都有白色念珠菌,平时与人体行片利共生,…查看全部内容关注话题​管理​分享​百科讨论精华视频等待回答详细内容概述白色念珠菌(学名:Candida albicans)是一种能造成伺机性感染的酵母菌,常见于人类消化道与泌尿生殖道的菌群,约有四成至六成健康成人的口腔与消化道中都有白色念珠菌,平时与人体行片利共生,但可在人体免疫缺陷时过度生长而造成念珠菌症,是念珠菌属最常见的致病菌种,与热带念珠菌、近平滑念珠菌、光滑念珠菌和克鲁斯念珠菌合计造成了95%的念珠菌症感染,其中白色念珠菌便占了66%,但此比例正持续下降中。白色念珠菌造成的感染有口腔、食道与阴道等处的局部粘膜感染,也有严重的全身性感染,有研究指出后者的致死率高达40%,另有一项统计显示白色念珠菌造成的院内感染在美国每年造成2,800至11,200人死亡。白色念珠菌也是最常在医疗器材上形成生物薄膜的真菌,生物薄膜中的白色念珠菌抗性比游离成长者还高,可随着医疗器材入侵血液中而造成严重感染。白色念珠菌多以双倍体的型式存在,不同于多数真菌为单倍体,但近年渐有研究发现少数情况下白色念珠菌也可形成单倍体与四倍体,其双倍体的基因组长度为29Mb,另外其基因组中,CUG密码子对应的氨基酸为丝氨酸,与绝大多数生物中对应的亮氨酸不同,是相当罕见的遗传密码例外情形。白色念珠菌常被当作真菌感染研究的模式生物,容易在实验室中培养,并可以改变培养基成分的方式控制其生长型态。白色念珠菌属于双态性真菌,可以酵母型或菌丝型两种方式生长,除此之外还可在多种不同的形态表型间互相转换,如白色型-混浊型转换可以改变菌落的外形与基因表达,进而促进准性生殖。白色念珠菌是一种能造成伺机性感染的酵母菌名称由来白色念珠菌的学名Candida albicans为一同义反复,其中属名Candida来自拉丁文的candidus,意指白色,种小名albicans来自拉丁文的albicō,意思亦为白色。早在公元前400年,希波克拉底在其著作《论流行病》中即提到了鹅口疮,可能是白色念珠菌感染的最早记载。分类白色念珠菌的同物异名有多达上百个,最早于1853年由法国生物学家查尔斯-菲力毗·罗宾发表描述,命名为Oidium albicans,1890年,德国真菌学家弗里德里希·威廉·措普夫调整其分类,改其学名为Monilia albicans(其中Monilia来自拉丁文的monile,意指项链)。1923年,荷兰真菌学家克里斯汀·玛丽·别尔克豪特发表了新属念珠菌属,并将白色念珠菌归入该属,改为现名Candida albicans。已有许多分子系统发生学的研究以不同数量、种类的基因序列分析念珠菌属中各物种的亲缘关系:念珠菌属中,与白色念珠菌关系最近的物种为都柏林念珠菌,两者组成的演化支与热带念珠菌互为姊妹群,而三者组成的演化支又与近平滑念珠菌和长孢洛德酵母组成的演化支互为姊妹群,以上类群均以双倍体的形式存在,不同于多数真菌为单倍体,显示其共祖可能发生了单倍体-双倍体的转换。这些双倍体的类群与其他单倍体的类群(季也蒙念珠菌)、葡萄牙念珠菌与汉逊德巴利酵母共同组成念珠菌演化支,以上类群均将密码子CUG编码为丝氨酸,而不像绝大多数生物将其编码为亮氨酸,显示念珠菌演化支的共祖可能发生了一次CUG密码子对应的tRNA重组。念珠菌属并非单系群,同属念珠菌属的光滑念珠菌不属于念珠菌演化支,而是与酿酒酵母等酵母菌关系较近,共同组成酵母菌演化支,与其他念珠菌的亲缘关系较远。基因组单倍体的白色念珠菌的基因组的大小约为15Mb(双倍体约为29Mb),由8条染色体对组成,二倍体中其中一组染色体分别称为chr1A、chr2A、chr3A、chr4A、chr5A、chr6A、chr7A和chrRA,另一组染色体具有相似的名称,但最后一个字为B,如chr1B、chr2B、...和chrRB。整个基因组包含6198个开放阅读框(ORF),截至2019年2月,这些ORF中仍有70%尚未被鉴定。有研究使用四环素转录调控系统控制白色念珠菌各个基因的表现,建构了一个GRACE(基因置换和条件表达)数据库,研究白色念珠菌基因组中各基因对其生长的必要性,结果显示其中有567个基因是其生长所必须的。研究白色念珠菌最常用的菌株是WO-1和SC5314菌株,WO-1菌株可高频率地在白色型(white)与混浊型(opaque)之间互相转换,而SC5314菌株是用作基因组参考序列的菌株。白色念珠菌两种常用菌株的基因组已经完成全基因组定序,其中SC5314菌株完成于2004年,是较早完成测序的真菌之一。白色念珠菌核基因组的一大特色是密码子CUG对应的氨基酸不像其他生物中为亮氨酸,而是丝氨酸,同属念珠菌演化支的其他物种亦有此现象,这种遗传密码发生例外的情形在真核生物的细胞核基因组中是相当罕见的,在原核生物中也仅出现在起始密码子。此现象可能使白色念珠菌长期处在热休克反应的状态,有助于提升其对逆境的抗性。有研究分析比较白色念珠菌与酿酒酵母基因中的CUG密码子,发现白色念珠菌的CUG密码子(编码丝氨酸)在酿酒酵母的同源序列中大多是对应编码丝氨酸与其他亲水氨基酸的的密码子,而酿酒酵母的CUG密码子(编码亮氨酸)在白色念珠菌的同源序列中大多是对应编码亮氨酸与其他疏水氨基酸的密码子,显示CUG密码子功能的改变并未对蛋白质的构象造成太大变化。有研究将白色念珠菌识别CUG密码子的tRNA导入到酿酒酵母中表现,使其翻译时随机将部分CUG密码子辨认为对应丝氨酸,结果启动了抗逆境反应,造成酵母维持在二倍体的状态,且抑制了交配。非标准的遗传密码使白色念珠菌蛋白质交互作用的研究难以在模式生物酿酒酵母中进行,对此已有研究团队开发了白色念珠菌的双杂合系统。白色念珠菌的基因组有高度杂合性,有着大量的SNP位点,常因染色体长度多型性(重复序列的长度不一)、相互易位、染色体删除与个别染色体成为三体等因素,造成染色体数量或结构上的变异,诸如此类核型的改变会导致表型的改变,是这种真菌对不同环境适应的机制之一。随着白色念珠菌基因组信息的成功解码,关于这些机制的研究正持续进行中。研究工具白色念珠菌是用来研究真菌感染的重要模式生物,许多研究团队开发了白色念珠菌的各种数据库与其分子生物学研究的工具。2004年,多位研究者合作开发了念珠菌基因组数据库,该数据库是由酵母菌基因组数据库修改而来,许多开发者过去也曾参与酵母菌基因组数据库的构建。念珠菌基因组数据库最初提供白色念珠菌SC5314菌株的基因组信息,以全基因组霰弹枪定序法定序。后来也陆续加入白色念珠菌的其他菌株与念珠菌属的其他物种。对白色念珠菌进行转基因后,常用的选择性标记包括CaNAT1(抗诺尔丝菌素)、MPAr 与IMH3r(抗霉酚酸)等,也有使用营养缺陷型者,例如URA3基因的产物为乳清酸核苷-5'-磷酸脱羧酶,是合成单磷酸尿苷所需的酵素,为白色念珠菌生长所必须,因此URA3营养缺陷型的突变株只有在成功克隆带有URA3的质粒后才能在不含尿嘧啶的特殊培养基中生长,URA3因而可作为转基因后的选择性标记,但许多研究显示克隆的URA3从质粒整合进染色体上的位点不同,会使其表现量不同而影响白色念珠菌的致病能力,而可能造成研究中判断克隆基因功能的困难,为此已有研究团队开发组氨酸、亮氨酸与精氨酸营养缺陷型的菌株与相应质粒,这些基因的克隆不会影响白色念珠菌的致病能力,以避免使用转基因研究特定基因对致病能力影响时,对研究结果造成干扰。以质粒进行转基因时,常用于酿酒酵母的质粒在白色念珠菌中多有在染色体外不稳定或基因表达效率低下的问题,有研究团队开发了适用于白色念珠菌转基因的CIp10质粒,以核糖体蛋白RP10基因为整合进染色体中的同源序列,并带有用作选择性标记的URA3基因,因其整合进染色体的位置固定,可避免URA3表现量因整合位点不同而有异,进而影响致病能力。CIp10质粒可以高效率的克隆进白色念珠菌中,并有多个研究团队对其进行微调,设计出各种衍生的质粒。型态白色念珠菌有许多不同的形态表型,除了作为双态性真菌,可以在酵母菌型态与菌丝型态间转换之外,还可以进行通称为“高频率转换”之多种其他表型间的转换,其中被研究最多的一种转换则是某些菌株白色型-混浊型间的转换,另外还有许多其他不同的转换系统,例如SC5314菌株可在七种表型间互相转换。酵母菌型-菌丝型转换的过程相当快速,且通常整个菌落的所有细胞都会一起转换;高频率转换则可能只在菌落中的部分细胞中发生,且经转换后的细胞通常仍能进行酵母菌型-菌丝型转换。这些转换均为可逆,且常受到二氧化碳浓度、氧气浓度、培养基种类与温度等环境因子的影响。酵母菌型-菌丝型转换白色念珠菌为双态性真菌,可以酵母菌或菌丝的型式生长,其中酵母菌型生长时可进行出芽生殖,有时出芽产生的子细胞没有立即脱离,而形成类似菌丝的丝状外观,称为假菌丝。白色念珠菌在实验室常用的标准培养液生长时通常呈酵母菌型,呈卵圆形,长约6微米,不过温度、二氧化碳浓度、养分与酸碱值的些许改变便可能使其转换成菌丝型,在模拟人体生理环境的培养基中生长时亦呈菌丝型。在适合其生长的环境下,白色念珠菌菌丝萌发时直径约为2.6微米,成熟菌丝直径则约为3.4微米。两种型态在白色念珠菌感染人体时各有功能,酵母菌型较适合在血液中散播,菌丝型则有助于穿透组织、在器官中着生、躲避巨噬细胞的攻击、以及在医疗器材上形成生物薄膜,这种型态转换与其致病力密切相关,不过仍有研究指出有无法进行此转换的菌株亦可进行感染。以小分子药物抑制白色念珠菌的酵母菌型-菌丝型转换可能有助于抑制其感染。另外白色念珠菌还在环境条件恶劣时,可以形成对逆境抗性较高的厚垣孢子。厚垣孢子多着生于从菌丝分枝出去之瓶状突起的端点[1]。高频率转换除了酵母菌型-菌丝型转换外,白色念珠菌亦可进行高频率转换在多种表型间相互转换,这种转换常是自然发生,并非由特定环境因子调控,且只发生在菌落中的部分细胞。高频率转换最早于1985年由美国生物学家大卫·索尔的团队在SC5314菌株中发现,这种菌株可以在平滑、星状、不规则皱纹状、环状、点状、帽状与绒毛状等七种表型间进行转换,不同表型间转换发生的频率各异,介于万分之一至十分之一之间,且紫外线的照射可大幅提升转换发生的频率。高频率转换可能与某些基因表达的改变有关,有研究发现缺乏组蛋白脱乙酰酶SIR2的菌株出现高频率转换的几率大幅上升,显示控制转换的基因平时可能为SIR2所抑制。在各种表型间转换的能力有助于白色念珠菌在不同环境下的生长。白色型-混浊型转换此调控图中,白色与金色框线分别代表在白色型中与混浊型中表现增加的基因,蓝色调控线条为根据上位效应实验结果所绘,红色调控线条表示WOR1对各基因的调控,为根据染色质免疫沉淀实验结果所绘,而箭头(表示促进)与横杠(表示抑制)为根据两种表型中各基因的表现增减判定。白色型-混浊型转换是白色念珠菌第二种被发现的高频率转换,于1986年由大卫·索尔团队在WO-1菌株中发现,其中白色型的细胞呈圆形,形成白色、平滑的菌落,混浊型的细胞形状则较长,形成灰色且较为扁平的菌落。此转换是由WOR1蛋白调控,WOR1蛋白则受MTL基因调控,当MTLa与MTLα基因同时存在时,会产生a1-α2复合体,抑制WOR1蛋白的表现,进而抑制白色型-混浊型的转换,又因混浊型是发生准性生殖的主要表型,进行准性生殖的几率比白色型高上百万倍,自然环境中有高达95%的白色念珠菌都属MTLa/α型,因此难有此转换与交配发生[2]。白色型-混浊型转换受到许多环境因子调控,其中氧化压力会促进白色念珠菌转为混浊型,温度的提升则会促进其转为白色型,因此在宿主体内(摄氏37度)生长时白色念珠菌多为白色型,但缺氧、二氧化碳与N-乙酰葡糖胺浓度高的环境(例如消化道中)可以亦可刺激白色型-混浊型转换,使白色念珠菌呈混浊型,因此感染宿主的白色念珠菌亦可能发生交配。另外当白色念珠菌生长速率降低时,可能因细胞中得以累积足够浓度的WOR1蛋白,不因细胞分裂而快速被稀释,进而促进白色型-混浊型转换。白色型-混浊型转换对白色念珠菌的致病力也有关联。白色型较适于体内的全身性感染,混浊型则较适于皮肤的浅表感染,两种型态对宿主免疫系统的反应与耐受性也有所不同,可能有助于感染。除了白色念珠菌外,同为念珠菌属且亦可感染人体的都柏林念珠菌与热带念珠菌也能进行白色型-混浊型转换。2014年,有研究发现除了白色型与混浊型外,还有一种“灰色型”可与两型态相互转换,灰色型的白色念珠菌造成皮肤感染的能力比另外两种型态还强,发生交配的几率则介于两者之间,且白色型-灰色型的转换不需WOR1的参与。三种型态各有不同的基因表达,造成其型态、代谢、致病能力、适应宿主体内的环境与对逆境的抗性皆有所不同。其他转换除了白色型-混浊型转换外,还有许多新的白色念珠菌表型转换机制陆续被发现,分别存在不同菌株中。从人体阴道中分离的部分菌株可以在菌丝量多与菌丝量少的菌落型态之间互相转换。SC5314菌株还可进行白色型-消化道型的转换,消化道型是存在宿主消化道中的类型,其外型与混浊型相似,细胞形状较长、形成的菌落较扁,且从白色型转换的过程亦需WOR1蛋白参与,但以电子显微镜观察时可见其表面没有混浊型常有的突起,且基因表达亦与混浊型不同,并因维持MTLa/α的基因型而不像混浊型可以进行交配。消化道中可能含有刺激白色型白色念珠菌转换为消化道型的讯息,此型的白色念珠菌主要在宿主消化道中行片利共生,不对宿主健康造成负面影响。繁殖白色念珠菌过去被认为只能以有丝分裂进行无性生殖,不能进行减数分裂和产生孢子,没有以有性生殖繁殖的途径。现代研究则发现白色念珠菌亦可进行准性生殖,但仅限于MTLa或MTLα基因型的个体,MTLa/α者因会抑制白色型-混浊型转换而难以交配。混浊型的MTLa与MTLα的个体可分别释放MFa与MFα费洛蒙,与彼此细胞表面的受体结合而启动停止细胞周期、改变细胞型态等交配机制,并可形成一种称为性菌膜的生物薄膜,有助于交配进行。最终两细胞可进行核聚变而形成四倍体。四倍体在某些环境下不稳定,有丝分裂时可能发生染色体不分离而产生非整倍体,进而在多次有丝分裂后回复为二倍体,其中染色体缺失的过程有协同效应,即丢失数个染色体后,在后续的有丝分裂中继续丢失其他染色体的几率会提升。有丝分裂时Spo11蛋白可以切割DNA,促使同源染色体间发生同源重组。白色念珠菌因为双倍体,其准性生殖为二倍体-四倍体-二倍体的过程,而不同于其他真菌的单倍体-二倍体-单倍体。不过白色念珠菌的二倍体亦可能丢失染色体而形成单倍体,单倍体的a与α菌株亦可交配而形成二倍体。致病机制白色念珠菌可以分泌天冬氨酸蛋白酶、磷脂酶与脂酶,可分解宿主细胞的胞外底物与细胞膜表面物质,有助其黏着、侵入宿主的组织中,甚至可能可以用以破坏免疫细胞。2016年,有研究发现白色念珠菌感染宿主粘膜时,从酵母菌型转为菌丝型后,会分泌一种称为念珠菌素的毒素,念珠菌素长31个氨基酸,是由Kex2p蛋白酶切割Ece1p产生的一种多肽,可造成宿主上皮细胞的损伤,并刺激宿主的免疫反应。酵母菌型-菌丝型转换对白色念珠菌的致病能力相当重要。吞噬细胞是宿主抗真菌免疫反应中的重要环节,白色念珠菌被巨噬细胞内吞后,并由酵母菌型转换为菌丝型,最终穿透巨噬细胞而重新回到组织中。在巨噬细胞内部,白色念珠菌会启动许多基因的表现,改变其代谢与促进型态转换,其中许多基因为念珠菌所特有,酿酒酵母中不存在同源基因者,很可能与白色念珠菌的致病能力有关。另外菌丝型的白色念珠菌菌丝表面有Hwp1蛋白,该蛋白可与宿主上皮细胞表面的转麸酰胺酶结合,有助白色念珠菌黏附于宿主细胞,进而造成感染[3]。生物薄膜白色念珠菌还可形成结构复杂的生物薄膜,由圆球形的酵母菌、假菌丝与菌丝等各种型态的细胞与胞外底物组成,其基因表达与游离的细胞有很大的不同,其中Efg1、Tec1、Bcr1、Ndt80、Brg1与Rob1等六个转录因子对生物薄膜的形成特别重要,另外可能有上千个基因都对生物薄膜的形成有所影响。生物薄膜可以多种机制提高白色念珠菌对抗真菌剂的抗性,包括增加外排泵的表现以将药物排出胞外,以胞外底物中的水解酶分解药物,以及形成抗性很强的休眠细胞(persister cells)。生物薄膜中的酵母菌还可以向外传播,这些细胞比起正常的酵母菌型细胞有较强的黏附力,形成新的生物薄膜的能力较强,具有较高的致病能力。白色念珠菌在环境中与人体中皆可形成生物薄膜。在医疗器材上,白色念珠菌是最常被发现的真菌种类,导尿管、静脉导管、心律调节器、人工瓣膜、人工关节、隐形眼镜与假牙等医疗器材上均可能有白色念珠菌的生物薄膜生长。生物薄膜中的白色念珠菌较正常游离者对人体免疫系统的抗性较高,可能借由医疗器材入侵循环系统,造成严重的全身性感染,还可能使这些医疗器材无法正常运作。在人体中,白色念珠菌还可能与许多细菌共同形成生物薄膜,包括口腔中的转糖链球菌、格氏链球菌、粘性放线菌或细梭,肠道中的松脆杆菌、产气荚膜梭菌、大肠杆菌、克雷伯氏肺炎菌与粪肠球菌,阴道中的乳杆菌属细菌与囊肿纤维症患者肺中的绿脓杆菌,白色念珠菌与这些细菌可透过实际接触、分泌讯息分子或改变环境因子来影响彼此的行为,例如绿脓杆菌可分泌一种内酯,抑制生物薄膜中白色念珠菌菌丝的形成,但不影响其整体生长速率。还有研究显示白色念珠菌形成的生物薄膜提供了缺氧的微环境,使松脆杆菌与产气荚膜梭菌等厌氧细菌得以生长,且这些细菌可能可以促进白色念珠菌形成生物薄膜,以利自己在有氧环境下生长。白色念珠菌与细菌共同形成的生物薄膜对人体健康的影响仍不清楚。感染白色念珠菌为伺机性感染的致病真菌,平时可生长于人体的皮肤与粘膜组织中而不造成负面影响,但当其过度生长时可能造成念珠菌症的感染。念珠菌症又可依感染部位分为若干类型,包括感染口部的鹅口疮、感染阴道的念珠菌性外阴阴道炎、感染食道的念珠菌性食道炎等,甚至可能造成全身的侵入性感染,侵犯多个器官,并造成念珠菌血症(Candidemia)。念珠菌症在健康成人中比较少见,小于一个月的新生儿、艾滋病患者、癌症患者、糖尿病患者与服用抗生素与皮质类固醇等免疫缺乏者感染的风险较高。白色念珠菌也常造成医疗照顾相关感染。浅表与局部感染口腔感染据统计世界上有一半的人群口腔中有白色念珠菌,甚至有更精密的方法显示90%的人皆有,但绝大多数均不造成任何感染症状,免疫缺乏、高糖分的饮食、配戴假牙、抽烟与口干皆会造成口腔中白色念珠菌出现的几率增加。若白色念珠菌造成口腔粘膜损伤即为鹅口疮,通常不伴随其他症状且没有痛感,只有部分患者会有灼痛感,其他可能的症状还包括味觉改变、触感改变、患部发红等。医护人员常可透过简单观察口腔即作出鹅口疮的诊断,有时则需取小量检体进行培养,再于显微镜下观察鉴别。治疗鹅口疮使用的抗真菌剂包括克催玛汝、咪康唑与耐丝菌素,较严重者则可能施以氟康唑[4]。食道感染念珠菌性食道炎为白色念珠菌造成的食道感染,多发生于艾滋病患者、接受化疗的癌症患者等免疫缺乏的人群,但有时亦见于免疫力正常者中。念珠菌性食道炎的症状包括疼痛与吞咽困难,其诊断多为使用内视镜,治疗多使用氟康唑。感染念珠菌性食道炎的患者通常同时患有口腔感染[5]。阴道感染白色念珠菌为两成女性阴道菌丛的正常成分,并不造成感染,若因激素、服用药物或免疫力下降导致阴道环境改变,而使白色念珠菌大量增殖,便可能导致念珠菌性外阴阴道炎。免疫缺乏、服用避孕药、服用抗生素与妊娠均会增加感染机会,症状包括阴道痛痒、交媾与排尿时有痛感与异常的分泌物,诊断多需取小量样本进行培养,再于显微镜下观察鉴别。治疗方式于阴道涂抹抗真菌剂或口服氟康唑,严重者除继续口服氟康唑外,还可能于患部施以硼酸、耐丝菌素或氟胞嘧啶。念珠菌性外阴阴道炎是第二常见的阴道炎,仅次于细菌性阴道病。有高达75%的女性在其一生中得过至少一次念珠菌性外阴阴道炎,接近半数则超过两次。约5%的女性在一年中被感染三次以上[6]。其他除了以上部位之外,白色念珠菌还可感染指甲板而造成念珠菌性甲癣,感染甲沟造成念珠菌性甲沟炎,感染嘴角造成口角炎,感染舌头导致正中菱形舌炎,感染男性生殖器导致龟头炎,感染毛囊导致毛囊炎,在消化道过度生长而造成肠胃不适等。产道存有白色念珠菌的孕妇若发生早期羊膜囊破裂,可能造成新生儿感染先天性皮肤念珠菌病。全身性感染白色念珠菌亦可造成全身性的感染,侵入血液、心脏、眼、骨骼等部位,其中最常见者为念珠菌血症,为常见的医疗照顾相关感染,在美国每年约有46000例,患者多为原本就患有其他重大疾病者,高风险者包括装置静脉导管的患者、住院期间长的患者、加护病房的患者、施用广效型抗生素的患者、烧烫伤患者、接受全静脉营养治疗者与嗜中性白细胞低下者。全身性念珠菌症通常是以血液样本培养进行诊断,多数患者最初治疗的推荐用药为棘白菌素,感染的菌株种类与抗药性确认后则改为氟康唑,部分患者也会以氟康唑为起始用药。成功将血液中的白色念珠菌清除并消除症状后,疗程还需持续两周。1999年,一篇发表于《Clinical Infectious Diseases》的研究统计美国49间医院3年间所有在院内发生的血液感染,共记录了超过一万起感染,其中念珠菌属真菌为第四常见的病原,且以白色念珠菌为大宗。念珠菌血症的死亡率可高达40%-60%,每年造成的医疗花费超过十亿美元。百科摘录1高龄试管:警惕慢性疲劳综合征下的内容摘录Dr.HE讲生殖衰老关注40+试管备孕治疗念珠菌。白色念珠菌(酵母)是人类肠道共生菌,但过度生长可能会导致健康问题,包括CFS症状(Evengård 2007)。据报道,1100名CFS患者口服抗真菌药酮康唑(仁山利舒)和不含精致糖,果汁和酒精的饮食进行治疗,3-12个月后84%的CFS患者症状有所缓解,治疗前有685人存在学习障碍,治疗后仅12人仍学习障碍(Cater 1995)。知乎小知 摘录于 2020-04-24浏览量45.7 万讨论量133  帮助中心知乎隐私保护指引申请开通机构号联系我们 举报中心涉未成年举报网络谣言举报涉企虚假举报更多 关于知乎下载知乎知乎招聘知乎指南知乎协议更多京 ICP 证 110745 号 · 京 ICP 备 13052560 号 - 1 · 京公网安备 11010802020088 号 · 京网文[2022]2674-081 号 · 药品医疗器械网络信息服务备案(京)网药械信息备字(2022)第00334号 · 广播电视节目制作经营许可证:(京)字第06591号 · 服务热线:400-919-0001 · Investor Relations · © 2024 知乎 北京智者天下科技有限公司版权所有 · 违法和不良信息举报:010-82716601 · 举报邮箱:jubao@zhihu.

白色念珠菌症状_病因_治疗方法_鉴别_专家咨询|丁香医生

菌症状_病因_治疗方法_鉴别_专家咨询|丁香医生下载 App栏目收费说明请登录注册搜索问医生查疾病查药品查医院查检查/手术查疫苗急救指南测一测科普视频首页查疾病白色念珠菌丁香医生审稿专业委员会同行评议通过白色念珠菌就诊科室:感染科 传染科词条作者丁香医生医学团队审核专家丁香医生医学团队· 常存在于人体口腔,上呼吸道,肠道及阴道。· 可通过公共浴室物品、医疗器械等传播。· 根据感染的部位选择抗真菌的药物治疗。内容更多内容什么是白色念珠菌?

白色念珠菌又被称为白假丝酵母菌,是念珠菌的一种。常存在于人体的口腔、阴道、上呼吸道等。

当它与其它正常菌群存在相互制约的关系时,一般不会导致疾病的发生;但如果人体免疫功能失调时,菌群的相互制约关系就会发生紊乱,这个时候白色念珠菌就会大量的繁殖,从而导致人体出现一系列症状。

白色念珠菌会传染吗?

白色念珠菌是会传染的,可以通过内源性途径和外源性途径传播[1]。白色念珠菌感染患者,被白色念珠菌污染的水源、食物、医疗器械等是该菌群的传染源。

内源性传播途径:

这是比较常见的传播途径,由于定植体内的念珠菌大量繁殖,侵蚀周围的组织而引发感染,常见于消化道感染和呼吸道感染。

外源性传播途径:

通过直接接触传染,比如白色念珠菌阴道炎、男性念珠菌性龟头炎,可通过性生活传染,或者共用洗浴用品,比如毛巾、浴盆等传染;若产妇患有念珠菌性阴道病分娩的时候,可能通过母婴垂直传播给幼儿;还可以通过污染的水源、食物等方式传染;医院的医疗器械没有严格消毒成为白色念珠菌传染源,也可导致间接传染。

白色念珠菌出现失衡的原因有哪些?

白色念珠菌出现失衡的原因比较多,比如严重疾患、抵抗力下降、药物因素、侵入性诊疗措施。

免疫力下降:包括患有糖尿病、粒细胞减少症、系统性红斑狼疮、腹部疾病大手术治疗等免疫力较低的人群,或老年人、幼儿等群体免疫力较低,容易出现机体白色念珠菌失衡。

药物因素:例如长时间大剂量滥用抗生素,容易导致呼吸道、胃肠道菌群失调;再如长时间应用大剂量的肾上腺糖皮质激素、肿瘤化疗药物,都可能诱发白色念珠菌失衡。

侵入性诊疗措施:比如长时间气管插管、留置胃管、介入性治疗等容易破坏机体的正常免疫屏障导致白色念珠菌失衡。

白色念珠菌的检查方式有哪些?

白色念珠菌的检查方式与感染部位有关,一般有体格检查、真菌培养、脑脊液检查、分泌物镜检、真菌直接镜检、肠镜等确诊病情[1]。

体格检查:检查患者口腔是否有白斑,口角是否有白色糜烂、溃疡;阴道分泌物是否有豆腐渣样;中枢神经系统疾病者脑膜刺激征一般表现为阳性(阳性一般表现为头晕、头痛、恶心、呕吐、颈强直、Kernig 氏征眩晕等)。

真菌培养:比如取阴道分泌物做培养,能检查出是否有白色念珠菌。

脑脊液检查:如果怀疑中枢系统感染该病菌,可以做脑脊液检查,一般表现为革兰染色阳性、牙生孢子和假菌丝。

分泌物镜检:比如取阴道分泌物做涂片镜检,可诊断外阴阴道念珠菌病,在显微镜下可观察到分泌物是否有芽孢和假菌丝。

直接镜检:皮肤感染念珠菌可以直接做镜检,能发现大量的菌丝和成群的芽孢,具有一定的诊断意义。

肠镜:肠道感染念珠菌,表现为肠道是否出现黏膜充血、水肿、糜烂、溃疡,做肠镜检查可较清楚看到此类症状,另外肠道感染念珠菌通过粪便涂片检查也可见白色念珠菌菌丝。

白色念珠菌会引起哪些常见疾病?

白色念珠菌会引起皮肤念珠菌病、黏膜念珠菌病、内脏念珠菌病、念珠菌疹等。

皮肤念珠菌病:念珠菌感染指甲可引起念珠菌性甲沟炎;长期从事潮湿工作的人导致手指或脚趾间感染念珠菌,引发念珠菌性间擦疹;患有某些免疫缺陷或内分泌疾患,比如甲状旁腺、肾上腺功能低下等,可诱发慢性皮肤粘膜念珠菌病。

黏膜念珠菌病:多见于婴幼儿鹅口疮、生殖器念珠菌(包括女性阴道炎、男性龟头包皮炎)。

内脏念珠菌病:该病菌可累及全身的脏器,而引发肺念珠菌病、泌尿道炎、脑膜炎、心内膜炎、念珠菌性败血症等。

念珠菌疹:念珠菌及其代谢产物引起皮肤反应,形成无菌性的水泡,比如离心性环状红斑样损害、银屑病样、荨麻疹样等。

白色念珠菌病如何治疗?

白色念珠菌感染,需要明确找到病因,根据感染的部位选择抗真菌的药物,给予局部用药或全身用药[1]。

皮肤念珠菌病:可内服酮康唑、两性霉素B、盐酸特比萘芬片等,联合外涂制霉菌素软膏、酮康唑软膏等。

外生殖器念珠菌病:局部可以涂抹制霉菌素软膏、氟胞嘧啶软膏等,联合内服伏立康唑片、两性霉素 B 等,若为女性阴道念珠菌病,可结合阴道塞克霉唑栓、制霉菌素片等药物治疗[2]。

口腔感染念珠菌:可以采用制霉菌素乳膏、咪康唑散剂等局部涂抹涂抹在患处[3]。

尿道念珠菌感染:可以选择全身用药,内服氟康唑、棘白菌素、康唑等药物治疗。

但上述的药物都需要在医师的指导下应用,切勿自行用药。

参考资料监制:刘恩茂[1] 张凤民.医学微生物学(第4版)[M]. 北京.北京大学医学出版社, 2019.[2] 李娟. 口腔黏膜病患者白色念珠菌感染的临床效果观察[J]. 全科口腔医学杂志(电子版),2019,6(13):67-68.[3] 宗娟娟. 口腔白色念珠菌病86例临床分析[J]. 南昌大学学报(医学版), 2002, 42(5):92-

Microbiology Note – Online Biology Notes

Microbiology Note – Online Biology NotesSkip to contentMicrobiology Notes

MenuNotesBiographyBotany NotesHow ToHuman AnatomyAntimicrobial DrugsBasic MicrobiologyBiochemistryBiologyBiosafetyBiotechnologyCell BiologyDifferencesMoreDiseaseEnvironmental MicrobiologyEpidemiologyFood MicrobiologyGeneticsImmunologyIndustrial microbiologyMedical MicrobiologyMicrobiologistsMolecular biologyParasitologyZoology NoteBiology PracticalsUnder MicroscopeMicroscopeBiochemical TestCulture MediaCytopathologyHematologyImmunology PracticalInstrumentsLaboratory TestsMicrobiology TechniquesPractical ProcedureProtocolsSolution preparationStainingMicroorganismsBacteriologyMycologyPhycologyPrionsProtozoaVirologyOthersWeb StoryRecommended BooksCalculator ToolsResearch MethodologyShort type QuestionsSyllabusTop in MicrobiologyOld Question Paper DownloadAnswer KeyBHU Answer KeyCSIR Net Answer KeyGATE Answer KeyIIT JAM BS Answer KeyIIT JAM BT Answer KeyWorksheetFlashcardsVideoMCQBiology MemeAdvertisementsSPONSOR ADLatest NotesMesophiles – Habitat, Adaptations, Roles, Examplesby Sourav BioMarch 9, 2024What are Mesophiles? Habitat of Mesophiles Mesophiles are microorganisms that … Read moreIon exchange mechanism in Ion Exchange Chromatographyby Sourav BioFebruary 20, 2024Ion exchange chromatography (IEC) is a chromatographic technique that allows … Read moreIon Exchange Chromatography – Definition, Principle, Protocol, Applications, Examplesby Sourav BioFebruary 20, 2024omatography) is a method that permits the separation of polar molecules and ions in accordance with their affinity to the ion exchangers.Sampling of Microorganisms From Soilby Sourav BioFebruary 6, 2024Exploring the microscopic world within soil requires precise techniques for … Read moreSampling of Bacteria From Waterby Sourav BioFebruary 6, 2024When examining water samples for bacterial content, direct microscopic observation … Read moreSampling of Bacteria From Airby Sourav BioFebruary 3, 2024The process of collecting bacteria from the air for analysis … Read moreDetermination of Phosphorus In Milkby Sourav BioJanuary 31, 2024Phosphorus is an essential mineral found in many foods, including … Read moreDetermination of Magnesium In Milkby Sourav BioJanuary 30, 2024Magnesium is an essential mineral found in many foods, including … Read moreDetermination of Calcium In Milkby Sourav BioJanuary 29, 2024Milk is widely recognized as a significant source of calcium, … Read moreDetermination of Lactose In Milk by Lane-Eynon Methodby Sourav BioJanuary 29, 2024What is Lane-Eynon Method? Principle of Lane-Eynon Method The Lane-Eynon … Read moreRaw Materials for Production Mediaby Sourav BioJanuary 29, 2024Industrial fermentation processes leverage a wide array of raw materials, … Read moreProduction Media – Definition, Characteristics, Examples, Usesby Sourav BioJanuary 28, 2024What is Production Media? Production media, often associated with the … Read moreWhat is the Difference Between Holobasidium and Phragmobasidium?by Sourav BioJanuary 28, 2024What is Holobasidium? What is Basidium? What is Phragmobasidium? Difference … Read moreWhat is the Difference Between Cloaca and Anus?by Sourav BioJanuary 27, 2024What is Cloaca? Characteristics Features of Cloaca The cloaca is … Read moreBasidiomycetes – Life cycle, Characteristics, Significance, Mycelium and Examplesby MN EditorsJanuary 25, 2024Basidiomycetes are harmful as well as useful. Their attack foods and ornamental plants, cause many different diseases including seedling diseases, wood rots, root and stem rots, seed diseases (smuts), and rusts, on the other hand, it used as humans foods.Deuteromycetes – Reproduction, Characteristics, Classification and Examplesby Sourav BioJanuary 24, 2024Key Points on Deuteromycetes Here are the key points summarizing … Read moreWhat is the Difference Between Basidiomycetes and Deuteromycetesby Sourav BioJanuary 23, 2024What is Basidiomycetes? Basidiomycetes, belonging to the Basidiomycota division, represent … Read moreAmoebiasis, Entamoeba Histolytica, Life cycle, Diagnosisby Sourav BioJanuary 23, 2024What is Entamoeba Histolytica? Definition of Entamoeba Histolytica Entamoeba histolytica … Read moreSecondary Consumers – Definition, Types, Functions, Examplesby Sourav BioJanuary 21, 2024What are Secondary Consumers? Definition of Secondary Consumers Secondary consumers … Read moreDihybrid Cross Worksheetby Sourav BioJanuary 14, 2024A dihybrid cross is a genetic experiment or breeding technique … Read moreChoose your topicMicrobiology Notes

Zoology Notes

Practical Procedure

Microorganisms

Exam Preparation

OthersBasic MicrobiologyBiographyEpidemiologyEnvironmentalDifferencesDiseasesCell BiologyBiotechnologyBiosafetyBiologyBiochemistryBacteriologyAntimicrobial DrugsHuman

AnatomyMolecular BiologyMicroscopeMicrobiologistsMedical MicrobiologyIndustrial MicrobiologyImmunologyGeneticsFood MicrobiologyBioinformaticsZoology BasicsProtistaEcologyNon-chordatesChordatesPhysiologyVertebrataDevelopmental BiologyEvolutionary BiologyPest ManagmentEthologyResearch MethodologyStaining ProcedureSolution PreparationProtocolsMicrobiology TechniquesLaboratory TestsInstrumentationImmunology PracticalHematologyCytopathologyCulture Media Prep.Biochemical TestsProtozoaBacteriaVirusParasitesPrionsAlgaeProtistaFungiIIT JAM BT Answer KeyIIT JAM BS Answer KeyGATE Answer KeyCSIR Net LS Answer KeyBHU Answer KeyCalcutta University MSc Microbiology Old Question PapersCSIR NET Life Science Question PapersBHU

PET Applied microbiology Question PapersWeb StoriesVideoBiology

MCQWorksheetQ&A ForumPrivacy PolicyContact MeAbout UsAdvertise with usAffiliate DisclosureDisclaimerTerms and Conditions© 2023 Microbiologynote.comSearch for:

Adblocker detected! Please consider reading this notice.We've detected that you are using AdBlock Plus or some other adblocking software which is preventing the page from fully loading.We don't have any banner, Flash, animation, obnoxious sound, or popup ad. We do not implement these annoying types of ads!We need money to operate the site, and almost all of it comes from our online advertising.Please add Microbiologynote.com to your ad blocking whitelist or disable your adblocking software.

白色念珠菌_百度百科

白色念珠菌_百度百科

Beta

進入詞條

清除歷史記錄關閉

反饋

分享

複製鏈接

請複製以下鏈接發送給好友

https://baike.baidu.hk/item/白色念珠菌/10979788

複製

複製成功

白色念珠菌

鎖定

白色念珠菌(Monilia albican 或 candida Albicans),是一種真菌,通常存在於正常人口腔,上呼吸道,腸道及陰道,一般在正常機體中數量少,不引起疾病,當機體免疫功能或一般防禦力下降或正常菌羣相互制約作用失調,則本菌大量繁殖並改變生長形式(芽生菌絲相)侵入細胞引起疾病。

目錄

1

概述

2

生存年代

3

生存環境

4

白色念珠菌在DYMD系統的位置

5

特徵

6

致病機制的毒力因素

感染及致病機理

侵犯人體部位

7

檢查

8

培養

9

白色念珠菌病

綜述

臨牀症狀

生殖器白色念珠菌病的治療

白色念珠菌陰道炎的危害

白色念珠菌陰道炎的預防

白色念珠菌概述

白色念珠菌

白假絲酵母菌(candida Albicans)又稱白色念珠菌,廣泛存在於自然界,也存在於正常人口腔,上呼吸道,腸道及陰道,一般在正常機體中數量少,不引起疾病。為條件致病性真菌。假絲酵母菌俗稱念珠菌,有81個種,其中有11種對人有致病性:白假絲酵母菌、為最常見的致病菌。此外,熱帶假絲酵母菌、克柔假絲酵母菌和光滑假絲酵母菌也較多引起疾病。

白色念珠菌生存年代

類似的菌類化石在世界各地的前寒武紀岩石中都有發現。

白色念珠菌生存環境

念珠菌對熱的抵抗力不強,加熱至60℃1小時後即可死亡。但對乾燥、日光、紫外線及化學制劑等抵抗力較強。在假絲酵母菌中80%~90%病原體為白假絲酵母菌10%~20%為光滑假絲酵母菌、近平滑假絲酵母菌熱帶假絲酵母菌等。白假絲酵母菌為條件致病菌,10%~20%非孕婦女及30%孕婦陰道中有此菌寄生但菌量極少,呈酵母相,並不引起症狀。念珠菌生長最適宜的pH值為5.5,陰道的弱酸性環境能保持陰道的自潔功能,正常人為3.7-4.5,但陰道的弱酸性改變為pH5.5後,假絲酵母菌大量繁殖,並轉變為菌絲相,才引發陰道炎症狀。

白色念珠菌白色念珠菌在DYMD系統的位置

臨牀真菌按其所致疾病的症狀和體徵進行分類,DYMD系統(皮膚真菌、酵母菌、真菌)這一分類模式已得到公認,是以組織發生學、生理學及形態學特徵為基礎,將真菌分類為類酵母菌和絲狀真菌,又進一步按其組織親和性分別將它們分為皮膚真菌和真菌。對婦產科醫生來説,不同種類的真菌醫學相關性大不相同,迄今未發現由真菌引起的婦科疾患,由皮膚真菌引起的外陰及其周圍的皮膚感染也極少見。婦產科臨牀所見的真菌感染大多為白假絲酵母菌所致。陰道內定居的酵母菌有白假絲酵母菌、光滑假絲酵母菌、近平滑假絲酵母菌、熱帶假絲酵母菌、薔薇色假絲酵母菌、釀酒假絲酵母菌、克柔假絲酵母菌、季以蒙假絲酵母菌等。引起人類假絲酵母菌病主要是白假絲酵母菌,佔80%~90%,已鑑別有200多種白色假絲酵母菌,所有菌株似乎均具有寄居或引起陰道炎的同等能力。隨着時代的變遷,假絲酵母菌耐藥的增加,其菌種發生改變,白假絲酵母菌在外陰陰道炎中的比例有所下降,而其他假絲酵母菌所致的外陰陰道炎增加。所以,婦產科學中原稱的白假絲酵母菌外陰陰道炎似太絕對和肯定,目前稱為假絲酵母菌外陰陰道炎為宜,但菌種仍以白假絲酵母菌為主。

白色念珠菌特徵

白色念珠菌

本菌細胞呈圓形或卵圓形,很像酵母菌,直徑3~6μm,比葡萄球菌大5~6倍,革蘭陽性,但着色不均勻。出芽方式繁殖。在病灶材料中常見真菌細胞出芽生成假菌絲,假菌絲長短不一,並不分枝,假菌絲收縮斷裂又成為芽生的菌細。此菌正常情況下呈卵圓形,白假絲酵母菌與機體處於共生狀態,不引起疾病。當某些因素破壞這種平衡狀態,白假絲酵母菌由酵母相轉為菌絲相,在局部大量生長繁殖,引起皮膚、黏膜甚至全身性的假絲酵母菌病。當機體的正常防禦功能受損導致內源性感染,如創傷、抗生素應用及細胞毒藥物使用致菌羣失調或黏膜屏障功能改變、皮質激素應用、營養失調、免疫功能缺陷等。白假絲酵母菌為雙相菌,正常情況下一般為酵母相,致病時轉化為菌絲相。因此在細胞塗片或組織切片中發現假菌絲是假絲酵母菌感染的重要證據。

白色念珠菌致病機制的毒力因素

白色念珠菌感染及致病機理

包括:附着、發芽、蛋白酶、菌落轉換,以白假絲酵母菌外陰陰道炎的發病機制研究如下:⒈附着假絲酵母菌為了寄居至陰道黏膜,首先要附着在陰道上皮細胞上,白假絲酵母菌比熱帶假絲酵母菌、克魯假絲酵母菌和假熱帶假絲酵母菌更易黏着在陰道上皮細胞。但是陰道細胞在接受假絲酵母菌的程度上卻存在着相當大的人與人之間的個體差異。同樣頑固的假絲酵母菌外陰陰道炎婦女的陰道細胞也並沒有顯示出對假絲酵母菌的親和力有所增加。所有的白假絲酵母菌似乎都有寄居黏膜表面的能力,所以陰道黏膜當然就是假絲酵母菌易寄居的地方。酵母菌的附着性是由於酵母菌表面的甘露糖蛋白所致,它是通過與宿主細胞的糖蛋白的受體結合來完成。此外,疏水力和靜電引力也促進附着。附着(或稱黏附)作用是假絲酵母菌黏膜定植和入侵機體的重要環節。沒有附着能力的假絲酵母菌不致病。⒉芽管和菌絲的形成假絲酵母菌黏附陰道黏膜上皮細胞後,菌體出芽形成或假菌絲形成。菌絲的形成是假絲酵母菌有效獲取營養的方式。同樣芽管的形成增加了白假絲酵母菌附着於陰道或口腔上皮脱落細胞的能力,芽管及菌絲體的形成,助長了對陰道黏膜上皮的侵害。假絲酵母菌附着後發芽的關鍵作用是許多研究和調查急性尤其是複發性假絲酵母菌陰道炎的發病基礎。若增加或助長髮芽的內源性或外源性因素,可以趨向於引起有症狀的陰道炎的發生。相反,若抑制假絲酵母菌附着後發芽,則可預防無症狀的帶菌婦女發生急性假絲酵母菌陰道炎。菌絲能沿皮膚黏膜的溝隙生長,藉助機械力穿過表皮或上皮細胞面再行繁殖。菌絲在皮膚黏膜感染中和在播散性感染中都是假絲酵母菌毒力的重要組成部分。⒊分泌蛋白酶白假絲酵母菌能分泌多種蛋白水解酶,如鹼性磷酸酶、磷脂酶和分泌性門冬酰蛋白酶等。上述各種水解酶有助長芽管穿透到完整的黏膜上皮細胞。急性假絲酵母菌陰道炎患者比無症狀的帶菌者蛋白溶解作用為強。⒋菌落的轉換同一株白假絲酵母菌可在某些條件下出現幾種菌落形態,為高頻率可遺傳的表型變異。白色菌落轉換為不透明菌落,不透明菌落中的細胞與原來的白色菌落中的細胞不但在表型上不同,而且對真菌藥物的抗藥性升高,具有新的毒力,這包括附着能力、發芽能力、產生蛋白酶和形成菌絲體的能力都增加。不透明細胞似乎是一種特別的、侵犯組織的暫時狀態。菌落轉換通過供給侵犯身體不同部位的能力和改變了抗原性,增加假絲酵母菌的致病力。假絲酵母菌外陰陰道炎的發病機制除上述的附着、發芽、蛋白酶和菌落轉換外,還存在炎性反應。假絲酵母菌菌體成分可激活補體旁路途徑,產生補體趨化因子和過敏毒素,致局部血管擴張,通透性增高,局部水腫和炎性細胞浸潤。吞噬細胞在局部聚集,併吞噬細菌,同時釋放溶酶體酶類,致局部組織損傷。假絲酵母菌陰道炎發病機制的關鍵問題是無症狀的陰道寄居是如何轉變為有症狀的假絲酵母菌外陰陰道炎。在無症狀的帶菌狀態下,假絲酵母菌主要呈非菌絲狀態,細菌數量相對較少,在此情況下,假絲酵母菌與寄居處有保護作用的菌絲存在,以及其局部防禦機制之間保持巧妙的平衡。當存在使假絲酵母菌毒性增強的因素或局部防禦機制減弱時,就會出現有症狀的陰道炎。

白色念珠菌侵犯人體部位

白假絲酵母菌可侵犯人體許多部位,可引起:⒈皮膚念珠菌病,好發於皮膚皺褶處(腑窩、腹股溝,乳房下,肛門周圍及甲溝,指間),皮膚潮紅、潮濕、發亮,有時蓋上一層白色或呈破裂狀物,病變周圍有小水泡。⒉粘膜念珠菌病,以鵝口瘡、口角炎、陰道炎最多見,在粘膜表面蓋有凝乳大小不等的白色薄膜,剝除後,留下潮紅基底,併產生裂隙及淺表潰瘍。⒊內臟及中樞神經念珠菌病,可由粘膜皮膚等處病菌播散引起,有肺炎、腸胃炎、心內膜炎、腦膜炎、腦炎等,偶爾也可發生敗血症。

白色念珠菌檢查

⒈直接檢查法是臨牀最常用檢驗方法,陽性檢出率為60%。其優點是簡便,快捷。⑴鹽水法⑵氫氧化鉀法⒉革蘭染色法此方法陽性檢出率為80%。取分泌物塗片、固定後,革蘭染色,置顯微鏡下觀察,可見成羣革蘭染色陽性的卵圓形孢子和假菌絲。⒊培養法如疑為假絲酵母菌性陰道炎,多次檢查均為陰性,可作真菌培養。⒋菌種鑑別實驗如需確定分辨假絲酵母菌的種類,必須進行發酵試驗、同化試驗,並就其菌落形態特徵進行鑑別。⒌測定pH 值具有重要鑑別意義,若pH 值<4.5,可能為單純假絲酵母菌感染,若pH 值>4.5,並且塗片中有多量白細胞,可能存在混合感染。⒍對於年老肥胖或久治不愈患者,應查尿糖、血糖以尋找病因。其他輔助檢查:無特殊表現。

白色念珠菌培養

白色念珠菌

本菌在血瓊脂或沙保氏瓊脂上,37℃或室温孵育2~3日後,生成灰白乳酪樣菌落,塗片鏡檢,可看到表層為卵圓形芽生細胞,底層有較多假菌絲。若接種於4%玉蜀黍瓊脂上,室温孵育3~5日可見假菌絲,芽生孢子,厚膜孢子。

白色念珠菌白色念珠菌病

白色念珠菌綜述

念珠菌病主要是白假絲酵母菌引起的急性、亞急性或慢性感染,是最常見的真菌病。常侵犯皮膚、粘膜,也可引起內臟或全身感染。臨牀症狀錯綜複雜,急緩不一。兒童多為急性繼發性感染。近年來隨着大劑量抗生素、激素、免疫抑制劑的應用,以及器官移植術的開展,其發病率漸趨增高,並可危及生命造成嚴重後果。生殖器念珠菌病分為念珠菌性陰道炎和念珠菌性龜頭炎。兩者與性行為關係密切,可以通過性行為互相傳播。念珠菌性陰道炎(candidal vaginitis),又稱外陰陰道念珠菌病(vulvovaginal candidiasis,VVC),是由陰道內的念珠菌,主要為白色念珠菌引起的陰道及外陰的炎症性疾病。臨牀以典型的豆腐渣樣白帶及劇烈的外陰瘙癢為特徵。急性發作的病人如果治療不徹底則容易轉為慢性複發性念珠菌性陰道炎(RVVC)。念珠菌性龜頭炎是念珠菌引起的男性包皮龜頭的炎症。

白色念珠菌臨牀症狀

(一)皮膚念珠菌病 1.指(趾)間糜爛多見於長期從事潮濕作業的人。皮疹以第三、第四指(趾)間最為常見。指(趾)間皮膚浸漬發白,去除浸漬的表皮,呈界限清楚的濕潤面,基底潮紅,可有少量滲液。自覺微癢或疼痛感。2.念珠菌性間擦疹多見於小兒和肥胖多汗者。皮疹好發於腹股溝、臀溝、腋窩及乳房下等皺褶部位。局部有界限清楚的濕潤的糜爛面,基底潮紅,邊緣附領口狀鱗屑。外周常有散在紅色丘疹、皰疹或膿皰。3.丘疹形念珠菌病多見於肥胖兒童,可與紅痱併發。皮疹為綠豆大小扁平暗紅色丘疹,邊緣清楚,上覆灰白色領圈狀鱗屑,散在或密集分佈於胸背、臀或會陰部。同時伴發念珠菌性口角炎、口腔炎。4.念珠菌性甲溝炎、甲牀炎多見於指甲。甲溝紅腫,或有少量溢液,但不化膿,稍有疼痛和壓痛,病程慢性。甲板混濁,有白斑,變硬,表面有橫嵴和溝紋,高低不平但仍有光澤,且不破碎。5.慢性皮膚粘膜念珠菌病少見。是一種慢性進行性的念珠菌感染,常伴有某些免疫缺陷或內分泌疾患,如甲狀旁腺、腎上腺功能低下等,特別是先天性胸腺瘤。本病常是從嬰兒期開始發病,但也可發生於新生兒期。皮損好發生於頭面部、手背及四肢遠端,偶見於軀幹。初起為紅斑、丘疹鱗屑性損害,漸呈疣狀或結節狀,上覆黃褐色或黑褐色蠣殼樣痂皮,周圍有暗紅色暈。有的損害高度增生,呈圓錐形或楔形,形似皮角,去掉角質塊,其下是肉芽腫組織。愈後結痂,累及頭皮的可致脱髮。(二)粘膜念珠菌病 1.鵝口瘡多見於嬰幼兒患者,口腔粘膜、咽、舌、牙齦等處出現邊界清楚的白色假膜,外圍紅暈。去除假膜可見紅色濕潤基底。若累及口角則有口角糜爛、皸裂等,有疼痛感。2.生殖器念珠菌病包括女陰陰道炎及龜頭包皮炎。陰道分泌物粘稠、色黃或奶酪樣斑片,在陰道壁上可見灰白色假膜樣斑片,有瘙癢或灼熱感。假膜和白帶塗片可見假菌絲和成羣芽孢。男性患者較少見,多通過配偶感染,可見包皮及龜頭潮紅、乾燥光滑,包皮內側及冠狀溝可見覆有假膜的斑片。(三)內臟念珠菌病 念珠菌感染可累及全身所有內臟器官,其中以腸念珠菌病及肺念珠菌病較常見。此外,尚可引起泌尿道炎、腎孟腎炎、心內膜炎及腦膜炎等,偶可引起念珠菌性敗血症。所有內臟感染常繼發於多種慢性消耗性疾病,且有長期應用廣譜抗生素、皮質激素及化療、放療等誘發因素,症狀多無特異性,應提高警惕。(四)念珠菌疹 為念珠菌及其代謝產物引起的皮膚變態反應,主要損害為成羣的無菌性水皰,多見於手指間;也可見到銀屑病樣、玫瑰糠疹樣、脂溢性皮炎樣、蕁麻疹樣、離心性環狀紅斑樣損害。

白色念珠菌生殖器白色念珠菌病的治療

一般治療治療白假絲酵母菌感染首先應消除誘因:若有糖尿病應給予積極治療。及時停用廣譜抗生素、雌激素及皮質類固醇激素。積極治療可以消除易感因素。改變陰道酸鹼度白假絲酵母菌生長最適宜的pH值為5.5,陰道的弱酸性環境能保持陰道的自潔功能,正常人為3.7-4.5,因此用Ph4弱酸配方的女性護理液。藥物療法假絲酵母菌外陰陰道炎的治療有局部用藥、全身用藥及聯合用藥(口服加局部)等。選擇局部或全身應用抗真菌藥物;根據患者的臨牀分類,決定療程的長短。單純性VVC 的治療:局部用藥可選擇下列藥物放於陰道內:①咪康唑栓劑,每晚1 粒(200mg),連用7 天;或每晚1 粒(400mg),連用3 天;②克黴唑栓劑,每晚1 粒(150mg),塞入陰道深部,連用7 天,或每天早、晚各1 粒(150mg),連用3 天;或1 粒(500mg),單次用藥;③凝膠消毒劑,每晚一次,連用10~14 天。單純性VVC 也可選擇口服藥物:氟康唑150mg,頓服。一般用藥後2~3天症狀減輕或消失,有效率80%~90%。最早用於治療酵母菌感染的特異性活性藥物是多黴菌素,它是20世紀50年代早期分離獲得的一種聚烯類抗生素,此後又有許多種抗真菌藥物被研製出來。陰道假絲酵母菌病的臨牀用藥,多數為局部用藥,近年高效短療程的口服制劑問世,更使患者易於接受,且適用於經期及未婚女性。陰道假絲酵母菌病藥物治療中要求性伴侶作生殖器真菌培養及適當抗真菌治療,應同時用藥。治療中症狀消失後,須每次月經後複查並鞏固治療1個療程。

白色念珠菌白色念珠菌陰道炎的危害

1、造成不孕 如果患了念珠菌性陰道炎,陰道的酸鹼度的改變會使精子的活動力受到抑制,且炎性細胞可吞噬精子,並使精子活動力減弱,白色念珠菌有凝集精子的作用,以及炎症發生時的性交痛和性慾減退等,均可影響懷孕。此種不孕經積極治療後可很快恢復正常。但念珠菌性陰道炎導致的不孕是暫時性的,疾病治癒後仍可受孕。2、影響胎兒發育 孕婦患病後,極少數人陰道中的念珠菌能經宮頸上行,穿透胎膜感染胎兒,引起早產。另外,當胎兒經母親陰道分娩時,也可能被念珠菌感染,多引起口腔念珠菌病,如通常所説的鵝口瘡就是口腔念珠菌感染引起的。有些嬰兒還可能出現肛門周圍念珠菌性皮炎。由此可見,為了避免感染胎兒,孕婦患念珠菌性陰道炎後應積極治療。3、影響生活質量 得了念珠菌性陰道炎,會伴有外陰瘙癢等症狀,對女性的生活和工作會造成諸多的不便和影響,也會影響到夫妻生活。4、引起其他疾病 若念珠菌性陰道炎長期不治療的話,易造成炎症上行,引起宮頸炎和宮頸糜爛,如果病原體進入宮腔,則會引起輸卵管卵巢炎症、盆腔炎等,最後影響懷孕。

白色念珠菌白色念珠菌陰道炎的預防

當人體抵抗力下,降或患嚴重疾病以及有複合維生素B缺,乏或長期使用免疫抑制劑時,黴菌性外陰炎就容易乘虛而入。特別是春天風景好,對女性來,説也是"個多事之春”。為啥這樣説呢?因為,春季氣候潮濕,女性由於生理結構特殊,很容易被這些復甦過來的細菌侵擾,最近就有一些女性受到了黴菌的困擾。要預防這個疾病主要是養成良好的衞生習慣,勤換洗內褲並放於通風處晾;幹盆具、毛巾自己專用;內褲與襪子不同盆清洗。而對於已婚女性來,説平時做好陰道保健也很重要,除了日常清洗外,還應該讓陰道保持一定的酸鹼度,通過功能鍛鍊等恢復肌肉組織彈性,避免細菌的侵擾。放棄濫用抗生素咳嗽、發燒、頭痛,就吃抗生素?殊不知,抗生素可能抑制部分有益菌羣,黴菌就會乘機大量繁殖。因此,使用抗生素要慎之又慎。單獨清洗內褲黴菌可以在皮膚表面、胃腸道、指甲內等地方大量繁殖。如果家人或自己患有足癬、灰指甲等,就容易造成黴菌交叉感染。因此,內衣褲一定要單獨洗哦,最好用專用的ecu內衣褲除菌液浸泡幾分鐘。重視懷孕時的護養妊娠時性激素水平、陰道內糖原和酸度都會增高,容易受黴菌侵襲。對孕婦而言,不宜使用口服藥物,而應選擇針對局部的預防和輔助治療方案。警惕洗衣機幾乎每個洗衣桶內都暗藏黴菌!而且洗衣機用得越勤,黴菌越多!不過不用擔心,對付洗衣機裏的黴菌有一個百試不爽的殺手鐧:用60℃左右的熱水清洗洗衣桶就OK啦!定時用衣物除菌液清洗一下!注意公共場所衞生公共場合可能隱藏着大量的黴菌。出門在外,不要使用賓館的浴盆、要穿着長的睡衣、使用馬桶前墊上衞生紙等等。正確避孕避孕藥中的雌激素有促進黴菌侵襲的作用。如果反覆發生黴菌性陰道炎,就儘量不要使用藥物避孕。伴侶同治如果你感染了黴菌性陰道炎,需要治療的不僅是你,還有你的他,這樣才會有預期的療效。你平時日常使用女性護理液的同時也莫忙記準備一支男土護理液給他使用。穿着全棉內褲緊身化纖內褲會使陰道局部的温度及濕度增高,這可是黴菌拍手稱快的“居住”環境!還是選用棉質的內褲吧!控制血糖,正確清洗外陰女性糖尿病人陰道糖原含量高,糖原作用下發酵產生鹼性物質,令正常的陰道酸值從3.5-4.5偏離之5.5,破壞了陰道的的自潔功能,易於被黴菌侵害。所以,在控制血糖的同時,還要注意在每天清洗外陰時,選用Ph4弱酸配方的女性護理液更適合。性生活正常單純許多陰道疾病的感染途徑都是從性行為所傳遞的,如果性伴侶過多,就較難掌控是否感染的情況,所以只要性生活單純,感染特定的陰道(疾病)疾病幾率就會大大減少。心情保持愉快保持心情愉快也是一種增進免疫力的好方法,另外平常的生活作息也要正常,這樣才能讓免疫系統正常運作。

圖集

白色念珠菌的概述圖(1張)

詞條統計

瀏覽次數:次

編輯次數:42次歷史版本

最近更新:

fj8zb8

(2023-01-16)

1

概述

2

生存年代

3

生存環境

4

白色念珠菌在DYMD系統的位置

5

特徵

6

致病機制的毒力因素

6.1

感染及致病機理

6.2

侵犯人體部位

7

檢查

8

培養

9

白色念珠菌病

9.1

綜述

9.2

臨牀症狀

9.3

生殖器白色念珠菌病的治療

9.4

白色念珠菌陰道炎的危害

9.5

白色念珠菌陰道炎的預防

百科協議    隱私協議    意見反饋

Beta

進入詞條

清除歷史記錄關閉

反饋

登錄

白色念珠菌 - 维基百科,自由的百科全书

白色念珠菌 - 维基百科,自由的百科全书

跳转到内容

主菜单

主菜单

移至侧栏

隐藏

导航

首页分类索引特色内容新闻动态最近更改随机条目资助维基百科

帮助

帮助维基社群方针与指引互助客栈知识问答字词转换IRC即时聊天联络我们关于维基百科

搜索

搜索

创建账号

登录

个人工具

创建账号 登录

未登录编辑者的页面 了解详情

贡献讨论

目录

移至侧栏

隐藏

序言

1名称与分类

开关名称与分类子章节

1.1种系发生

2基因组

开关基因组子章节

2.1研究工具

3型态

开关型态子章节

3.1酵母菌型─菌丝型转换

3.2高频率转换

3.2.1白色型─混浊型转换

3.2.2其他转换

4生殖

5致病机制

开关致病机制子章节

5.1生物薄膜

6感染

开关感染子章节

6.1浅表与局部感染

6.1.1口腔感染

6.1.2食管感染

6.1.3阴道感染

6.1.4其他

6.2全身性感染

7注脚

8参考资料

9外部链接

开关目录

白色念珠菌

41种语言

العربيةمصرىБългарскиBanjarBosanskiCatalàCebuanoکوردیČeštinaDanskDeutschΕλληνικάEnglishEsperantoEspañolEestiEuskaraفارسیSuomiFrançaisGaeilgeGalegoעבריתMagyarBahasa IndonesiaItalianoNederlandsNorsk nynorskNorsk bokmålPolskiPortuguêsРусскийSimple EnglishSlovenščinaСрпски / srpskiSvenskaไทยTürkçeУкраїнськаTiếng ViệtWinaray

编辑链接

条目讨论

大陆简体

不转换简体繁體大陆简体香港繁體澳門繁體大马简体新加坡简体臺灣正體

阅读编辑查看历史

工具

工具

移至侧栏

隐藏

操作

阅读编辑查看历史

常规

链入页面相关更改上传文件特殊页面固定链接页面信息引用本页获取短URL下载二维码维基数据项目

打印/导出

下载为PDF可打印版

在其他项目中

维基共享资源维基物种

维基百科,自由的百科全书

白色念珠菌

生长于沙鲍弱氏琼脂的白色念珠菌

科学分类

界:

真菌界 Fungi

门:

子囊菌门 Ascomycota

纲:

酵母菌纲 Saccharomycetes

目:

酵母菌目 Saccharomycetales

科:

酵母菌科 Saccharomycetaceae

属:

念珠菌属 Candida

种:

白色念珠菌 C. albicans

双名法

Candida albicans(C.P.Robin(英语:Charles-Philippe Robin)) Berkhout(英语:Christine Marie Berkhout) (1923)

异名

Candida stellatoidea[1]

Monilia albicans [2][3]

Oidium albicans[4]

白色念珠菌(学名:Candida albicans)是一种能造成伺机性感染的酵母菌[5],常见于人类消化道与泌尿生殖道的菌群,约有四成至六成健康成人的口腔与消化道中都有白色念珠菌[6][7],平时与人体行片利共生,但可在人体免疫缺陷[8]时过度生长[7][9]而造成念珠菌症[7][9],是念珠菌属最常见的致病菌种,与热带念珠菌(英语:Candida tropicalis)、近平滑念珠菌(英语:Candida parapsilosis)、光滑念珠菌(英语:Candida glabrata)和克鲁斯念珠菌(英语:Candida krusei)合计造成了95%的念珠菌症感染[9][10][11],其中白色念珠菌便占了66%,但此比例正持续下降中[12]。白色念珠菌造成的感染有口腔、食管与阴道等处的局部粘膜感染,也有严重的全身性感染,有研究指出后者的致死率高达40%[13],另有一项统计显示白色念珠菌造成的院内感染在美国每年造成2,800至11,200人死亡[14]。白色念珠菌也是最常在医疗器材上形成生物薄膜的真菌,生物薄膜中的白色念珠菌抗性比游离成长者还高,可随着医疗器材入侵血液而造成严重感染[15][16]。

白色念珠菌多以双倍体的型式存在,不同于多数真菌为单倍体,但近年渐有研究发现少数情况下白色念珠菌也可形成单倍体与四倍体[17],其双倍体的基因组长度为29Mb[18],另外其基因组中,CUG密码子对应的氨基酸为丝氨酸,与绝大多数生物中对应的亮氨酸不同,是相当罕见的遗传密码例外情形。白色念珠菌常被当作真菌感染研究的模式生物,容易在实验室中培养,并可以改变培养基成分的方式控制其生长型态[19]。白色念珠菌属于双态性真菌,可以酵母型或菌丝型两种方式生长[20],除此之外还可在多种不同的形态表型间互相转换,如白色型-混浊型转换可以改变菌落的外形与基因表达,进而促进准性生殖[21]。

名称与分类[编辑]

白色念珠菌的学名Candida albicans为一同义反复,其中属名Candida来自拉丁文的candidus,意指白色,种加词albicans来自拉丁文的albicō,意思亦为白色[22]。早在公元前400年,希波克拉底在其著作《论流行病》(Of the Epidemics)中即提到了鹅口疮,可能是白色念珠菌感染的最早记载[2][23]。

白色念珠菌的同物异名有多达上百个[2][24],最早于1853年由法国生物学家查尔斯-菲力毗·罗宾(英语:Charles-Philippe Robin)发表描述,命名为Oidium albicans,1890年,德国真菌学家弗里德里希·威廉·措普夫(英语:Friedrich Wilhelm Zopf)调整其分类,改其学名为Monilia albicans(其中Monilia来自拉丁文的monile,意指项链[22])。1923年,荷兰真菌学家克里斯汀·玛丽·别尔克豪特(英语:Christine Marie Berkhout)发表了新属念珠菌属,并将白色念珠菌归入该属,改为现名Candida albicans[25]。

种系发生[编辑]

已有许多分子系统发生学的研究以不同数量、种类的基因序列分析念珠菌属中各物种的亲缘关系[11][26][27]。念珠菌属中,与白色念珠菌关系最近的物种为都柏林念珠菌(英语:Candida dubliniensis)(C. dubliniensis),两者组成的演化支与热带念珠菌(英语:Candida tropicalis)(C. tropicalis)互为姊妹群,而三者组成的演化支又与近平滑念珠菌(英语:Candida parapsilosis)(C. parapsilosis)和长孢洛德酵母(英语:Lodderomyces elongisporus)(Lodderomyces elongisporus)组成的演化支互为姊妹群,以上类群均以双倍体的形式存在,不同于多数真菌为单倍体,显示其共祖可能发生了单倍体-双倍体的转换。这些双倍体的类群与其他单倍体的类群(季也蒙念珠菌(英语:Candida guilliermondii)、葡萄牙念珠菌(英语:Candida lusitaniae)与汉逊德巴利酵母(英语:Debaryomyces hansenii))共同组成念珠菌演化支(Candida clade),以上类群均将密码子CUG编码为丝氨酸,而不像绝大多数生物将其编码为亮氨酸,显示念珠菌演化支的共祖可能发生了一次CUG密码子对应的tRNA重组。念珠菌属并非单系群[28],同属念珠菌属的光滑念珠菌(英语:Candida glabrata)不属于念珠菌演化支,而是与酿酒酵母等酵母菌关系较近,共同组成酵母菌演化支(Saccharomyces clade),与其他念珠菌的亲缘关系较远[11]。

念珠菌演化支

(双倍体)

白色念珠菌

都柏林念珠菌(英语:Candida dubliniensis)

热带念珠菌(英语:Candida tropicalis)

近平滑念珠菌(英语:Candida parapsilosis)

长孢洛德酵母(英语:Lodderomyces elongisporus)

(单倍体)

季也蒙念珠菌(英语:Candida guilliermondii)

汉逊德巴利酵母(英语:Debaryomyces hansenii)

葡萄牙念珠菌(英语:Candida lusitaniae)

酵母菌演化支

酿酒酵母等酵母属物种、光滑念珠菌(英语:Candida glabrata)等

基因组[编辑]

扫描电子显微镜下的白色念珠菌

单倍体的白色念珠菌的基因组的大小约为15Mb(双倍体约为29Mb)[29],由8条染色体对组成,二倍体中其中一组染色体分别称为chr1A、chr2A、chr3A、chr4A、chr5A、chr6A、chr7A和chrRA,另一组染色体具有相似的名称,但最后一个字为B,如chr1B、chr2B、...和chrRB。整个基因组包含6198个开放阅读框(ORF),截至2019年2月,这些ORF中仍有70%尚未被鉴定[30]。有研究使用四环素转录调控系统控制白色念珠菌各个基因的表现,建构了一个GRACE(基因置换和条件表达)数据库,研究白色念珠菌基因组中各基因对其生长的必要性,结果显示其中有567个基因是其生长所必须的[31][32]。研究白色念珠菌最常用的菌株是WO-1和SC5314菌株,WO-1菌株可高频率地在白色型(white)与混浊型(opaque)之间互相转换,而SC5314菌株是用作基因组参考序列的菌株[33]。白色念珠菌两种常用菌株的基因组已经完成全基因组测序[8],其中SC5314菌株完成于2004年[34],是较早完成测序的真菌(英语:List of sequenced fungi genomes)之一。

白色念珠菌核基因组的一大特色是密码子CUG对应的氨基酸不像其他生物中为亮氨酸,而是丝氨酸,同属念珠菌演化支的其他物种亦有此现象[11],这种遗传密码发生例外的情形在真核生物的细胞核基因组中是相当罕见的,在原核生物中也仅出现在起始密码子[35][36][37]。此现象可能使白色念珠菌长期处在热休克反应(英语:Heat shock response)的状态,有助于提升其对逆境的抗性[38]。有研究分析比较白色念珠菌与酿酒酵母基因中的CUG密码子,发现白色念珠菌的CUG密码子(编码丝氨酸)在酿酒酵母的同源序列中大多是对应编码丝氨酸与其他亲水氨基酸的密码子,而酿酒酵母的CUG密码子(编码亮氨酸)在白色念珠菌的同源序列中大多是对应编码亮氨酸与其他疏水氨基酸的密码子,显示CUG密码子功能的改变并未对蛋白质的构象造成太大变化[11]。有研究将白色念珠菌识别CUG密码子的tRNA导入到酿酒酵母中表现,使其翻译时随机将部分CUG密码子辨认为对应丝氨酸,结果启动了抗逆境反应,造成酵母维持在二倍体的状态,且抑制了交配[39]。非标准的遗传密码使白色念珠菌蛋白质交互作用的研究难以在模式生物酿酒酵母中进行,对此已有研究团队开发了白色念珠菌的双杂合系统[40]。

白色念珠菌的基因组有高度杂合性,有着大量的SNP位点,常因染色体长度多型性(重复序列的长度不一)、相互易位、染色体删除与个别染色体成为三体等因素,造成染色体数量或结构上的变异,诸如此类核型的改变会导致表型的改变,是这种真菌对不同环境适应的机制之一。随着白色念珠菌基因组信息的成功解码,关于这些机制的研究正持续进行中[41][42][43]。

研究工具[编辑]

白色念珠菌是用来研究真菌感染的重要模式生物[44],许多研究团队开发了白色念珠菌的各种数据库与其分子生物学研究的工具[8]。2004年,多位研究者合作开发了念珠菌基因组数据库(Candida Genome Database, CGD),该数据库是由酵母菌基因组数据库(英语:Saccharomyces Genome Database)修改而来,许多开发者过去也曾参与酵母菌基因组数据库的构建[45]。念珠菌基因组数据库最初提供白色念珠菌SC5314菌株的基因组信息,以全基因组霰弹枪测序法测序[46]。后来也陆续加入白色念珠菌的其他菌株与念珠菌属的其他物种[45]。

对白色念珠菌进行基因克隆后,常用的选择性标记包括CaNAT1(抗诺尔丝菌素(英语:nourseothricin))、MPAr 与IMH3r(抗霉酚酸)等,也有使用营养缺陷型(英语:Auxotrophy)者,例如URA3基因的产物为乳清酸核苷-5'-磷酸脱羧酶,是合成单磷酸尿苷所需的酵素,为白色念珠菌生长所必须,因此URA3营养缺陷型的突变株只有在成功克隆带有URA3的质粒后才能在不含尿嘧啶的特殊培养基中生长,URA3因而可作为基因克隆后的选择性标记,但许多研究显示克隆的URA3从质粒整合进染色体上的位点不同,会使其表现量不同而影响白色念珠菌的致病能力,而可能造成研究中判断克隆基因功能的困难[47],为此已有研究团队开发组氨酸(HIS1)、亮氨酸(LEU2)与精氨酸(ARG4)营养缺陷型的菌株与相应质粒,这些基因的克隆不会影响白色念珠菌的致病能力,以避免使用基因克隆研究特定基因对致病能力影响时,对研究结果造成干扰[48]。

以质粒进行基因克隆时,常用于酿酒酵母的质粒在白色念珠菌中多有在染色体外不稳定或基因表达效率低下的问题,有研究团队开发了适用于白色念珠菌基因克隆的CIp10(Candida integrating plasmid 10)质粒,以核糖体蛋白RP10[注 1]基因为整合进染色体中的同源序列,并带有用作选择性标记的URA3基因[50],因其整合进染色体的位置固定,可避免URA3表现量因整合位点不同而有异,进而影响致病能力[48]。CIp10质粒可以高效率的克隆进白色念珠菌中,并有多个研究团队对其进行微调,设计出各种衍生的质粒[51][52]。

型态[编辑]

白色念珠菌的菌落,下方为平滑型(smooth),上方则为皱纹型(wrinkled)

白色念珠菌有许多不同的形态表型,除了作为双态性真菌,可以在酵母菌型态与菌丝型态间转换之外,还可以进行通称为“高频率转换”(high-frequency switching)之多种其他表型间的转换,其中被研究最多的一种转换则是某些菌株白色型-混浊型间的转换[53],另外还有许多其他不同的转换系统,例如SC5314菌株可在七种表型间互相转换[54][55]。酵母菌型-菌丝型转换的过程相当快速,且通常整个菌落的所有细胞都会一起转换;高频率转换则可能只在菌落中的部分细胞中发生,且经转换后的细胞通常仍能进行酵母菌型-菌丝型转换。这些转换均为可逆,且常受到二氧化碳浓度、氧气浓度、培养基种类与温度等环境因子的影响[56]。

酵母菌型─菌丝型转换[编辑]

白色念珠菌为双态性真菌,可以酵母菌或菌丝的型式生长,其中酵母菌型生长时可进行出芽生殖,有时出芽产生的子细胞没有立即脱离,而形成类似菌丝的丝状外观,称为假菌丝(pseudohypha)[57]。白色念珠菌在实验室常用的标准培养液生长时通常呈酵母菌型,呈卵圆形,长约6微米[20],不过温度、二氧化碳浓度、养分与酸碱值的些许改变便可能使其转换成菌丝型[58][59],在模拟人体生理环境的培养基中生长时亦呈菌丝型。在适合其生长的环境下,白色念珠菌菌丝萌发时直径约为2.6微米,成熟菌丝直径则约为3.4微米[20]。两种型态在白色念珠菌感染人体时各有功能,酵母菌型较适合在血液中散播,菌丝型则有助于穿透组织、在器官中着生、躲避巨噬细胞的攻击、以及在医疗器材上形成生物薄膜[57][60][61],这种型态转换与其致病力密切相关,不过仍有研究指出有无法进行此转换的菌株亦可进行感染。以小分子药物抑制白色念珠菌的酵母菌型─菌丝型转换可能有助于抑制其感染。[62][63]

另外白色念珠菌还在环境条件恶劣时,可以形成对逆境抗性较高的厚垣孢子。厚垣孢子多着生于从菌丝分枝出去之瓶状突起的端点[64]。

白色念珠菌(酵母菌型,正进行出芽生殖)白色念珠菌(酵母菌型,形成假菌丝)白色念珠菌(菌丝型)

高频率转换[编辑]

上方为白色型的白色念珠菌,细胞呈圆形;下方则为混浊型,细胞形状较长。比例尺为5微米

除了酵母菌型-菌丝型转换外,白色念珠菌亦可进行高频率转换(high-frequency switching),在多种表型间相互转换,这种转换常是自然发生,并非由特定环境因子调控,且只发生在菌落中的部分细胞[56]。高频率转换最早于1985年由美国生物学家大卫·索尔(英语:David R. Soll)的团队在SC5314菌株中发现,这种菌株可以在平滑(smooth)[注 2]、星状(star)、不规则皱纹状(irregular wrinkle)、环状(ring)、点状(stipple)、帽状(hat)与绒毛状(fuzzy)等七种表型间进行转换,不同表型间转换发生的频率各异,介于万分之一至十分之一之间,且紫外线的照射可大幅提升转换发生的频率[53][55]。高频率转换可能与某些基因表达的改变有关,有研究发现缺乏组蛋白脱乙酰酶SIR2的菌株出现高频率转换的几率大幅上升,显示控制转换的基因平时可能为SIR2所抑制[65]。在各种表型间转换的能力有助于白色念珠菌在不同环境下的生长[66]。

白色型─混浊型转换[编辑]

此调控图中,白色与金色框线分别代表在白色型中与混浊型中表现增加的基因,蓝色调控线条为根据上位效应实验结果所绘,红色调控线条表示WOR1对各基因的调控,为根据染色质免疫沉淀实验结果所绘,而箭头(表示促进)与横杠(表示抑制)为根据两种表型中各基因的表现增减判定。

白色型─混浊型转换(white-to-opaque switching)是白色念珠菌第二种被发现的高频率转换,于1986年由大卫·索尔团队在WO-1菌株中发现,其中白色型(white)的细胞呈圆形,形成白色、平滑的菌落,混浊型(opaque)的细胞形状则较长,形成灰色且较为扁平的菌落[54]。此转换是由WOR1(White to Opaque Regulator 1)蛋白调控,WOR1蛋白则受MTL基因调控,当MTLa与MTLα基因同时存在时,会产生a1-α2复合体,抑制WOR1蛋白的表现,进而抑制白色型─混浊型的转换[67],又因混浊型是发生准性生殖的主要表型,进行准性生殖的几率比白色型高上百万倍[68][69],自然环境中有高达95%的白色念珠菌都属MTLa/α型,因此难有此转换与交配发生[21][68]。

白色型─混浊型转换受到许多环境因子调控,其中氧化压力会促进白色念珠菌转为混浊型,温度的提升则会促进其转为白色型,因此在宿主体内(摄氏37度)生长时白色念珠菌多为白色型,但缺氧[注 3]、二氧化碳与N-乙酰葡糖胺[注 4]浓度高的环境(例如消化道中)可以亦可刺激白色型─混浊型转换,使白色念珠菌呈混浊型,因此感染宿主的白色念珠菌亦可能发生交配[71]。另外当白色念珠菌生长速率降低时,可能因细胞中得以累积足够浓度的WOR1蛋白,不因细胞分裂而快速被稀释,进而促进白色型─混浊型转换[68]。白色型─混浊型转换对白色念珠菌的致病力也有关联。白色型较适于体内的全身性感染,混浊型则较适于皮肤的浅表感染,两种型态对宿主免疫系统的反应与耐受性也有所不同,可能有助于感染[68]。

除了白色念珠菌外,同为念珠菌属且亦可感染人体的都柏林念珠菌(英语:Candida dubliniensis)与热带念珠菌(英语:Candida tropicalis)也能进行白色型─混浊型转换[72]。2014年,有研究发现除了白色型与混浊型外,还有一种“灰色型”可与两型态相互转换,灰色型的白色念珠菌造成皮肤感染的能力比另外两种型态还强,发生交配的几率则介于两者之间,且白色型─灰色型的转换不需WOR1的参与。三种型态各有不同的基因表达,造成其型态、代谢、致病能力、适应宿主体内的环境与对逆境的抗性皆有所不同[72]。

其他转换[编辑]

除了白色型─混浊型转换外,还有许多新的白色念珠菌表型转换机制陆续被发现,分别存在不同菌株中[56]。从人体阴道中分离的部分菌株可以在菌丝量多与菌丝量少的菌落型态之间互相转换[73]。SC5314菌株还可进行白色型─消化道型的转换,消化道型(Gastrointestinally-IndUced Transition, GUT)是存在宿主消化道中的类型,其外型与混浊型相似,细胞形状较长、形成的菌落较扁,且从白色型转换的过程亦需WOR1蛋白参与,但以电子显微镜观察时可见其表面没有混浊型常有的突起,且基因表达亦与混浊型不同,并因维持MTLa/α的基因型而不像混浊型可以进行交配。消化道中可能含有刺激白色型白色念珠菌转换为消化道型的讯息,此型的白色念珠菌主要在宿主消化道中行片利共生,不对宿主健康造成负面影响[74][75]。

生殖[编辑]

白色念珠菌准性生殖的过程

主条目:准性生殖

白色念珠菌过去被认为只能以有丝分裂进行无性生殖,不能进行减数分裂和产生孢子,没有以有性生殖繁殖的途径。现代研究则发现白色念珠菌亦可进行准性生殖[76],但仅限于MTLa或MTLα基因型的个体,MTLa/α者因会抑制白色型-混浊型转换而难以交配(详见#白色型─混浊型转换一节)[21]。混浊型的MTLa与MTLα的个体可分别释放MFa与MFα费洛蒙,与彼此细胞表面的受体结合而启动停止细胞周期、改变细胞型态等交配机制[77],并可形成一种称为性菌膜(sexual biofilm)的生物薄膜,有助于交配进行[76][78]。最终两细胞可进行核聚变(英语:karyogamy)而形成四倍体。四倍体在某些环境下不稳定,有丝分裂时可能发生染色体不分离而产生非整倍体,进而在多次有丝分裂后回复为二倍体[79],其中染色体缺失的过程有协同效应,即丢失数个染色体后,在后续的有丝分裂中继续丢失其他染色体的几率会提升[80]。有丝分裂时Spo11蛋白可以切割DNA,促使同源染色体间发生同源重组[76][79]。

白色念珠菌因为双倍体,其准性生殖为二倍体-四倍体-二倍体的过程,而不同于其他真菌的单倍体-二倍体-单倍体。不过白色念珠菌的二倍体亦可能丢失染色体而形成单倍体,单倍体的a与α菌株亦可交配而形成二倍体[76][81]。

致病机制[编辑]

白色念珠菌可以分泌天冬氨酸蛋白酶(secreted aspartic proteinases, Saps)、磷脂酶与脂酶,可分解宿主细胞的胞外底物与细胞膜表面物质[82],有助其黏着、侵入宿主的组织中[83],甚至可能可以用以破坏免疫细胞[82]。2016年,有研究发现白色念珠菌感染宿主粘膜时,从酵母菌型转为菌丝型后,会分泌一种称为念珠菌素(英语:Candidalysin)的毒素(英语:Mycotoxin),念珠菌素长31个氨基酸,是由Kex2p蛋白酶切割Ece1p产生的一种多肽,可造成宿主上皮细胞的损伤,并刺激宿主的免疫反应[84]。

酵母菌型-菌丝型转换对白色念珠菌的致病能力相当重要。吞噬细胞是宿主抗真菌免疫反应中的重要环节,白色念珠菌被巨噬细胞内吞后,并由酵母菌型转换为菌丝型,最终穿透巨噬细胞而重新回到组织中。在巨噬细胞内部,白色念珠菌会启动许多基因的表现,改变其代谢与促进型态转换,其中许多基因为念珠菌所特有,酿酒酵母中不存在同源基因者,很可能与白色念珠菌的致病能力有关[85]。另外菌丝型的白色念珠菌菌丝表面有Hwp1(英语:Hwp1)(Hyphal wall protein 1)蛋白,该蛋白可与宿主上皮细胞表面的转麸酰胺酶(英语:Transglutaminase)结合,有助白色念珠菌黏附于宿主细胞,进而造成感染[86]。

生物薄膜[编辑]

白色念珠菌形成的生物薄膜

白色念珠菌还可形成结构复杂的生物薄膜,由圆球形的酵母菌、假菌丝与菌丝等各种型态的细胞与胞外底物组成,其基因表达与游离的细胞有很大的不同,其中Efg1、Tec1、Bcr1、Ndt80、Brg1与Rob1等六个转录因子对生物薄膜的形成特别重要,另外可能有上千个基因都对生物薄膜的形成有所影响[87][88]。生物薄膜可以多种机制提高白色念珠菌对抗真菌剂的抗性,包括增加外排泵(英语:Efflux (microbiology))的表现以将药物排出胞外,以胞外底物中的水解酶分解药物,以及形成抗性很强的休眠细胞(persister cells)。生物薄膜中的酵母菌还可以向外传播,这些细胞比起正常的酵母菌型细胞有较强的黏附力,形成新的生物薄膜的能力较强,具有较高的致病能力[88]。

白色念珠菌在环境中与人体中皆可形成生物薄膜。在医疗器材上,白色念珠菌是最常被发现的真菌种类[15],导尿管、静脉导管、心律调节器、人工瓣膜(英语:Artificial heart valve)、人工关节、隐形眼镜与假牙等医疗器材上均可能有白色念珠菌的生物薄膜生长。生物薄膜中的白色念珠菌较正常游离者对人体免疫系统的抗性较高,可能借由医疗器材入侵循环系统,造成严重的全身性感染,还可能使这些医疗器材无法正常运作[88]。

在人体中,白色念珠菌还可能与许多细菌共同形成生物薄膜,包括口腔中的转糖链球菌(英语:Streptococcus mutans)、格氏链球菌(英语:Streptococcus gordonii)、粘性放线菌或细梭菌(英语:Fusobacterium),肠道中的松脆杆菌(英语:Bacteroides fragilis)、产气荚膜梭菌、大肠杆菌、克雷伯氏肺炎菌与粪肠球菌(英语:Enterococcus faecalis),阴道中的乳杆菌属细菌与囊肿纤维症患者肺中的绿脓杆菌,白色念珠菌与这些细菌可透过实际接触、分泌讯息分子或改变环境因子来影响彼此的行为,例如绿脓杆菌可分泌一种内酯,抑制生物薄膜中白色念珠菌菌丝的形成,但不影响其整体生长速率[88][89]。还有研究显示白色念珠菌形成的生物薄膜提供了缺氧的微环境,使松脆杆菌与产气荚膜梭菌等厌氧细菌得以生长,且这些细菌可能可以促进白色念珠菌形成生物薄膜,以利自己在有氧环境下生长。白色念珠菌与细菌共同形成的生物薄膜对人体健康的影响仍不清楚[88]。

感染[编辑]

维基百科中的医学内容仅供参考,并不能视作专业意见。如需获取医疗帮助或意见,请咨询专业人士。详见医学声明。

主条目:念珠菌症

白色念珠菌为伺机性感染的致病真菌,平时可生长于人体的皮肤与粘膜组织中而不造成负面影响,但当其过度生长时可能造成念珠菌症的感染。念珠菌症又可依感染部位分为若干类型,包括感染口部的鹅口疮、感染阴道的念珠菌性外阴阴道炎、感染食管的念珠菌性食管炎(英语:esophageal candidiasis)等,甚至可能造成全身的侵入性感染,侵犯多个器官,并造成念珠菌血症(Candidemia)[90]。念珠菌症在健康成人中比较少见,小于一个月的新生儿、艾滋病患者、癌症患者、糖尿病患者与服用抗生素与皮质类固醇等免疫缺乏者感染的风险较高[91]。白色念珠菌也常造成医疗照顾相关感染[92]。

浅表与局部感染[编辑]

口腔感染[编辑]

鹅口疮为白色念珠菌感染口腔造成

主条目:鹅口疮

据统计,世界上有一半的人群口腔中有白色念珠菌[6],甚至有更精密的方法显示90%的人皆有,但绝大多数不造成任何感染症状[93],免疫缺乏、高糖分的饮食、配戴假牙、抽烟与口干皆会造成口腔中白色念珠菌出现的几率增加[94]。若白色念珠菌造成口腔粘膜损伤即为鹅口疮,通常不伴随其他症状且没有痛感,只有部分患者会有灼痛感[95],其他可能的症状还包括味觉改变、触感改变、患部发红等[91]。医护人员常透过简单观察口腔即作出鹅口疮的诊断,有时则需取小量检体进行培养,再于显微镜下观察鉴别。治疗鹅口疮使用的抗真菌剂包括克催玛汝、咪康唑与耐丝菌素,较严重者则可能施以氟康唑[91]。

食管感染[编辑]

念珠菌性食管炎(英语:esophageal candidiasis)为白色念珠菌造成的食管感染,多发生于艾滋病患者、接受化疗的癌症患者等免疫缺乏的人群,但有时亦见于免疫力正常者中。念珠菌性食管炎的症状包括疼痛与吞咽困难,其诊断多为使用内视镜,治疗多使用氟康唑。感染念珠菌性食管炎的患者通常同时患有口腔感染[91]。

阴道感染[编辑]

白色念珠菌造成的阴道感染示意图

主条目:念珠菌性外阴阴道炎

白色念珠菌为两成女性阴道菌丛的正常成分,并不造成感染,若因激素、服用药物或免疫力下降导致阴道环境改变,而使白色念珠菌大量增殖,便可能导致念珠菌性外阴阴道炎。免疫缺乏、服用避孕药、服用抗生素与妊娠均会增加感染机会,症状包括阴道痛痒、性交与排尿时有痛感与异常的分泌物,诊断多需取小量样本进行培养,再于显微镜下观察鉴别。治疗方式于阴道涂抹抗真菌剂或口服氟康唑,严重者除继续口服氟康唑外,还可能于患部施以硼酸、耐丝菌素或氟胞嘧啶[96]。

念珠菌性外阴阴道炎是第二常见的阴道炎,仅次于细菌性阴道病[97]。有高达75%的女性在其一生中得过至少一次念珠菌性外阴阴道炎,接近半数超过两次[98][99]。约5%的女性在一年中被感染三次以上[99]。

其他[编辑]

除了以上部位之外,白色念珠菌还可感染指甲而造成念珠菌性甲癣(英语:Candidal onychomycosis)[100],感染甲沟造成念珠菌性甲沟炎[101],感染嘴角造成口角炎[102],感染舌头导致正中菱形舌炎(英语:median rhomboid glossitis)[102],感染男性生殖器导致龟头炎[103],感染毛囊导致毛囊炎[103],在消化道过度生长而造成肠胃不适等[104]。产道存有白色念珠菌的孕妇若发生早期羊膜囊破裂,可能造成新生儿感染先天性皮肤念珠菌病(英语:Congenital cutaneous candidiasis)[105]。

全身性感染[编辑]

白色念珠菌亦可造成全身性的感染,侵入血液、心脏、眼、骨骼等部位,其中最常见者为念珠菌血症(Candidemia),为常见的医疗照顾相关感染,在美国每年约有46000例[106],患者多为原本就患有其他重大疾病者[107],高风险者包括装置静脉导管的患者、住院期间长的患者、加护病房的患者、施用广效型抗生素的患者、烧烫伤患者、接受全静脉营养治疗者与嗜中性白细胞低下者[92]。

全身性念珠菌症通常是以血液样本培养进行诊断,多数患者最初治疗的推荐用药为棘白菌素(英语:echinocandin),感染的菌株种类与抗药性确认后则改为氟康唑,部分患者也会以氟康唑为起始用药。成功将血液中的白色念珠菌清除并消除症状后,疗程还需持续两周[108]。1999年,一篇发表于《Clinical Infectious Diseases(英语:Clinical Infectious Diseases)》的研究统计美国49间医院3年间所有在院内发生的血液感染,共记录了超过一万起感染,其中念珠菌属真菌为第四常见的病原,且以白色念珠菌为大宗[57][109]。念珠菌血症的死亡率可高达40%-60%[8][110],每年造成的医疗花费超过十亿美元[57]。

注脚[编辑]

^ 与酿酒酵母的RPS10A, RPS10B基因同源[49]。

^ 又分为转换前的原始平滑(original smooth)与转换后由其他表型回复的回复平滑(revertant smooth),两者型态可能有所差异。[55]

^ 可能原因为缺氧状态下麦角固醇缺乏而刺激白色型─混浊型转换[70]

^ 宿主肠道菌丛分泌的糖类[71]。

参考资料[编辑]

^

Candida albicans at NCBI Taxonomy browser (页面存档备份,存于互联网档案馆)

^ 2.0 2.1 2.2 Kurtzman, C. P.; Fell, Jack W. The yeasts, a taxonomic study 4. 1998. ISBN 978-0444813121. 

^

Simi, Vincent. Origin of the Names of Species of Candida (PDF). [2018-12-06]. (原始内容存档 (PDF)于2015-06-21). 

^ McClary, Dan Otho. Factors Affecting the Morphology of Candida Albicans. Annals of the Missouri Botanical Garden. May 1952, 39 (2): 137–164. JSTOR 2394509. doi:10.2307/2394509. 

^ Gow, N.A.R. Microbe Profile: Candida albicans: a shape-changing, opportunistic pathogenic fungus of humans. Microbiology. 2017, 163 (8): 1145–1147. PMID 28809155. doi:10.1099/mic.0.000499. 

^ 6.0 6.1 Kerawala C, Newlands C (编). Oral and maxillofacial surgery. Oxford: Oxford University Press. 2010: 446, 447. ISBN 978-0-19-920483-0. 

^ 7.0 7.1 7.2 Erdogan A, Rao SS. Small intestinal fungal overgrowth. Curr Gastroenterol Rep. April 2015, 17 (4): 16. PMID 25786900. doi:10.1007/s11894-015-0436-2. 

^ 8.0 8.1 8.2 8.3 Calderone A, Clancy CJ (编). Candida and Candidiasis 2nd. ASM Press. 2012. ISBN 978-1-55581-539-4. 

^ 9.0 9.1 9.2 Martins N, Ferreira IC, Barros L, Silva S, Henriques M. Candidiasis: predisposing factors, prevention, diagnosis and alternative treatment. Mycopathologia. June 2014, 177 (5–6): 223–240. PMID 24789109. doi:10.1007/s11046-014-9749-1. 

^ Pfaller MA, Diekema DJ. Epidemiology of invasive candidiasis: a persistent public health problem. Clin Microbiol Rev. January 2007, 20 (1): 133–163. PMC 1797637 . PMID 17223626. doi:10.1128/CMR.00029-06. 

^ 11.0 11.1 11.2 11.3 11.4 Geraldine Butler, Matthew D. Rasmussen, Christina A. Cuomo. Evolution of pathogenicity and sexual reproduction in eight Candida genomes. Nature. 2009, 459 (7247): 657-662. doi:10.1038/nature08064. 

^ M. A. Pfaller, D. J. Diekema. Epidemiology of Invasive Candidiasis: a Persistent Public Health Problem. Clinical Microbiology Reviews. 2007, 20 (1): 133-163. doi:10.1128/CMR.00029-06. 

^ Singh, Rachna; Chakrabarti, Arunaloke. Invasive Candidiasis in the Southeast-Asian Region. Prasad, Rajendra (编). Candida albicans: Cellular and Molecular Biology 2. Switzerland: Springer International Publishing AG. 2017: 27. ISBN 978-3-319-50408-7. 

^ Pfaller, M. A.; Diekema, D. J. Epidemiology of Invasive Candidiasis: A Persistent Public Health Problem. Clinical Microbiology Reviews. 2007, 20 (1): 133–63. PMC 1797637 . PMID 17223626. doi:10.1128/CMR.00029-06. 

^ 15.0 15.1 Kumamoto CA. Candida biofilms. Current Opinion in Microbiology. 2002, 5 (6): 608–11. PMID 12457706. doi:10.1016/s1369-5274(02)00371-5. 

^ Donlan RM. Biofilm formation: a clinically relevant microbiological process. Clinical Infectious Diseases. 2001, 33 (8): 1387–92. PMID 11565080. doi:10.1086/322972. 

^ Hickman MA, Zeng G, Forche A, Hirasawa MP, Abbey D, Harrison BD, Wang YM, Su CH, Bennett RJ, Wang Y, Berman J. The 'obligate diploid' Candida albicans forms mating-competent haploids. Nature. 2016, 494 (7435): 55–59. Bibcode:2013Natur.494...55H. PMC 3583542 . PMID 23364695. doi:10.1038/nature11865. 

^

Candida albicans SC5314 Genome Snapshot/Overview. www.candidagenome.org. [2018-03-27]. (原始内容存档于2018-11-16). 

^ Development of Candida albicans Hyphae in Different Growth Media – Variations in Growth Rates, Cell Dimensions and Timing of Morphogenetic Events (PDF) (132). 1986. 

^ 20.0 20.1 20.2 Frans M. Klis, Chris G. de Koster, Stanley Brul. Cell Wall-Related Bionumbers and Bioestimates of Saccharomyces cerevisiae and Candida albicans. Eukaryot Cell. 2014, 13 (1): 2–9. doi:10.1128/EC.00250-13. 

^ 21.0 21.1 21.2 Christina M. Hull, Ryan M. Raisner, Alexander D. Johnson. Evidence for Mating of the "Asexual" Yeast Candida albicans in a Mammalian Host. Science. 2000, 289 (5477): 307-310. doi:10.1126/science.289.5477.307. 

^ 22.0 22.1 William S. Haubrich. Medical Meanings: A Glossary of Word Origins. ACP Press. 2003: 39 [2019-02-22]. ISBN 1930513496. (原始内容存档于2021-11-02). 

^

McCool, Logan. The Discovery and Naming of Candida albicans (PDF). antimicrobe.org. [2019-02-22]. (原始内容存档 (PDF)于2018-05-05). 

^

Candida albicans. MycoBank. [2019-02-22]. (原始内容存档于2019-02-22). 

^

Simi, Vincent. Origin of the Names of Species of Candida (PDF). antimicrobe.org. [2018-12-06]. (原始内容存档 (PDF)于2015-06-21). 

^ Sung-Oui Suh, Meredith Blackwell, Cletus P. Kurtzman, Marc-André Lachance. Phylogenetics of Saccharomycetales, the ascomycete yeasts. Mycologia. 2006, 98 (6): 1006-1017. doi:10.1080/15572536.2006.11832629. 

^ Stephanie Diezmann, Cymon J. Cox, Gabriele Schönian, Rytas J. Vilgalys, Thomas G. Mitchell. Phylogeny and Evolution of Medical Species of Candida and Related Taxa: a Multigenic Analysis. Journal of Clinical Microbiology. 2004, 42 (12): 5624–5635. doi:10.1128/JCM.42.12.5624-5635.2004. 

^ Stefanie Mühlhausen, Martin Kollmar. Molecular Phylogeny of Sequenced Saccharomycetes Reveals Polyphyly of the Alternative Yeast Codon Usage. Genome Biol Evol. 2014, 6 (12): 3222–3237. doi:10.1093/gbe/evu152. 

^ Ted Jones, Nancy A. Federspiel, Hiroji Chibana, Jan Dungan, Sue Kalman, B. B. Magee, George Newport,Yvonne R. Thorstenson, Nina Agabian, P. T. Magee, Ronald W. Davis, Stewart Scherer. The diploid genome sequence of Candida albicans. PNAS. 2004, 101 (19): 7329–7334. doi:10.1073/pnas.0401648101. 

^

Skrzypek MS, Binkley J, Binkley G, Miyasato SR, Simison M, and Sherlock G. Candida albicans SC5314 Genome Snapshot/Overview. Candida Genome Database. 2019-02-19 [2018-12-06]. (原始内容存档于2018-11-16). 

^ Roemer T, Jiang B, Davison J, Ketela T, Veillette K, Breton A, Tandia F, Linteau A, Sillaots S, Marta C, Martel N, Veronneau S, Lemieux S, Kauffman S, Becker J, Storms R, Boone C, Bussey H. Large-scale essential gene identification in Candida albicans and applications to antifungal drug discovery. Mol Microbiol. 2003, 38 (19): 167–81. PMID 14507372. doi:10.1046/j.1365-2958.2003.03697.x. 

^

Candida Community News. www.candidagenome.org. [2018-03-27]. (原始内容存档于2018-10-27). 

^

Candida Strains. www.candidagenome.org. [2018-03-27]. (原始内容存档于2018-10-27). 

^ Jones T, Federspiel NA, Chibana H, Dungan J, Kalman S, Magee BB, Newport G, Thorstenson YR, Agabian N, Magee PT, Davis RW, Scherer S. The diploid genome sequence of Candida albicans. Proc Natl Acad Sci U S A. 2004, 101 (19): 7329–7334. PMC 409918 . PMID 15123810. doi:10.1073/pnas.0401648101. 

^ Ohama, T; Suzuki, Tsutomu; Mori, Miki; Osawa, Syozo; Ueda, Takuya; Watanabe, Kimitsuna; Nakase, Takashi. Non-universal decoding of the leucine codon CUG in several Candida species. Nucleic Acids Research. August 1993, 21 (17): 1039–4045. PMC 309997 . PMID 8371978. doi:10.1093/nar/21.17.4039. 

^ Arnaud, MB; Costanzo, MC; Inglis, DO; Skrzypek, MS; Binkley, J; Shah, P; Binkley, G; Miyasato, SR; Sherlock, G. CGD Help: Non-standard Genetic Codes. Candida Genome Database. [2011-10-30]. (原始内容存档于2018-11-01). 

^

Andrzej (Anjay) Elzanowski and Jim Ostell. The Alternative Yeast Nuclear Code. The Genetic Codes. Bethesda, Maryland, U.S.A.: National Center for Biotechnology Information (NCBI). 2010-07-07 [2011-10-30]. (原始内容存档于2011-05-13). 

^ Santos, MA; Cheesman, C; Costa, V; Moradas-Ferreira, P; Tuite, MF. Selective advantages created by codon ambiguity allowed for the evolution of an alternative genetic code in Candida spp.. Molecular Microbiology. February 1999, 31 (3): 937–947. PMID 10048036. doi:10.1046/j.1365-2958.1999.01233.x. 

^ Raquel M Silva, João A Paredes, Gabriela R Moura, Bruno Manadas, Tatiana Lima‐Costa, Rita Rocha, Isabel Miranda, Ana C Gomes, Marian JG Koerkamp, Michel Perrot, Frank CP Holstege, Hélian Boucherie, Manuel A S Santos. Critical roles for a genetic code alteration in the evolution of the genus Candida. EMBO J. October 2007, 26 (21): 4555–65. PMC 2063480 . PMID 17932489. doi:10.1038/sj.emboj.7601876. 

^ Stynen, B; Van Dijck, P; Tournu, H. A CUG codon adapted two-hybrid system for the pathogenic fungus Candida albicans. Nucleic Acids Res. October 2010, 38 (19): e184. PMC 2965261 . PMID 20719741. doi:10.1093/nar/gkq725. 

^ Rustchenko-Bulgac, E. P. Variations of Candida albicans Electrophoretic Karyotypes. J. Bacteriol. 1991, 173 (20): 6586–6596. PMC 208996 . PMID 1917880. doi:10.1128/jb.173.20.6586-6596.1991. 

^ Holmes, Ann R.; Tsao, Sarah; Ong, Soo-Wee; Lamping, Erwin; Niimi, Kyoko; Monk, Brian C.; Niimi, Masakazu; Kaneko, Aki; Holland, Barbara R.; Schmid, Jan; Cannon, Richard D. Heterozygosity and functional allelic variation in the Candida albicans efflux pump genes CDR1 and CDR2. Molecular Microbiology. 2006, 62 (1): 170–86. PMID 16942600. doi:10.1111/j.1365-2958.2006.05357.x. 

^ Jones, T.; Federspiel, N. A.; Chibana, H.; Dungan, J.; Kalman, S.; Magee, B. B.; Newport, G.; Thorstenson, Y. R.; Agabian, N.; Magee, P. T.; Davis, R. W.; Scherer, S. The diploid genome sequence of Candida albicans. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2004, 101 (19): 7329–7334. Bibcode:2004PNAS..101.7329J. PMC 409918 . PMID 15123810. doi:10.1073/pnas.0401648101. 

^ Maria C. Costanzo, Martha B. Arnaud, Marek S. Skrzypek, Gail Binkley, Christopher Lane, Stuart R. Miyasato, Gavin Sherlock. The Candida Genome Database: Facilitating research on Candida albicans molecular biology. FEMS Yeast Research. 2006, 6 (5): 671-684. doi:10.1111/j.1567-1364.2006.00074.x. 

^ 45.0 45.1 Marek S. Skrzypek, Jonathan Binkley, Gavin Sherlock. Using the Candida Genome Database. Methods Mol Biol: 31–47. doi:10.1007/978-1-4939-7737-6_3. 

^ van het Hoog, Marco; Rast, Timothy J; Martchenko, Mikhail; Grindle, Suzanne; Dignard, Daniel; Hogues, Hervé; Cuomo, Christine; Berriman, Matthew; Scherer, Stewart; Magee, BB; Whiteway, Malcolm; Chibana, Hiroji; Nantel, André; Magee, PT. Assembly of the Candida albicans genome into sixteen supercontigs aligned on the eight chromosomes. Genome Biology. 2007, 8 (4): R52. PMC 1896002 . PMID 17419877. doi:10.1186/gb-2007-8-4-r52. 

^ Cheng, S; Nguyen, M. H; Zhang, Z; Jia, H; Handfield, M; Clancy, C. J. Evaluation of the Roles of Four Candida albicans Genes in Virulence by Using Gene Disruption Strains That Express URA3 from the Native Locus. Infection and Immunity. 2003, 71 (10): 6101–3. PMC 201070 . PMID 14500538. doi:10.1128/IAI.71.10.6101-6103.2003. 

^ 48.0 48.1 Noble, S. M; Johnson, A. D. Strains and strategies for large-scale gene deletion studies of the diploid human fungal pathogen Candida albicans. Eukaryotic Cell. 2005, 4 (2): 298–309. PMC 549318 . PMID 15701792. doi:10.1128/EC.4.2.298-309.2005. 

^ Swoboda RK, Broadbent ID, Bertram G, Budge S, Gooday GW, Gow NA, Brown AJ. Structure and regulation of a Candida albicans RP10 gene which encodes an immunogenic protein homologous to Saccharomyces cerevisiae ribosomal protein 10. J Bacteriol. 1995, 177 (5): 1239-1246. doi:10.1128/jb.177.5.1239-1246.1995. 

^ Abdul Munir Abdul Murad, Philip R. Lee, Ian D. Broadbent, Caroline J. Barelle, Alistair J. P. Brown. CIp10, an efficient and convenient integrating vector for Candida albicans. Yeast. 2000, 14 (4): 325-327. doi:10.1002/1097-0061(20000315)16:4<325::AID-YEA538>3.0.CO;2-%23. 

^ Chauvel, Murielle; Nesseir, Audrey; Cabral, Vitor; Znaidi, Sadri; Goyard, Sophie; Bachellier-Bassi, Sophie; Firon, Arnaud; Legrand, Mélanie; Diogo, Dorothée; Naulleau, Claire; Rossignol, Tristan; d'Enfert, Christophe. A Versatile Overexpression Strategy in the Pathogenic Yeast Candida albicans: Identification of Regulators of Morphogenesis and Fitness. PLOS One. 2012, 7 (9): e45912. Bibcode:2012PLoSO...745912C. PMC 3457969 . PMID 23049891. doi:10.1371/journal.pone.0045912. 

^ Walker, Louise A.; MacCallum, Donna M.; Bertram, Gwyneth; Gow, Neil A.R.; Odds, Frank C.; Brown, Alistair J.P. Genome-wide analysis of Candida albicans gene expression patterns during infection of the mammalian kidney. Fungal Genetics and Biology. 2009, 46 (2): 210–9. PMC 2698078 . PMID 19032986. doi:10.1016/j.fgb.2008.10.012. 

^ 53.0 53.1 Neena Jain, Fahmi Hasan, Bettina C. Fries. Phenotypic Switching in Fungi. Curr Fungal Infect Rep. 2008, 2 (3). doi:10.1007/s12281-008-0026-y. 

^ 54.0 54.1 Slutsky, B; Staebell, M; Anderson, J; Risen, L; Pfaller, M; Soll, DR. "White-opaque transition": a second high-frequency switching system in Candida albicans.. J. Bacteriol. 1987, 1 (169): 189–197. PMC 211752 . PMID 3539914. doi:10.1128/jb.169.1.189-197.1987. 

^ 55.0 55.1 55.2 Slutsky, B; Buffo, J; Soll, D. R. High-frequency switching of colony morphology in Candida albicans. Science. 1985, 230 (4726): 666–9. Bibcode:1985Sci...230..666S. PMID 3901258. doi:10.1126/science.3901258. 

^ 56.0 56.1 56.2 Soll, DR. High-frequency switching in Candida albicans. Clin Microbiol Rev. 1992, 5 (2): 183–203. PMC 358234 . PMID 1576587. doi:10.1128/cmr.5.2.183. 

^ 57.0 57.1 57.2 57.3 Sudbery, P; Gow, N; Berman, J. The distinct morphogenic states of Candida albicans. Trends in Microbiology. 2004, 12 (7): 317–24. PMID 15223059. doi:10.1016/j.tim.2004.05.008. 

^ Si H, Hernday AD, Hirasawa MP, Johnson AD, Bennett RJ. Candida albicans White and Opaque Cells Undergo Distinct Programs of Filamentous Growth. PLoS Pathog. 2013, 9 (3): e1003210. PMC 3591317 . PMID 23505370. doi:10.1371/journal.ppat.1003210. 

^

Peter E. Sudbery. Growth of Candida albicans hyphae (PDF). Nature Reviews Microbiology. 2011, 9 (10): 737–748. PMID 21844880. doi:10.1038/nrmicro2636. 。参见figure 2 (页面存档备份,存于互联网档案馆)

^ Jiménez-López, Claudia; Lorenz, Michael C. Fungal Immune Evasion in a Model Host–Pathogen Interaction: Candida albicans Versus Macrophages. PLoS Pathogens. 2013, 9 (11): e1003741. PMC 3836912 . PMID 24278014. doi:10.1371/journal.ppat.1003741. 

^ Berman J, Sudbery PE. Candida Albicans: a molecular revolution built on lessons from budding yeast. Nature Reviews Genetics. 2002, 3 (12): 918–930. PMID 12459722. doi:10.1038/nrg948. 

^ Shareck, J.; Belhumeur, P. Modulation of Morphogenesis in Candida albicans by Various Small Molecules. Eukaryotic Cell. 2011, 10 (8): 1004–12. PMC 3165445 . PMID 21642508. doi:10.1128/EC.05030-11. 

^ Suzanne M Noble, Sarah French, Lisa A Kohn, Victoria Chen, Alexander D Johnson. Systematic screens of a Candida albicanshomozygous deletion library decouple morphogenetic switching and pathogenicity. Nature Genetics. 2010, 42 (7): 590–598. doi:10.1038/ng.605. 

^ Peter Staib, Joachim Morschhäuser. Chlamydospore formation in Candida albicans and Candida dubliniensis– an enigmatic developmental programme. Mycoses. 2006, 50 (1): 1-12. doi:10.1111/j.1439-0507.2006.01308.x. 

^ José Pérez‐Martín, José Antonio Uría, Alexander D. Johnson. Phenotypic switching in Candida albicans is controlled by a SIR2 gene. The EMBO Journal. 1999, 18 (9): 2580-2592. doi:10.1093/emboj/18.9.2580. 

^ Tao L, Du H, Guan G, Dai Y, Nobile C, Liang W, Cao C, Zhang Q, Zhong J, Huang G. Discovery of a "White-Gray-Opaque" Tristable Phenotypic Switching System in Candida albicans: Roles of Non-genetic Diversity in Host Adaptation. PLoS Biol. 2014, 12 (4): e1001830. PMC 3972085 . PMID 24691005. doi:10.1371/journal.pbio.1001830. 

^ Morschhäuser J. Regulation of white-opaque switching in Candida albicans. Med Microbiol Immunol.. 2010, 199 (3): 165–172. PMID 20390300. doi:10.1007/s00430-010-0147-0. 

^ 68.0 68.1 68.2 68.3 Lohse MB, Johnson AD. White-opaque switching in Candida albicans. Curr Opin Microbiol. 2009, 12 (6): 650–654. PMC 2812476 . PMID 19853498. doi:10.1016/j.mib.2009.09.010. 

^ Hnisz D, Tscherner M, Kuchler K. Opaque-white phenotype transition: a programmed morphological transition in Candida albicans. Methods Mol. Biol. Methods in Molecular Biology. 2011, 734 (2): 303–315. ISBN 978-1-61779-085-0. PMID 21468996. doi:10.1007/978-1-61779-086-7_15. 

^ Bernardo Ramírez-Zavala, Oliver Reuß, Yang-Nim Park, Knut Ohlsen,Joachim Morschhäuser. Environmental Induction of White–Opaque Switching in Candida albicans. PLoS Pathogens. 2008, 4 (6): e1000089. doi:10.1371/journal.ppat.1000089. 

^ 71.0 71.1 Guanghua Huang, Song Yi, Nidhi Sahni, Karla J. Daniels, Thyagarajan Srikantha, David R. Soll. N-Acetylglucosamine Induces White to Opaque Switching, a Mating Prerequisite in Candida albicans. PLoS Pathogens. 2010, 6 (3): e1000806. doi:10.1371/journal.ppat.1000806. 

^ 72.0 72.1 Li Tao, Han Du, Guobo Guan, Yu Dai, Clarissa J. Nobile, Weihong Liang, Chengjun Cao, Qiuyu Zhang, Jin Zhong, Guanghua Huang. Discovery of a “White-Gray-Opaque” Tristable Phenotypic Switching System in Candida albicans: Roles of Non-genetic Diversity in Host Adaptation. PLoS Biology. 2014, 12 (4): e1001830. doi:10.1371/journal.pbio.1001830. 

^

D R Soll, C J Langtimm, J McDowell, J Hicks, R Galask. High-frequency switching in Candida strains isolated from vaginitis patients. Journal of Clinical Microbiology. 1987, 25 (9): 1611-1622 [2019-03-01]. (原始内容存档于2019-03-01). 

^ Pande, Kalyan; Chen, Changbin; Noble, Suzanne M. Passage through the mammalian gut triggers a phenotypic switch that promotes Candida albicans commensalism. Nature Genetics. 2013, 45 (9): 1088–91. PMC 3758371 . PMID 23892606. doi:10.1038/ng.2710. 

^ Noble, Suzanne M.; Gianetti, Brittany A.; Witchley, Jessica N. Candida albicans cell-type switching and functional plasticity in the mammalian host. Nature Reviews Microbiology. 2016, 15 (2): 96–108. PMC 5957277 . PMID 27867199. doi:10.1038/nrmicro.2016.157. 

^ 76.0 76.1 76.2 76.3 Richard J Bennett. The parasexual lifestyle of Candida albicans. Current Opinion in Microbiology. 2015, 28: 10-17. doi:10.1016/j.mib.2015.06.017. 

^ Kevin Alby, Richard J. Bennett. Sexual reproduction in the Candida clade: cryptic cycles, diverse mechanisms, and alternative functions. Cell Mol Life Sci.. 2010, 67 (19): 3275–3285. doi:10.1007/s00018-010-0421-8. 

^ Yang-Nim Park, Karla J. Daniels, Claude Pujol, Thyagarajan Srikantha, David R. Soll. Candida albicans Forms a Specialized “Sexual” as Well as “Pathogenic” Biofilm. Eukaryotic Cell. 2013, 12 (8): 1120-1131. doi:10.1128/EC.00112-13. 

^ 79.0 79.1 Anja Forche, Kevin Alby, Dana Schaefer, Alexander D Johnson, Judith Berman, Richard J Bennett. The Parasexual Cycle in Candida albicans Provides an Alternative Pathway to Meiosis for the Formation of Recombinant Strains. PLoS Biology. 2008, 6 (5): e110. doi:10.1371/journal.pbio.0060110. 

^ Richard J. Bennett, Alexander D. Johnson. Completion of a parasexual cycle in Candida albicans by induced chromosome loss in tetraploid strains. The EMBO Journal: 2505-2515. doi:10.1093/emboj/cdg235. 

^ Meleah A. Hickman, Guisheng Zeng, Anja Forche, Matthew P. Hirakawa, Darren Abbey, Benjamin D. Harrison, Yan-Ming Wang, Ching-hua Su, Richard J. Bennett, Yue Wang, Judith Berman. The ‘obligate diploid’ Candida albicansforms mating-competent haploids. Nature. 2013, 494 (7435): 55-59. doi:10.1038/nature11865. 

^ 82.0 82.1 Schaller M, Borelli C, Korting HC, Hube B. Hydrolytic enzymes as virulence factors of Candida albicans. Mycoses. 2005, 48 (6): 365-377. doi:10.1111/j.1439-0507.2005.01165.x. 

^ Monika S, Małgorzata B, Zbigniew O. Contribution of Aspartic Proteases in Candida Virulence. Protease Inhibitors against Candida Infections. Curr Protein Pept Sci.. 2017, 18 (10): 1050-1062. doi:10.2174/1389203717666160809155749. 

^ Duncan Wilson; Julian R. Naglik; Bernhard Hube. The Missing Link between Candida albicans Hyphal Morphogenesis and Host Cell Damage. PLoS Pathog. 2016, 12 (10): e1005867. PMC 5072684 . PMID 27764260. doi:10.1371/journal.ppat.1005867. 

^ Lorenz, M. C; Bender, J. A; Fink, G. R. Transcriptional Response of Candida albicans upon Internalization by Macrophages. Eukaryotic Cell. 2004, 3 (5): 1076–87. PMC 522606 . PMID 15470236. doi:10.1128/EC.3.5.1076-1087.2004. 

^ Staab, J. F. Adhesive and Mammalian Transglutaminase Substrate Properties of Candida albicans Hwp1. Science. 1999, 283 (5407): 1535–1538. Bibcode:1999Sci...283.1535S. ISSN 0036-8075. doi:10.1126/science.283.5407.1535. 

^ Clarissa J. Nobile, Emily P.Fox, Jeniel E.Nett, Trevor R. Sorrells, Quinn M. Mitrovich, Aaron D. Hernday, Brian B. Tuch, David R.Andes, Alexander D. Johnson. A Recently Evolved Transcriptional Network Controls Biofilm Development in Candida albicans. Cell. 2012, 148 (1-2): 126-138. doi:10.1016/j.cell.2011.10.048. 

^ 88.0 88.1 88.2 88.3 88.4 Clarissa J. Nobile and Alexander D. Johnson. Candida albicans Biofilms and Human Disease. Annu Rev Microbiol.. 2015, 69: 71-92. doi:10.1146/annurev-micro-091014-104330. 

^ Deborah A. Hogan, Åshild Vik, Roberto Kolter. A Pseudomonas aeruginosa quorum‐sensing molecule influences Candida albicans morphology. Molecular Microbiology. 2004, 54 (5): 1212=1223. doi:10.1111/j.1365-2958.2004.04349.x. 

^

Invasive Candidiasis. Centers for Disease Control and Prevention. 2015-06-12 [2019-03-01]. (原始内容存档于2019-01-09). 

^ 91.0 91.1 91.2 91.3

Candida infections of the mouth, throat, and esophagus. Centers for Disease Control and Prevention. 2017-08-04 [2019-03-01]. (原始内容存档于2019-01-09). 

^ 92.0 92.1 Emily R. M. Sydnor, Trish M. Perl. Hospital Epidemiology and Infection Control in Acute-Care Settings. Clinical Microbioly Review. 2011, 24 (1): 141–173. doi:10.1128/CMR.00027-10. 

^ Greenberg MS, Glick M, Ship JA. Burket's oral medicine 11th. Hamilton, Ont.: BC Decker. 2008: 79–84. ISBN 9781550093452. 

^ Scully C. Oral and maxillofacial medicine : the basis of diagnosis and treatment 3rd. Edinburgh: Churchill Livingstone. 2013: 254–267. ISBN 9780702049484. 

^

Rhodus, NL. Treatment of oral candidiasis (PDF). Northwest Dentistry. Mar–Apr 2012, 91 (2): 32–3 [2019-03-01]. PMID 22662470. (原始内容 (PDF)存档于2013-11-02). 

^

Vaginal Candidiasis. Centers for Disease Control and Prevention. 2017-08-04 [2019-03-01]. (原始内容存档于2014-12-29). 

^ Ilkit, M; Guzel, AB. The epidemiology, pathogenesis, and diagnosis of vulvovaginal candidosis: a mycological perspective. Critical Reviews in Microbiology. August 2011, 37 (3): 250–61. PMID 21599498. doi:10.3109/1040841X.2011.576332. 

^ Vaginal yeast infections fact sheet. womenshealth.gov. 2014-12-23 [2015-03-05]. (原始内容存档于2015-03-04). 

^ 99.0 99.1 Egan ME, Lipsky MS. Diagnosis of vaginitis. Am Fam Physician. September 2000, 62 (5): 1095–104. PMID 10997533. (原始内容存档于2011-06-06). 

^ James, William D.; Berger, Timothy G. Andrews' Diseases of the Skin: clinical Dermatology. Saunders Elsevier. 2006: 305. ISBN 0-7216-2921-0. 

^ James, William D.; Berger, Timothy G. Andrews' Diseases of the Skin: clinical Dermatology. Saunders Elsevier. 2006: 310. ISBN 978-0-7216-2921-6. 

^ 102.0 102.1 Patil S, Rao RS, Majumdar B, Anil S. Clinical Appearance of Oral Candida Infection and Therapeutic Strategies. Front. Microbiol. December 2015, 6: 1391. PMC 4681845 . PMID 26733948. doi:10.3389/fmicb.2015.01391. 

^ 103.0 103.1 Hidalgo JA, Vazquez JA. Candidiasis: Clinical Presentation. Medscape. WebMD. 2015-08-18 [2016-06-22]. (原始内容存档于2016-06-01). 

^ Wang ZK, Yang YS, Stefka AT, Sun G, Peng LH. Review article: fungal microbiota and digestive diseases. Aliment. Pharmacol. Ther. April 2014, 39 (8): 751–766. PMID 24612332. doi:10.1111/apt.12665. 

^ James, William D.; Berger, Timothy G. Andrews' Diseases of the Skin: clinical Dermatology. Saunders Elsevier. 2006: 309. ISBN 0-7216-2921-0. 

^

Invasive Candidiasis Statistics. Centers for Disease Control and Prevention. 2017-01-25 [2019-03-01]. (原始内容存档于2014-12-29). 

^

Symptoms of Invasive Candidiasis. Centers for Disease Control and Prevention. 2015-06-12 [2019-03-01]. (原始内容存档于2014-12-29). 

^

Information for Healthcare Professionals about Invasive Candidiasis. Centers for Disease Control and Prevention. 2015-06-12 [2019-03-01]. (原始内容存档于2019-01-09). 

^ Michael B. Edmond, Sarah E. Wallace, Donna K. McClish, Michael A. Pfaller, Ronald N. Jones, and Richard P. Wenzel. Nosocomial Bloodstream Infections in United States Hospitals: A Three-Year Analysis. Clinical Infectious Diseases. 1999, 29 (2): 239–244. doi:10.1086/520192. 

^ Weinberger, M. Characteristics of candidaemia with Candida-albicans compared with non-albicans Candida species and predictors of mortality. J Hosp Infect. 2016-04-16, 61 (2): 146–54. PMID 16009456. doi:10.1016/j.jhin.2005.02.009. 

外部链接[编辑]

维基共享资源中相关的多媒体资源:白色念珠菌

Candida Genome Database (页面存档备份,存于互联网档案馆)

U.S. National Institutes of Health on the Candida albicans genome

Mycobank上白色念珠菌的页面 (页面存档备份,存于互联网档案馆)

研究念珠菌的实验室列表 (页面存档备份,存于互联网档案馆)

Protein-protein interactions for Candida albicans (页面存档备份,存于互联网档案馆)

查论编传染病 · 真菌病及中孢子虫纲(英语:Mesomycetozoea) (B35–B49, 110–118)浅表性及皮肤性真菌病(皮肤真菌病(英语:Dermatomycosis)):癣(皮肤)毛孢子菌病(毛外/毛内癣菌,头发)子囊菌门皮癣菌(癣)部位须(英语:Tinea barbae)/头 (秃疮癣) · 体 (环癣, 园癣) · 股 · 手 · 足 · 甲 (白色 · 甲下(远端/近端))斗士体癣 · 叠瓦癣 · 难辨认癣 ·病原絮状表皮癣菌 · 犬小孢癣菌 · 羊毛状微小孢子菌 · 毛癣菌( 下颔毛癣菌 · 断发毛癣菌 · 许兰毛癣菌 · 红色毛癣菌)其它威尼克外瓶霉 (黑癣) · 何德毛结节菌/病担子菌门马拉色菌属 (花斑癣, 糠秕孢子菌毛囊炎(英语:Pityrosporum folliculitis)) · 丝孢酵母属 (白色毛结节菌病(英语:White piedra))皮下、全身性及伺机性真菌病子囊菌门双态性(酵母+霉菌)爪甲团囊菌目粗球孢子菌/普赛德斯球抱子菌 (弥漫性/皮肤/肺球孢子菌病) · 荚膜组织胞浆菌 (皮肤/肺/播散型组织胞浆菌病) · 杜氏组织胞浆菌/病 · 洛博芽生菌/病 · 巴西副球孢子菌/病其它皮炎芽生菌 (北美/南美芽生菌病) · 申克氏孢子丝菌/孢子丝菌病) · 马尔尼菲青霉菌/病)酵母样白色念珠菌(口腔/食管/外阴/皮肤/抗生素抗生素/甲/甲沟/先天性/肛周/全身性念珠菌症, 念珠菌疹/间擦疹/尿布疹, 芽生菌性指间糜烂) · 光滑念珠菌 · 热带念珠菌 · 葡萄牙假丝酵母 · 卡氏肺孢子虫病/肺炎霉菌样曲霉菌 (曲霉菌病/肿, 过敏性支气管肺/原发性皮肤曲霉病) · 甄氏外瓶霉/病 · 裴氏/紧密/疣状着色霉 (着色芽生菌病) · 白地霉( (地霉病) · 波氏足肿菌 (波氏阿利什利霉病)担子菌门新型隐球菌/隐球菌病, 丝孢酵母属 (丝孢酵母菌病)接合菌门/病毛霉菌目/病米根霉 · 印度毛霉 · 伞枝犁头霉 · 总状共头霉虫霉目/病)蛙粪霉/病 · 冠状/异孢耳霉 (耳霉病)微孢子虫/病比氏肠胞微孢子虫/肠脑炎微孢子虫中孢子虫纲(英语:Mesomycetozoea)西伯鼻孢子菌(英语:Rhinosporidium seeberi) ( 鼻孢子菌病(英语:Rhinosporidiosis))未分类链格孢病 · 真菌毛囊​​炎(英语:Fungal folliculitis) · 镰刀菌属/病 · 婴儿臀部肉芽肿(英语:Granuloma gluteale infantum) · 透明丝孢霉病 · 真菌性耳炎(英语:Otomycosis) · 暗色丝孢霉病

医学导航 · 真菌病

真菌 · 分类

疾病

药物(抗真菌药)

分类单元识别码Candida albicans

维基数据: Q310443

维基物种: Candida albicans

AusFungi: 60022019

台湾物种名录: 143709

EoL: 1013921

EPPO: CANDAL

真菌索引: 256187

GBIF: 2599597

iNaturalist: 895618

IRMNG: 10482576

ITIS: 194598

MycoBank: 256187

NBN: BMSSYS0000003266

NCBI: 5476

NZOR: b68ca8b8-874a-49f7-9ff7-a62b630b0c79

Oidium albicans

维基数据: Q59452981

AusFungi: 60022020

真菌索引: 247312

GBIF: 2599599

IRMNG: 11304730

MycoBank: 247312

NZOR: b7ae58a4-9f40-4b87-aea9-01bcd7b10b59

真菌主题分子与细胞生物学主题遗传学主题医学主题

取自“https://zh.wikipedia.org/w/index.php?title=白色念珠菌&oldid=80846271”

分类:​念珠菌属肠道菌群真菌性疾病酵母隐藏分类:​典范条目物种微格式条目含有拉丁语的条目含有英语的条目包含医学声明的条目

本页面最后修订于2024年2月9日 (星期五) 01:52。

本站的全部文字在知识共享 署名-相同方式共享 4.0协议之条款下提供,附加条款亦可能应用。(请参阅使用条款)

Wikipedia®和维基百科标志是维基媒体基金会的注册商标;维基™是维基媒体基金会的商标。

维基媒体基金会是按美国国内税收法501(c)(3)登记的非营利慈善机构。

隐私政策

关于维基百科

免责声明

行为准则

开发者

统计

Cookie声明

手机版视图

开关有限宽度模式

白色念珠菌 - 知乎

白色念珠菌 - 知乎首页知乎知学堂发现等你来答​切换模式登录/注册白色念珠菌白色念珠菌(学名:Candida albicans)是一种能造成伺机性感染的酵母菌,常见于人类消化道与泌尿生殖道的菌群,约有四成至六成健康成人的口腔与消化道中都有白色念珠菌,平时与人体行片利共生,…查看全部内容关注话题​管理​分享​百科讨论精华视频等待回答详细内容概述白色念珠菌(学名:Candida albicans)是一种能造成伺机性感染的酵母菌,常见于人类消化道与泌尿生殖道的菌群,约有四成至六成健康成人的口腔与消化道中都有白色念珠菌,平时与人体行片利共生,但可在人体免疫缺陷时过度生长而造成念珠菌症,是念珠菌属最常见的致病菌种,与热带念珠菌、近平滑念珠菌、光滑念珠菌和克鲁斯念珠菌合计造成了95%的念珠菌症感染,其中白色念珠菌便占了66%,但此比例正持续下降中。白色念珠菌造成的感染有口腔、食道与阴道等处的局部粘膜感染,也有严重的全身性感染,有研究指出后者的致死率高达40%,另有一项统计显示白色念珠菌造成的院内感染在美国每年造成2,800至11,200人死亡。白色念珠菌也是最常在医疗器材上形成生物薄膜的真菌,生物薄膜中的白色念珠菌抗性比游离成长者还高,可随着医疗器材入侵血液中而造成严重感染。白色念珠菌多以双倍体的型式存在,不同于多数真菌为单倍体,但近年渐有研究发现少数情况下白色念珠菌也可形成单倍体与四倍体,其双倍体的基因组长度为29Mb,另外其基因组中,CUG密码子对应的氨基酸为丝氨酸,与绝大多数生物中对应的亮氨酸不同,是相当罕见的遗传密码例外情形。白色念珠菌常被当作真菌感染研究的模式生物,容易在实验室中培养,并可以改变培养基成分的方式控制其生长型态。白色念珠菌属于双态性真菌,可以酵母型或菌丝型两种方式生长,除此之外还可在多种不同的形态表型间互相转换,如白色型-混浊型转换可以改变菌落的外形与基因表达,进而促进准性生殖。白色念珠菌是一种能造成伺机性感染的酵母菌名称由来白色念珠菌的学名Candida albicans为一同义反复,其中属名Candida来自拉丁文的candidus,意指白色,种小名albicans来自拉丁文的albicō,意思亦为白色。早在公元前400年,希波克拉底在其著作《论流行病》中即提到了鹅口疮,可能是白色念珠菌感染的最早记载。分类白色念珠菌的同物异名有多达上百个,最早于1853年由法国生物学家查尔斯-菲力毗·罗宾发表描述,命名为Oidium albicans,1890年,德国真菌学家弗里德里希·威廉·措普夫调整其分类,改其学名为Monilia albicans(其中Monilia来自拉丁文的monile,意指项链)。1923年,荷兰真菌学家克里斯汀·玛丽·别尔克豪特发表了新属念珠菌属,并将白色念珠菌归入该属,改为现名Candida albicans。已有许多分子系统发生学的研究以不同数量、种类的基因序列分析念珠菌属中各物种的亲缘关系:念珠菌属中,与白色念珠菌关系最近的物种为都柏林念珠菌,两者组成的演化支与热带念珠菌互为姊妹群,而三者组成的演化支又与近平滑念珠菌和长孢洛德酵母组成的演化支互为姊妹群,以上类群均以双倍体的形式存在,不同于多数真菌为单倍体,显示其共祖可能发生了单倍体-双倍体的转换。这些双倍体的类群与其他单倍体的类群(季也蒙念珠菌)、葡萄牙念珠菌与汉逊德巴利酵母共同组成念珠菌演化支,以上类群均将密码子CUG编码为丝氨酸,而不像绝大多数生物将其编码为亮氨酸,显示念珠菌演化支的共祖可能发生了一次CUG密码子对应的tRNA重组。念珠菌属并非单系群,同属念珠菌属的光滑念珠菌不属于念珠菌演化支,而是与酿酒酵母等酵母菌关系较近,共同组成酵母菌演化支,与其他念珠菌的亲缘关系较远。基因组单倍体的白色念珠菌的基因组的大小约为15Mb(双倍体约为29Mb),由8条染色体对组成,二倍体中其中一组染色体分别称为chr1A、chr2A、chr3A、chr4A、chr5A、chr6A、chr7A和chrRA,另一组染色体具有相似的名称,但最后一个字为B,如chr1B、chr2B、...和chrRB。整个基因组包含6198个开放阅读框(ORF),截至2019年2月,这些ORF中仍有70%尚未被鉴定。有研究使用四环素转录调控系统控制白色念珠菌各个基因的表现,建构了一个GRACE(基因置换和条件表达)数据库,研究白色念珠菌基因组中各基因对其生长的必要性,结果显示其中有567个基因是其生长所必须的。研究白色念珠菌最常用的菌株是WO-1和SC5314菌株,WO-1菌株可高频率地在白色型(white)与混浊型(opaque)之间互相转换,而SC5314菌株是用作基因组参考序列的菌株。白色念珠菌两种常用菌株的基因组已经完成全基因组定序,其中SC5314菌株完成于2004年,是较早完成测序的真菌之一。白色念珠菌核基因组的一大特色是密码子CUG对应的氨基酸不像其他生物中为亮氨酸,而是丝氨酸,同属念珠菌演化支的其他物种亦有此现象,这种遗传密码发生例外的情形在真核生物的细胞核基因组中是相当罕见的,在原核生物中也仅出现在起始密码子。此现象可能使白色念珠菌长期处在热休克反应的状态,有助于提升其对逆境的抗性。有研究分析比较白色念珠菌与酿酒酵母基因中的CUG密码子,发现白色念珠菌的CUG密码子(编码丝氨酸)在酿酒酵母的同源序列中大多是对应编码丝氨酸与其他亲水氨基酸的的密码子,而酿酒酵母的CUG密码子(编码亮氨酸)在白色念珠菌的同源序列中大多是对应编码亮氨酸与其他疏水氨基酸的密码子,显示CUG密码子功能的改变并未对蛋白质的构象造成太大变化。有研究将白色念珠菌识别CUG密码子的tRNA导入到酿酒酵母中表现,使其翻译时随机将部分CUG密码子辨认为对应丝氨酸,结果启动了抗逆境反应,造成酵母维持在二倍体的状态,且抑制了交配。非标准的遗传密码使白色念珠菌蛋白质交互作用的研究难以在模式生物酿酒酵母中进行,对此已有研究团队开发了白色念珠菌的双杂合系统。白色念珠菌的基因组有高度杂合性,有着大量的SNP位点,常因染色体长度多型性(重复序列的长度不一)、相互易位、染色体删除与个别染色体成为三体等因素,造成染色体数量或结构上的变异,诸如此类核型的改变会导致表型的改变,是这种真菌对不同环境适应的机制之一。随着白色念珠菌基因组信息的成功解码,关于这些机制的研究正持续进行中。研究工具白色念珠菌是用来研究真菌感染的重要模式生物,许多研究团队开发了白色念珠菌的各种数据库与其分子生物学研究的工具。2004年,多位研究者合作开发了念珠菌基因组数据库,该数据库是由酵母菌基因组数据库修改而来,许多开发者过去也曾参与酵母菌基因组数据库的构建。念珠菌基因组数据库最初提供白色念珠菌SC5314菌株的基因组信息,以全基因组霰弹枪定序法定序。后来也陆续加入白色念珠菌的其他菌株与念珠菌属的其他物种。对白色念珠菌进行转基因后,常用的选择性标记包括CaNAT1(抗诺尔丝菌素)、MPAr 与IMH3r(抗霉酚酸)等,也有使用营养缺陷型者,例如URA3基因的产物为乳清酸核苷-5'-磷酸脱羧酶,是合成单磷酸尿苷所需的酵素,为白色念珠菌生长所必须,因此URA3营养缺陷型的突变株只有在成功克隆带有URA3的质粒后才能在不含尿嘧啶的特殊培养基中生长,URA3因而可作为转基因后的选择性标记,但许多研究显示克隆的URA3从质粒整合进染色体上的位点不同,会使其表现量不同而影响白色念珠菌的致病能力,而可能造成研究中判断克隆基因功能的困难,为此已有研究团队开发组氨酸、亮氨酸与精氨酸营养缺陷型的菌株与相应质粒,这些基因的克隆不会影响白色念珠菌的致病能力,以避免使用转基因研究特定基因对致病能力影响时,对研究结果造成干扰。以质粒进行转基因时,常用于酿酒酵母的质粒在白色念珠菌中多有在染色体外不稳定或基因表达效率低下的问题,有研究团队开发了适用于白色念珠菌转基因的CIp10质粒,以核糖体蛋白RP10基因为整合进染色体中的同源序列,并带有用作选择性标记的URA3基因,因其整合进染色体的位置固定,可避免URA3表现量因整合位点不同而有异,进而影响致病能力。CIp10质粒可以高效率的克隆进白色念珠菌中,并有多个研究团队对其进行微调,设计出各种衍生的质粒。型态白色念珠菌有许多不同的形态表型,除了作为双态性真菌,可以在酵母菌型态与菌丝型态间转换之外,还可以进行通称为“高频率转换”之多种其他表型间的转换,其中被研究最多的一种转换则是某些菌株白色型-混浊型间的转换,另外还有许多其他不同的转换系统,例如SC5314菌株可在七种表型间互相转换。酵母菌型-菌丝型转换的过程相当快速,且通常整个菌落的所有细胞都会一起转换;高频率转换则可能只在菌落中的部分细胞中发生,且经转换后的细胞通常仍能进行酵母菌型-菌丝型转换。这些转换均为可逆,且常受到二氧化碳浓度、氧气浓度、培养基种类与温度等环境因子的影响。酵母菌型-菌丝型转换白色念珠菌为双态性真菌,可以酵母菌或菌丝的型式生长,其中酵母菌型生长时可进行出芽生殖,有时出芽产生的子细胞没有立即脱离,而形成类似菌丝的丝状外观,称为假菌丝。白色念珠菌在实验室常用的标准培养液生长时通常呈酵母菌型,呈卵圆形,长约6微米,不过温度、二氧化碳浓度、养分与酸碱值的些许改变便可能使其转换成菌丝型,在模拟人体生理环境的培养基中生长时亦呈菌丝型。在适合其生长的环境下,白色念珠菌菌丝萌发时直径约为2.6微米,成熟菌丝直径则约为3.4微米。两种型态在白色念珠菌感染人体时各有功能,酵母菌型较适合在血液中散播,菌丝型则有助于穿透组织、在器官中着生、躲避巨噬细胞的攻击、以及在医疗器材上形成生物薄膜,这种型态转换与其致病力密切相关,不过仍有研究指出有无法进行此转换的菌株亦可进行感染。以小分子药物抑制白色念珠菌的酵母菌型-菌丝型转换可能有助于抑制其感染。另外白色念珠菌还在环境条件恶劣时,可以形成对逆境抗性较高的厚垣孢子。厚垣孢子多着生于从菌丝分枝出去之瓶状突起的端点[1]。高频率转换除了酵母菌型-菌丝型转换外,白色念珠菌亦可进行高频率转换在多种表型间相互转换,这种转换常是自然发生,并非由特定环境因子调控,且只发生在菌落中的部分细胞。高频率转换最早于1985年由美国生物学家大卫·索尔的团队在SC5314菌株中发现,这种菌株可以在平滑、星状、不规则皱纹状、环状、点状、帽状与绒毛状等七种表型间进行转换,不同表型间转换发生的频率各异,介于万分之一至十分之一之间,且紫外线的照射可大幅提升转换发生的频率。高频率转换可能与某些基因表达的改变有关,有研究发现缺乏组蛋白脱乙酰酶SIR2的菌株出现高频率转换的几率大幅上升,显示控制转换的基因平时可能为SIR2所抑制。在各种表型间转换的能力有助于白色念珠菌在不同环境下的生长。白色型-混浊型转换此调控图中,白色与金色框线分别代表在白色型中与混浊型中表现增加的基因,蓝色调控线条为根据上位效应实验结果所绘,红色调控线条表示WOR1对各基因的调控,为根据染色质免疫沉淀实验结果所绘,而箭头(表示促进)与横杠(表示抑制)为根据两种表型中各基因的表现增减判定。白色型-混浊型转换是白色念珠菌第二种被发现的高频率转换,于1986年由大卫·索尔团队在WO-1菌株中发现,其中白色型的细胞呈圆形,形成白色、平滑的菌落,混浊型的细胞形状则较长,形成灰色且较为扁平的菌落。此转换是由WOR1蛋白调控,WOR1蛋白则受MTL基因调控,当MTLa与MTLα基因同时存在时,会产生a1-α2复合体,抑制WOR1蛋白的表现,进而抑制白色型-混浊型的转换,又因混浊型是发生准性生殖的主要表型,进行准性生殖的几率比白色型高上百万倍,自然环境中有高达95%的白色念珠菌都属MTLa/α型,因此难有此转换与交配发生[2]。白色型-混浊型转换受到许多环境因子调控,其中氧化压力会促进白色念珠菌转为混浊型,温度的提升则会促进其转为白色型,因此在宿主体内(摄氏37度)生长时白色念珠菌多为白色型,但缺氧、二氧化碳与N-乙酰葡糖胺浓度高的环境(例如消化道中)可以亦可刺激白色型-混浊型转换,使白色念珠菌呈混浊型,因此感染宿主的白色念珠菌亦可能发生交配。另外当白色念珠菌生长速率降低时,可能因细胞中得以累积足够浓度的WOR1蛋白,不因细胞分裂而快速被稀释,进而促进白色型-混浊型转换。白色型-混浊型转换对白色念珠菌的致病力也有关联。白色型较适于体内的全身性感染,混浊型则较适于皮肤的浅表感染,两种型态对宿主免疫系统的反应与耐受性也有所不同,可能有助于感染。除了白色念珠菌外,同为念珠菌属且亦可感染人体的都柏林念珠菌与热带念珠菌也能进行白色型-混浊型转换。2014年,有研究发现除了白色型与混浊型外,还有一种“灰色型”可与两型态相互转换,灰色型的白色念珠菌造成皮肤感染的能力比另外两种型态还强,发生交配的几率则介于两者之间,且白色型-灰色型的转换不需WOR1的参与。三种型态各有不同的基因表达,造成其型态、代谢、致病能力、适应宿主体内的环境与对逆境的抗性皆有所不同。其他转换除了白色型-混浊型转换外,还有许多新的白色念珠菌表型转换机制陆续被发现,分别存在不同菌株中。从人体阴道中分离的部分菌株可以在菌丝量多与菌丝量少的菌落型态之间互相转换。SC5314菌株还可进行白色型-消化道型的转换,消化道型是存在宿主消化道中的类型,其外型与混浊型相似,细胞形状较长、形成的菌落较扁,且从白色型转换的过程亦需WOR1蛋白参与,但以电子显微镜观察时可见其表面没有混浊型常有的突起,且基因表达亦与混浊型不同,并因维持MTLa/α的基因型而不像混浊型可以进行交配。消化道中可能含有刺激白色型白色念珠菌转换为消化道型的讯息,此型的白色念珠菌主要在宿主消化道中行片利共生,不对宿主健康造成负面影响。繁殖白色念珠菌过去被认为只能以有丝分裂进行无性生殖,不能进行减数分裂和产生孢子,没有以有性生殖繁殖的途径。现代研究则发现白色念珠菌亦可进行准性生殖,但仅限于MTLa或MTLα基因型的个体,MTLa/α者因会抑制白色型-混浊型转换而难以交配。混浊型的MTLa与MTLα的个体可分别释放MFa与MFα费洛蒙,与彼此细胞表面的受体结合而启动停止细胞周期、改变细胞型态等交配机制,并可形成一种称为性菌膜的生物薄膜,有助于交配进行。最终两细胞可进行核聚变而形成四倍体。四倍体在某些环境下不稳定,有丝分裂时可能发生染色体不分离而产生非整倍体,进而在多次有丝分裂后回复为二倍体,其中染色体缺失的过程有协同效应,即丢失数个染色体后,在后续的有丝分裂中继续丢失其他染色体的几率会提升。有丝分裂时Spo11蛋白可以切割DNA,促使同源染色体间发生同源重组。白色念珠菌因为双倍体,其准性生殖为二倍体-四倍体-二倍体的过程,而不同于其他真菌的单倍体-二倍体-单倍体。不过白色念珠菌的二倍体亦可能丢失染色体而形成单倍体,单倍体的a与α菌株亦可交配而形成二倍体。致病机制白色念珠菌可以分泌天冬氨酸蛋白酶、磷脂酶与脂酶,可分解宿主细胞的胞外底物与细胞膜表面物质,有助其黏着、侵入宿主的组织中,甚至可能可以用以破坏免疫细胞。2016年,有研究发现白色念珠菌感染宿主粘膜时,从酵母菌型转为菌丝型后,会分泌一种称为念珠菌素的毒素,念珠菌素长31个氨基酸,是由Kex2p蛋白酶切割Ece1p产生的一种多肽,可造成宿主上皮细胞的损伤,并刺激宿主的免疫反应。酵母菌型-菌丝型转换对白色念珠菌的致病能力相当重要。吞噬细胞是宿主抗真菌免疫反应中的重要环节,白色念珠菌被巨噬细胞内吞后,并由酵母菌型转换为菌丝型,最终穿透巨噬细胞而重新回到组织中。在巨噬细胞内部,白色念珠菌会启动许多基因的表现,改变其代谢与促进型态转换,其中许多基因为念珠菌所特有,酿酒酵母中不存在同源基因者,很可能与白色念珠菌的致病能力有关。另外菌丝型的白色念珠菌菌丝表面有Hwp1蛋白,该蛋白可与宿主上皮细胞表面的转麸酰胺酶结合,有助白色念珠菌黏附于宿主细胞,进而造成感染[3]。生物薄膜白色念珠菌还可形成结构复杂的生物薄膜,由圆球形的酵母菌、假菌丝与菌丝等各种型态的细胞与胞外底物组成,其基因表达与游离的细胞有很大的不同,其中Efg1、Tec1、Bcr1、Ndt80、Brg1与Rob1等六个转录因子对生物薄膜的形成特别重要,另外可能有上千个基因都对生物薄膜的形成有所影响。生物薄膜可以多种机制提高白色念珠菌对抗真菌剂的抗性,包括增加外排泵的表现以将药物排出胞外,以胞外底物中的水解酶分解药物,以及形成抗性很强的休眠细胞(persister cells)。生物薄膜中的酵母菌还可以向外传播,这些细胞比起正常的酵母菌型细胞有较强的黏附力,形成新的生物薄膜的能力较强,具有较高的致病能力。白色念珠菌在环境中与人体中皆可形成生物薄膜。在医疗器材上,白色念珠菌是最常被发现的真菌种类,导尿管、静脉导管、心律调节器、人工瓣膜、人工关节、隐形眼镜与假牙等医疗器材上均可能有白色念珠菌的生物薄膜生长。生物薄膜中的白色念珠菌较正常游离者对人体免疫系统的抗性较高,可能借由医疗器材入侵循环系统,造成严重的全身性感染,还可能使这些医疗器材无法正常运作。在人体中,白色念珠菌还可能与许多细菌共同形成生物薄膜,包括口腔中的转糖链球菌、格氏链球菌、粘性放线菌或细梭,肠道中的松脆杆菌、产气荚膜梭菌、大肠杆菌、克雷伯氏肺炎菌与粪肠球菌,阴道中的乳杆菌属细菌与囊肿纤维症患者肺中的绿脓杆菌,白色念珠菌与这些细菌可透过实际接触、分泌讯息分子或改变环境因子来影响彼此的行为,例如绿脓杆菌可分泌一种内酯,抑制生物薄膜中白色念珠菌菌丝的形成,但不影响其整体生长速率。还有研究显示白色念珠菌形成的生物薄膜提供了缺氧的微环境,使松脆杆菌与产气荚膜梭菌等厌氧细菌得以生长,且这些细菌可能可以促进白色念珠菌形成生物薄膜,以利自己在有氧环境下生长。白色念珠菌与细菌共同形成的生物薄膜对人体健康的影响仍不清楚。感染白色念珠菌为伺机性感染的致病真菌,平时可生长于人体的皮肤与粘膜组织中而不造成负面影响,但当其过度生长时可能造成念珠菌症的感染。念珠菌症又可依感染部位分为若干类型,包括感染口部的鹅口疮、感染阴道的念珠菌性外阴阴道炎、感染食道的念珠菌性食道炎等,甚至可能造成全身的侵入性感染,侵犯多个器官,并造成念珠菌血症(Candidemia)。念珠菌症在健康成人中比较少见,小于一个月的新生儿、艾滋病患者、癌症患者、糖尿病患者与服用抗生素与皮质类固醇等免疫缺乏者感染的风险较高。白色念珠菌也常造成医疗照顾相关感染。浅表与局部感染口腔感染据统计世界上有一半的人群口腔中有白色念珠菌,甚至有更精密的方法显示90%的人皆有,但绝大多数均不造成任何感染症状,免疫缺乏、高糖分的饮食、配戴假牙、抽烟与口干皆会造成口腔中白色念珠菌出现的几率增加。若白色念珠菌造成口腔粘膜损伤即为鹅口疮,通常不伴随其他症状且没有痛感,只有部分患者会有灼痛感,其他可能的症状还包括味觉改变、触感改变、患部发红等。医护人员常可透过简单观察口腔即作出鹅口疮的诊断,有时则需取小量检体进行培养,再于显微镜下观察鉴别。治疗鹅口疮使用的抗真菌剂包括克催玛汝、咪康唑与耐丝菌素,较严重者则可能施以氟康唑[4]。食道感染念珠菌性食道炎为白色念珠菌造成的食道感染,多发生于艾滋病患者、接受化疗的癌症患者等免疫缺乏的人群,但有时亦见于免疫力正常者中。念珠菌性食道炎的症状包括疼痛与吞咽困难,其诊断多为使用内视镜,治疗多使用氟康唑。感染念珠菌性食道炎的患者通常同时患有口腔感染[5]。阴道感染白色念珠菌为两成女性阴道菌丛的正常成分,并不造成感染,若因激素、服用药物或免疫力下降导致阴道环境改变,而使白色念珠菌大量增殖,便可能导致念珠菌性外阴阴道炎。免疫缺乏、服用避孕药、服用抗生素与妊娠均会增加感染机会,症状包括阴道痛痒、交媾与排尿时有痛感与异常的分泌物,诊断多需取小量样本进行培养,再于显微镜下观察鉴别。治疗方式于阴道涂抹抗真菌剂或口服氟康唑,严重者除继续口服氟康唑外,还可能于患部施以硼酸、耐丝菌素或氟胞嘧啶。念珠菌性外阴阴道炎是第二常见的阴道炎,仅次于细菌性阴道病。有高达75%的女性在其一生中得过至少一次念珠菌性外阴阴道炎,接近半数则超过两次。约5%的女性在一年中被感染三次以上[6]。其他除了以上部位之外,白色念珠菌还可感染指甲板而造成念珠菌性甲癣,感染甲沟造成念珠菌性甲沟炎,感染嘴角造成口角炎,感染舌头导致正中菱形舌炎,感染男性生殖器导致龟头炎,感染毛囊导致毛囊炎,在消化道过度生长而造成肠胃不适等。产道存有白色念珠菌的孕妇若发生早期羊膜囊破裂,可能造成新生儿感染先天性皮肤念珠菌病。全身性感染白色念珠菌亦可造成全身性的感染,侵入血液、心脏、眼、骨骼等部位,其中最常见者为念珠菌血症,为常见的医疗照顾相关感染,在美国每年约有46000例,患者多为原本就患有其他重大疾病者,高风险者包括装置静脉导管的患者、住院期间长的患者、加护病房的患者、施用广效型抗生素的患者、烧烫伤患者、接受全静脉营养治疗者与嗜中性白细胞低下者。全身性念珠菌症通常是以血液样本培养进行诊断,多数患者最初治疗的推荐用药为棘白菌素,感染的菌株种类与抗药性确认后则改为氟康唑,部分患者也会以氟康唑为起始用药。成功将血液中的白色念珠菌清除并消除症状后,疗程还需持续两周。1999年,一篇发表于《Clinical Infectious Diseases》的研究统计美国49间医院3年间所有在院内发生的血液感染,共记录了超过一万起感染,其中念珠菌属真菌为第四常见的病原,且以白色念珠菌为大宗。念珠菌血症的死亡率可高达40%-60%,每年造成的医疗花费超过十亿美元。百科摘录1高龄试管:警惕慢性疲劳综合征下的内容摘录Dr.HE讲生殖衰老关注40+试管备孕治疗念珠菌。白色念珠菌(酵母)是人类肠道共生菌,但过度生长可能会导致健康问题,包括CFS症状(Evengård 2007)。据报道,1100名CFS患者口服抗真菌药酮康唑(仁山利舒)和不含精致糖,果汁和酒精的饮食进行治疗,3-12个月后84%的CFS患者症状有所缓解,治疗前有685人存在学习障碍,治疗后仅12人仍学习障碍(Cater 1995)。知乎小知 摘录于 2020-04-24浏览量45.7 万讨论量133  帮助中心知乎隐私保护指引申请开通机构号联系我们 举报中心涉未成年举报网络谣言举报涉企虚假举报更多 关于知乎下载知乎知乎招聘知乎指南知乎协议更多京 ICP 证 110745 号 · 京 ICP 备 13052560 号 - 1 · 京公网安备 11010802020088 号 · 京网文[2022]2674-081 号 · 药品医疗器械网络信息服务备案(京)网药械信息备字(2022)第00334号 · 广播电视节目制作经营许可证:(京)字第06591号 · 服务热线:400-919-0001 · Investor Relations · © 2024 知乎 北京智者天下科技有限公司版权所有 · 违法和不良信息举报:010-82716601 · 举报邮箱:jubao@zhihu.

白色念珠菌 - 知乎

白色念珠菌 - 知乎首页知乎知学堂发现等你来答​切换模式登录/注册白色念珠菌白色念珠菌(学名:Candida albicans)是一种能造成伺机性感染的酵母菌,常见于人类消化道与泌尿生殖道的菌群,约有四成至六成健康成人的口腔与消化道中都有白色念珠菌,平时与人体行片利共生,…查看全部内容关注话题​管理​分享​百科讨论精华视频等待回答详细内容概述白色念珠菌(学名:Candida albicans)是一种能造成伺机性感染的酵母菌,常见于人类消化道与泌尿生殖道的菌群,约有四成至六成健康成人的口腔与消化道中都有白色念珠菌,平时与人体行片利共生,但可在人体免疫缺陷时过度生长而造成念珠菌症,是念珠菌属最常见的致病菌种,与热带念珠菌、近平滑念珠菌、光滑念珠菌和克鲁斯念珠菌合计造成了95%的念珠菌症感染,其中白色念珠菌便占了66%,但此比例正持续下降中。白色念珠菌造成的感染有口腔、食道与阴道等处的局部粘膜感染,也有严重的全身性感染,有研究指出后者的致死率高达40%,另有一项统计显示白色念珠菌造成的院内感染在美国每年造成2,800至11,200人死亡。白色念珠菌也是最常在医疗器材上形成生物薄膜的真菌,生物薄膜中的白色念珠菌抗性比游离成长者还高,可随着医疗器材入侵血液中而造成严重感染。白色念珠菌多以双倍体的型式存在,不同于多数真菌为单倍体,但近年渐有研究发现少数情况下白色念珠菌也可形成单倍体与四倍体,其双倍体的基因组长度为29Mb,另外其基因组中,CUG密码子对应的氨基酸为丝氨酸,与绝大多数生物中对应的亮氨酸不同,是相当罕见的遗传密码例外情形。白色念珠菌常被当作真菌感染研究的模式生物,容易在实验室中培养,并可以改变培养基成分的方式控制其生长型态。白色念珠菌属于双态性真菌,可以酵母型或菌丝型两种方式生长,除此之外还可在多种不同的形态表型间互相转换,如白色型-混浊型转换可以改变菌落的外形与基因表达,进而促进准性生殖。白色念珠菌是一种能造成伺机性感染的酵母菌名称由来白色念珠菌的学名Candida albicans为一同义反复,其中属名Candida来自拉丁文的candidus,意指白色,种小名albicans来自拉丁文的albicō,意思亦为白色。早在公元前400年,希波克拉底在其著作《论流行病》中即提到了鹅口疮,可能是白色念珠菌感染的最早记载。分类白色念珠菌的同物异名有多达上百个,最早于1853年由法国生物学家查尔斯-菲力毗·罗宾发表描述,命名为Oidium albicans,1890年,德国真菌学家弗里德里希·威廉·措普夫调整其分类,改其学名为Monilia albicans(其中Monilia来自拉丁文的monile,意指项链)。1923年,荷兰真菌学家克里斯汀·玛丽·别尔克豪特发表了新属念珠菌属,并将白色念珠菌归入该属,改为现名Candida albicans。已有许多分子系统发生学的研究以不同数量、种类的基因序列分析念珠菌属中各物种的亲缘关系:念珠菌属中,与白色念珠菌关系最近的物种为都柏林念珠菌,两者组成的演化支与热带念珠菌互为姊妹群,而三者组成的演化支又与近平滑念珠菌和长孢洛德酵母组成的演化支互为姊妹群,以上类群均以双倍体的形式存在,不同于多数真菌为单倍体,显示其共祖可能发生了单倍体-双倍体的转换。这些双倍体的类群与其他单倍体的类群(季也蒙念珠菌)、葡萄牙念珠菌与汉逊德巴利酵母共同组成念珠菌演化支,以上类群均将密码子CUG编码为丝氨酸,而不像绝大多数生物将其编码为亮氨酸,显示念珠菌演化支的共祖可能发生了一次CUG密码子对应的tRNA重组。念珠菌属并非单系群,同属念珠菌属的光滑念珠菌不属于念珠菌演化支,而是与酿酒酵母等酵母菌关系较近,共同组成酵母菌演化支,与其他念珠菌的亲缘关系较远。基因组单倍体的白色念珠菌的基因组的大小约为15Mb(双倍体约为29Mb),由8条染色体对组成,二倍体中其中一组染色体分别称为chr1A、chr2A、chr3A、chr4A、chr5A、chr6A、chr7A和chrRA,另一组染色体具有相似的名称,但最后一个字为B,如chr1B、chr2B、...和chrRB。整个基因组包含6198个开放阅读框(ORF),截至2019年2月,这些ORF中仍有70%尚未被鉴定。有研究使用四环素转录调控系统控制白色念珠菌各个基因的表现,建构了一个GRACE(基因置换和条件表达)数据库,研究白色念珠菌基因组中各基因对其生长的必要性,结果显示其中有567个基因是其生长所必须的。研究白色念珠菌最常用的菌株是WO-1和SC5314菌株,WO-1菌株可高频率地在白色型(white)与混浊型(opaque)之间互相转换,而SC5314菌株是用作基因组参考序列的菌株。白色念珠菌两种常用菌株的基因组已经完成全基因组定序,其中SC5314菌株完成于2004年,是较早完成测序的真菌之一。白色念珠菌核基因组的一大特色是密码子CUG对应的氨基酸不像其他生物中为亮氨酸,而是丝氨酸,同属念珠菌演化支的其他物种亦有此现象,这种遗传密码发生例外的情形在真核生物的细胞核基因组中是相当罕见的,在原核生物中也仅出现在起始密码子。此现象可能使白色念珠菌长期处在热休克反应的状态,有助于提升其对逆境的抗性。有研究分析比较白色念珠菌与酿酒酵母基因中的CUG密码子,发现白色念珠菌的CUG密码子(编码丝氨酸)在酿酒酵母的同源序列中大多是对应编码丝氨酸与其他亲水氨基酸的的密码子,而酿酒酵母的CUG密码子(编码亮氨酸)在白色念珠菌的同源序列中大多是对应编码亮氨酸与其他疏水氨基酸的密码子,显示CUG密码子功能的改变并未对蛋白质的构象造成太大变化。有研究将白色念珠菌识别CUG密码子的tRNA导入到酿酒酵母中表现,使其翻译时随机将部分CUG密码子辨认为对应丝氨酸,结果启动了抗逆境反应,造成酵母维持在二倍体的状态,且抑制了交配。非标准的遗传密码使白色念珠菌蛋白质交互作用的研究难以在模式生物酿酒酵母中进行,对此已有研究团队开发了白色念珠菌的双杂合系统。白色念珠菌的基因组有高度杂合性,有着大量的SNP位点,常因染色体长度多型性(重复序列的长度不一)、相互易位、染色体删除与个别染色体成为三体等因素,造成染色体数量或结构上的变异,诸如此类核型的改变会导致表型的改变,是这种真菌对不同环境适应的机制之一。随着白色念珠菌基因组信息的成功解码,关于这些机制的研究正持续进行中。研究工具白色念珠菌是用来研究真菌感染的重要模式生物,许多研究团队开发了白色念珠菌的各种数据库与其分子生物学研究的工具。2004年,多位研究者合作开发了念珠菌基因组数据库,该数据库是由酵母菌基因组数据库修改而来,许多开发者过去也曾参与酵母菌基因组数据库的构建。念珠菌基因组数据库最初提供白色念珠菌SC5314菌株的基因组信息,以全基因组霰弹枪定序法定序。后来也陆续加入白色念珠菌的其他菌株与念珠菌属的其他物种。对白色念珠菌进行转基因后,常用的选择性标记包括CaNAT1(抗诺尔丝菌素)、MPAr 与IMH3r(抗霉酚酸)等,也有使用营养缺陷型者,例如URA3基因的产物为乳清酸核苷-5'-磷酸脱羧酶,是合成单磷酸尿苷所需的酵素,为白色念珠菌生长所必须,因此URA3营养缺陷型的突变株只有在成功克隆带有URA3的质粒后才能在不含尿嘧啶的特殊培养基中生长,URA3因而可作为转基因后的选择性标记,但许多研究显示克隆的URA3从质粒整合进染色体上的位点不同,会使其表现量不同而影响白色念珠菌的致病能力,而可能造成研究中判断克隆基因功能的困难,为此已有研究团队开发组氨酸、亮氨酸与精氨酸营养缺陷型的菌株与相应质粒,这些基因的克隆不会影响白色念珠菌的致病能力,以避免使用转基因研究特定基因对致病能力影响时,对研究结果造成干扰。以质粒进行转基因时,常用于酿酒酵母的质粒在白色念珠菌中多有在染色体外不稳定或基因表达效率低下的问题,有研究团队开发了适用于白色念珠菌转基因的CIp10质粒,以核糖体蛋白RP10基因为整合进染色体中的同源序列,并带有用作选择性标记的URA3基因,因其整合进染色体的位置固定,可避免URA3表现量因整合位点不同而有异,进而影响致病能力。CIp10质粒可以高效率的克隆进白色念珠菌中,并有多个研究团队对其进行微调,设计出各种衍生的质粒。型态白色念珠菌有许多不同的形态表型,除了作为双态性真菌,可以在酵母菌型态与菌丝型态间转换之外,还可以进行通称为“高频率转换”之多种其他表型间的转换,其中被研究最多的一种转换则是某些菌株白色型-混浊型间的转换,另外还有许多其他不同的转换系统,例如SC5314菌株可在七种表型间互相转换。酵母菌型-菌丝型转换的过程相当快速,且通常整个菌落的所有细胞都会一起转换;高频率转换则可能只在菌落中的部分细胞中发生,且经转换后的细胞通常仍能进行酵母菌型-菌丝型转换。这些转换均为可逆,且常受到二氧化碳浓度、氧气浓度、培养基种类与温度等环境因子的影响。酵母菌型-菌丝型转换白色念珠菌为双态性真菌,可以酵母菌或菌丝的型式生长,其中酵母菌型生长时可进行出芽生殖,有时出芽产生的子细胞没有立即脱离,而形成类似菌丝的丝状外观,称为假菌丝。白色念珠菌在实验室常用的标准培养液生长时通常呈酵母菌型,呈卵圆形,长约6微米,不过温度、二氧化碳浓度、养分与酸碱值的些许改变便可能使其转换成菌丝型,在模拟人体生理环境的培养基中生长时亦呈菌丝型。在适合其生长的环境下,白色念珠菌菌丝萌发时直径约为2.6微米,成熟菌丝直径则约为3.4微米。两种型态在白色念珠菌感染人体时各有功能,酵母菌型较适合在血液中散播,菌丝型则有助于穿透组织、在器官中着生、躲避巨噬细胞的攻击、以及在医疗器材上形成生物薄膜,这种型态转换与其致病力密切相关,不过仍有研究指出有无法进行此转换的菌株亦可进行感染。以小分子药物抑制白色念珠菌的酵母菌型-菌丝型转换可能有助于抑制其感染。另外白色念珠菌还在环境条件恶劣时,可以形成对逆境抗性较高的厚垣孢子。厚垣孢子多着生于从菌丝分枝出去之瓶状突起的端点[1]。高频率转换除了酵母菌型-菌丝型转换外,白色念珠菌亦可进行高频率转换在多种表型间相互转换,这种转换常是自然发生,并非由特定环境因子调控,且只发生在菌落中的部分细胞。高频率转换最早于1985年由美国生物学家大卫·索尔的团队在SC5314菌株中发现,这种菌株可以在平滑、星状、不规则皱纹状、环状、点状、帽状与绒毛状等七种表型间进行转换,不同表型间转换发生的频率各异,介于万分之一至十分之一之间,且紫外线的照射可大幅提升转换发生的频率。高频率转换可能与某些基因表达的改变有关,有研究发现缺乏组蛋白脱乙酰酶SIR2的菌株出现高频率转换的几率大幅上升,显示控制转换的基因平时可能为SIR2所抑制。在各种表型间转换的能力有助于白色念珠菌在不同环境下的生长。白色型-混浊型转换此调控图中,白色与金色框线分别代表在白色型中与混浊型中表现增加的基因,蓝色调控线条为根据上位效应实验结果所绘,红色调控线条表示WOR1对各基因的调控,为根据染色质免疫沉淀实验结果所绘,而箭头(表示促进)与横杠(表示抑制)为根据两种表型中各基因的表现增减判定。白色型-混浊型转换是白色念珠菌第二种被发现的高频率转换,于1986年由大卫·索尔团队在WO-1菌株中发现,其中白色型的细胞呈圆形,形成白色、平滑的菌落,混浊型的细胞形状则较长,形成灰色且较为扁平的菌落。此转换是由WOR1蛋白调控,WOR1蛋白则受MTL基因调控,当MTLa与MTLα基因同时存在时,会产生a1-α2复合体,抑制WOR1蛋白的表现,进而抑制白色型-混浊型的转换,又因混浊型是发生准性生殖的主要表型,进行准性生殖的几率比白色型高上百万倍,自然环境中有高达95%的白色念珠菌都属MTLa/α型,因此难有此转换与交配发生[2]。白色型-混浊型转换受到许多环境因子调控,其中氧化压力会促进白色念珠菌转为混浊型,温度的提升则会促进其转为白色型,因此在宿主体内(摄氏37度)生长时白色念珠菌多为白色型,但缺氧、二氧化碳与N-乙酰葡糖胺浓度高的环境(例如消化道中)可以亦可刺激白色型-混浊型转换,使白色念珠菌呈混浊型,因此感染宿主的白色念珠菌亦可能发生交配。另外当白色念珠菌生长速率降低时,可能因细胞中得以累积足够浓度的WOR1蛋白,不因细胞分裂而快速被稀释,进而促进白色型-混浊型转换。白色型-混浊型转换对白色念珠菌的致病力也有关联。白色型较适于体内的全身性感染,混浊型则较适于皮肤的浅表感染,两种型态对宿主免疫系统的反应与耐受性也有所不同,可能有助于感染。除了白色念珠菌外,同为念珠菌属且亦可感染人体的都柏林念珠菌与热带念珠菌也能进行白色型-混浊型转换。2014年,有研究发现除了白色型与混浊型外,还有一种“灰色型”可与两型态相互转换,灰色型的白色念珠菌造成皮肤感染的能力比另外两种型态还强,发生交配的几率则介于两者之间,且白色型-灰色型的转换不需WOR1的参与。三种型态各有不同的基因表达,造成其型态、代谢、致病能力、适应宿主体内的环境与对逆境的抗性皆有所不同。其他转换除了白色型-混浊型转换外,还有许多新的白色念珠菌表型转换机制陆续被发现,分别存在不同菌株中。从人体阴道中分离的部分菌株可以在菌丝量多与菌丝量少的菌落型态之间互相转换。SC5314菌株还可进行白色型-消化道型的转换,消化道型是存在宿主消化道中的类型,其外型与混浊型相似,细胞形状较长、形成的菌落较扁,且从白色型转换的过程亦需WOR1蛋白参与,但以电子显微镜观察时可见其表面没有混浊型常有的突起,且基因表达亦与混浊型不同,并因维持MTLa/α的基因型而不像混浊型可以进行交配。消化道中可能含有刺激白色型白色念珠菌转换为消化道型的讯息,此型的白色念珠菌主要在宿主消化道中行片利共生,不对宿主健康造成负面影响。繁殖白色念珠菌过去被认为只能以有丝分裂进行无性生殖,不能进行减数分裂和产生孢子,没有以有性生殖繁殖的途径。现代研究则发现白色念珠菌亦可进行准性生殖,但仅限于MTLa或MTLα基因型的个体,MTLa/α者因会抑制白色型-混浊型转换而难以交配。混浊型的MTLa与MTLα的个体可分别释放MFa与MFα费洛蒙,与彼此细胞表面的受体结合而启动停止细胞周期、改变细胞型态等交配机制,并可形成一种称为性菌膜的生物薄膜,有助于交配进行。最终两细胞可进行核聚变而形成四倍体。四倍体在某些环境下不稳定,有丝分裂时可能发生染色体不分离而产生非整倍体,进而在多次有丝分裂后回复为二倍体,其中染色体缺失的过程有协同效应,即丢失数个染色体后,在后续的有丝分裂中继续丢失其他染色体的几率会提升。有丝分裂时Spo11蛋白可以切割DNA,促使同源染色体间发生同源重组。白色念珠菌因为双倍体,其准性生殖为二倍体-四倍体-二倍体的过程,而不同于其他真菌的单倍体-二倍体-单倍体。不过白色念珠菌的二倍体亦可能丢失染色体而形成单倍体,单倍体的a与α菌株亦可交配而形成二倍体。致病机制白色念珠菌可以分泌天冬氨酸蛋白酶、磷脂酶与脂酶,可分解宿主细胞的胞外底物与细胞膜表面物质,有助其黏着、侵入宿主的组织中,甚至可能可以用以破坏免疫细胞。2016年,有研究发现白色念珠菌感染宿主粘膜时,从酵母菌型转为菌丝型后,会分泌一种称为念珠菌素的毒素,念珠菌素长31个氨基酸,是由Kex2p蛋白酶切割Ece1p产生的一种多肽,可造成宿主上皮细胞的损伤,并刺激宿主的免疫反应。酵母菌型-菌丝型转换对白色念珠菌的致病能力相当重要。吞噬细胞是宿主抗真菌免疫反应中的重要环节,白色念珠菌被巨噬细胞内吞后,并由酵母菌型转换为菌丝型,最终穿透巨噬细胞而重新回到组织中。在巨噬细胞内部,白色念珠菌会启动许多基因的表现,改变其代谢与促进型态转换,其中许多基因为念珠菌所特有,酿酒酵母中不存在同源基因者,很可能与白色念珠菌的致病能力有关。另外菌丝型的白色念珠菌菌丝表面有Hwp1蛋白,该蛋白可与宿主上皮细胞表面的转麸酰胺酶结合,有助白色念珠菌黏附于宿主细胞,进而造成感染[3]。生物薄膜白色念珠菌还可形成结构复杂的生物薄膜,由圆球形的酵母菌、假菌丝与菌丝等各种型态的细胞与胞外底物组成,其基因表达与游离的细胞有很大的不同,其中Efg1、Tec1、Bcr1、Ndt80、Brg1与Rob1等六个转录因子对生物薄膜的形成特别重要,另外可能有上千个基因都对生物薄膜的形成有所影响。生物薄膜可以多种机制提高白色念珠菌对抗真菌剂的抗性,包括增加外排泵的表现以将药物排出胞外,以胞外底物中的水解酶分解药物,以及形成抗性很强的休眠细胞(persister cells)。生物薄膜中的酵母菌还可以向外传播,这些细胞比起正常的酵母菌型细胞有较强的黏附力,形成新的生物薄膜的能力较强,具有较高的致病能力。白色念珠菌在环境中与人体中皆可形成生物薄膜。在医疗器材上,白色念珠菌是最常被发现的真菌种类,导尿管、静脉导管、心律调节器、人工瓣膜、人工关节、隐形眼镜与假牙等医疗器材上均可能有白色念珠菌的生物薄膜生长。生物薄膜中的白色念珠菌较正常游离者对人体免疫系统的抗性较高,可能借由医疗器材入侵循环系统,造成严重的全身性感染,还可能使这些医疗器材无法正常运作。在人体中,白色念珠菌还可能与许多细菌共同形成生物薄膜,包括口腔中的转糖链球菌、格氏链球菌、粘性放线菌或细梭,肠道中的松脆杆菌、产气荚膜梭菌、大肠杆菌、克雷伯氏肺炎菌与粪肠球菌,阴道中的乳杆菌属细菌与囊肿纤维症患者肺中的绿脓杆菌,白色念珠菌与这些细菌可透过实际接触、分泌讯息分子或改变环境因子来影响彼此的行为,例如绿脓杆菌可分泌一种内酯,抑制生物薄膜中白色念珠菌菌丝的形成,但不影响其整体生长速率。还有研究显示白色念珠菌形成的生物薄膜提供了缺氧的微环境,使松脆杆菌与产气荚膜梭菌等厌氧细菌得以生长,且这些细菌可能可以促进白色念珠菌形成生物薄膜,以利自己在有氧环境下生长。白色念珠菌与细菌共同形成的生物薄膜对人体健康的影响仍不清楚。感染白色念珠菌为伺机性感染的致病真菌,平时可生长于人体的皮肤与粘膜组织中而不造成负面影响,但当其过度生长时可能造成念珠菌症的感染。念珠菌症又可依感染部位分为若干类型,包括感染口部的鹅口疮、感染阴道的念珠菌性外阴阴道炎、感染食道的念珠菌性食道炎等,甚至可能造成全身的侵入性感染,侵犯多个器官,并造成念珠菌血症(Candidemia)。念珠菌症在健康成人中比较少见,小于一个月的新生儿、艾滋病患者、癌症患者、糖尿病患者与服用抗生素与皮质类固醇等免疫缺乏者感染的风险较高。白色念珠菌也常造成医疗照顾相关感染。浅表与局部感染口腔感染据统计世界上有一半的人群口腔中有白色念珠菌,甚至有更精密的方法显示90%的人皆有,但绝大多数均不造成任何感染症状,免疫缺乏、高糖分的饮食、配戴假牙、抽烟与口干皆会造成口腔中白色念珠菌出现的几率增加。若白色念珠菌造成口腔粘膜损伤即为鹅口疮,通常不伴随其他症状且没有痛感,只有部分患者会有灼痛感,其他可能的症状还包括味觉改变、触感改变、患部发红等。医护人员常可透过简单观察口腔即作出鹅口疮的诊断,有时则需取小量检体进行培养,再于显微镜下观察鉴别。治疗鹅口疮使用的抗真菌剂包括克催玛汝、咪康唑与耐丝菌素,较严重者则可能施以氟康唑[4]。食道感染念珠菌性食道炎为白色念珠菌造成的食道感染,多发生于艾滋病患者、接受化疗的癌症患者等免疫缺乏的人群,但有时亦见于免疫力正常者中。念珠菌性食道炎的症状包括疼痛与吞咽困难,其诊断多为使用内视镜,治疗多使用氟康唑。感染念珠菌性食道炎的患者通常同时患有口腔感染[5]。阴道感染白色念珠菌为两成女性阴道菌丛的正常成分,并不造成感染,若因激素、服用药物或免疫力下降导致阴道环境改变,而使白色念珠菌大量增殖,便可能导致念珠菌性外阴阴道炎。免疫缺乏、服用避孕药、服用抗生素与妊娠均会增加感染机会,症状包括阴道痛痒、交媾与排尿时有痛感与异常的分泌物,诊断多需取小量样本进行培养,再于显微镜下观察鉴别。治疗方式于阴道涂抹抗真菌剂或口服氟康唑,严重者除继续口服氟康唑外,还可能于患部施以硼酸、耐丝菌素或氟胞嘧啶。念珠菌性外阴阴道炎是第二常见的阴道炎,仅次于细菌性阴道病。有高达75%的女性在其一生中得过至少一次念珠菌性外阴阴道炎,接近半数则超过两次。约5%的女性在一年中被感染三次以上[6]。其他除了以上部位之外,白色念珠菌还可感染指甲板而造成念珠菌性甲癣,感染甲沟造成念珠菌性甲沟炎,感染嘴角造成口角炎,感染舌头导致正中菱形舌炎,感染男性生殖器导致龟头炎,感染毛囊导致毛囊炎,在消化道过度生长而造成肠胃不适等。产道存有白色念珠菌的孕妇若发生早期羊膜囊破裂,可能造成新生儿感染先天性皮肤念珠菌病。全身性感染白色念珠菌亦可造成全身性的感染,侵入血液、心脏、眼、骨骼等部位,其中最常见者为念珠菌血症,为常见的医疗照顾相关感染,在美国每年约有46000例,患者多为原本就患有其他重大疾病者,高风险者包括装置静脉导管的患者、住院期间长的患者、加护病房的患者、施用广效型抗生素的患者、烧烫伤患者、接受全静脉营养治疗者与嗜中性白细胞低下者。全身性念珠菌症通常是以血液样本培养进行诊断,多数患者最初治疗的推荐用药为棘白菌素,感染的菌株种类与抗药性确认后则改为氟康唑,部分患者也会以氟康唑为起始用药。成功将血液中的白色念珠菌清除并消除症状后,疗程还需持续两周。1999年,一篇发表于《Clinical Infectious Diseases》的研究统计美国49间医院3年间所有在院内发生的血液感染,共记录了超过一万起感染,其中念珠菌属真菌为第四常见的病原,且以白色念珠菌为大宗。念珠菌血症的死亡率可高达40%-60%,每年造成的医疗花费超过十亿美元。百科摘录1高龄试管:警惕慢性疲劳综合征下的内容摘录Dr.HE讲生殖衰老关注40+试管备孕治疗念珠菌。白色念珠菌(酵母)是人类肠道共生菌,但过度生长可能会导致健康问题,包括CFS症状(Evengård 2007)。据报道,1100名CFS患者口服抗真菌药酮康唑(仁山利舒)和不含精致糖,果汁和酒精的饮食进行治疗,3-12个月后84%的CFS患者症状有所缓解,治疗前有685人存在学习障碍,治疗后仅12人仍学习障碍(Cater 1995)。知乎小知 摘录于 2020-04-24浏览量45.7 万讨论量133  帮助中心知乎隐私保护指引申请开通机构号联系我们 举报中心涉未成年举报网络谣言举报涉企虚假举报更多 关于知乎下载知乎知乎招聘知乎指南知乎协议更多京 ICP 证 110745 号 · 京 ICP 备 13052560 号 - 1 · 京公网安备 11010802020088 号 · 京网文[2022]2674-081 号 · 药品医疗器械网络信息服务备案(京)网药械信息备字(2022)第00334号 · 广播电视节目制作经营许可证:(京)字第06591号 · 服务热线:400-919-0001 · Investor Relations · © 2024 知乎 北京智者天下科技有限公司版权所有 · 违法和不良信息举报:010-82716601 · 举报邮箱:jubao@zhihu.

Microbiology Note – Online Biology Notes

Microbiology Note – Online Biology NotesSkip to contentMicrobiology Notes

MenuNotesBiographyBotany NotesHow ToHuman AnatomyAntimicrobial DrugsBasic MicrobiologyBiochemistryBiologyBiosafetyBiotechnologyCell BiologyDifferencesMoreDiseaseEnvironmental MicrobiologyEpidemiologyFood MicrobiologyGeneticsImmunologyIndustrial microbiologyMedical MicrobiologyMicrobiologistsMolecular biologyParasitologyZoology NoteBiology PracticalsUnder MicroscopeMicroscopeBiochemical TestCulture MediaCytopathologyHematologyImmunology PracticalInstrumentsLaboratory TestsMicrobiology TechniquesPractical ProcedureProtocolsSolution preparationStainingMicroorganismsBacteriologyMycologyPhycologyPrionsProtozoaVirologyOthersWeb StoryRecommended BooksCalculator ToolsResearch MethodologyShort type QuestionsSyllabusTop in MicrobiologyOld Question Paper DownloadAnswer KeyBHU Answer KeyCSIR Net Answer KeyGATE Answer KeyIIT JAM BS Answer KeyIIT JAM BT Answer KeyWorksheetFlashcardsVideoMCQBiology MemeAdvertisementsSPONSOR ADLatest NotesMesophiles – Habitat, Adaptations, Roles, Examplesby Sourav BioMarch 9, 2024What are Mesophiles? Habitat of Mesophiles Mesophiles are microorganisms that … Read moreIon exchange mechanism in Ion Exchange Chromatographyby Sourav BioFebruary 20, 2024Ion exchange chromatography (IEC) is a chromatographic technique that allows … Read moreIon Exchange Chromatography – Definition, Principle, Protocol, Applications, Examplesby Sourav BioFebruary 20, 2024omatography) is a method that permits the separation of polar molecules and ions in accordance with their affinity to the ion exchangers.Sampling of Microorganisms From Soilby Sourav BioFebruary 6, 2024Exploring the microscopic world within soil requires precise techniques for … Read moreSampling of Bacteria From Waterby Sourav BioFebruary 6, 2024When examining water samples for bacterial content, direct microscopic observation … Read moreSampling of Bacteria From Airby Sourav BioFebruary 3, 2024The process of collecting bacteria from the air for analysis … Read moreDetermination of Phosphorus In Milkby Sourav BioJanuary 31, 2024Phosphorus is an essential mineral found in many foods, including … Read moreDetermination of Magnesium In Milkby Sourav BioJanuary 30, 2024Magnesium is an essential mineral found in many foods, including … Read moreDetermination of Calcium In Milkby Sourav BioJanuary 29, 2024Milk is widely recognized as a significant source of calcium, … Read moreDetermination of Lactose In Milk by Lane-Eynon Methodby Sourav BioJanuary 29, 2024What is Lane-Eynon Method? Principle of Lane-Eynon Method The Lane-Eynon … Read moreRaw Materials for Production Mediaby Sourav BioJanuary 29, 2024Industrial fermentation processes leverage a wide array of raw materials, … Read moreProduction Media – Definition, Characteristics, Examples, Usesby Sourav BioJanuary 28, 2024What is Production Media? Production media, often associated with the … Read moreWhat is the Difference Between Holobasidium and Phragmobasidium?by Sourav BioJanuary 28, 2024What is Holobasidium? What is Basidium? What is Phragmobasidium? Difference … Read moreWhat is the Difference Between Cloaca and Anus?by Sourav BioJanuary 27, 2024What is Cloaca? Characteristics Features of Cloaca The cloaca is … Read moreBasidiomycetes – Life cycle, Characteristics, Significance, Mycelium and Examplesby MN EditorsJanuary 25, 2024Basidiomycetes are harmful as well as useful. Their attack foods and ornamental plants, cause many different diseases including seedling diseases, wood rots, root and stem rots, seed diseases (smuts), and rusts, on the other hand, it used as humans foods.Deuteromycetes – Reproduction, Characteristics, Classification and Examplesby Sourav BioJanuary 24, 2024Key Points on Deuteromycetes Here are the key points summarizing … Read moreWhat is the Difference Between Basidiomycetes and Deuteromycetesby Sourav BioJanuary 23, 2024What is Basidiomycetes? Basidiomycetes, belonging to the Basidiomycota division, represent … Read moreAmoebiasis, Entamoeba Histolytica, Life cycle, Diagnosisby Sourav BioJanuary 23, 2024What is Entamoeba Histolytica? Definition of Entamoeba Histolytica Entamoeba histolytica … Read moreSecondary Consumers – Definition, Types, Functions, Examplesby Sourav BioJanuary 21, 2024What are Secondary Consumers? Definition of Secondary Consumers Secondary consumers … Read moreDihybrid Cross Worksheetby Sourav BioJanuary 14, 2024A dihybrid cross is a genetic experiment or breeding technique … Read moreChoose your topicMicrobiology Notes

Zoology Notes

Practical Procedure

Microorganisms

Exam Preparation

OthersBasic MicrobiologyBiographyEpidemiologyEnvironmentalDifferencesDiseasesCell BiologyBiotechnologyBiosafetyBiologyBiochemistryBacteriologyAntimicrobial DrugsHuman

AnatomyMolecular BiologyMicroscopeMicrobiologistsMedical MicrobiologyIndustrial MicrobiologyImmunologyGeneticsFood MicrobiologyBioinformaticsZoology BasicsProtistaEcologyNon-chordatesChordatesPhysiologyVertebrataDevelopmental BiologyEvolutionary BiologyPest ManagmentEthologyResearch MethodologyStaining ProcedureSolution PreparationProtocolsMicrobiology TechniquesLaboratory TestsInstrumentationImmunology PracticalHematologyCytopathologyCulture Media Prep.Biochemical TestsProtozoaBacteriaVirusParasitesPrionsAlgaeProtistaFungiIIT JAM BT Answer KeyIIT JAM BS Answer KeyGATE Answer KeyCSIR Net LS Answer KeyBHU Answer KeyCalcutta University MSc Microbiology Old Question PapersCSIR NET Life Science Question PapersBHU

PET Applied microbiology Question PapersWeb StoriesVideoBiology

MCQWorksheetQ&A ForumPrivacy PolicyContact MeAbout UsAdvertise with usAffiliate DisclosureDisclaimerTerms and Conditions© 2023 Microbiologynote.comSearch for:

Adblocker detected! Please consider reading this notice.We've detected that you are using AdBlock Plus or some other adblocking software which is preventing the page from fully loading.We don't have any banner, Flash, animation, obnoxious sound, or popup ad. We do not implement these annoying types of ads!We need money to operate the site, and almost all of it comes from our online advertising.Please add Microbiologynote.com to your ad blocking whitelist or disable your adblocking software.

Microbiology Note – Online Biology Notes

Microbiology Note – Online Biology NotesSkip to contentMicrobiology Notes

MenuNotesBiographyBotany NotesHow ToHuman AnatomyAntimicrobial DrugsBasic MicrobiologyBiochemistryBiologyBiosafetyBiotechnologyCell BiologyDifferencesMoreDiseaseEnvironmental MicrobiologyEpidemiologyFood MicrobiologyGeneticsImmunologyIndustrial microbiologyMedical MicrobiologyMicrobiologistsMolecular biologyParasitologyZoology NoteBiology PracticalsUnder MicroscopeMicroscopeBiochemical TestCulture MediaCytopathologyHematologyImmunology PracticalInstrumentsLaboratory TestsMicrobiology TechniquesPractical ProcedureProtocolsSolution preparationStainingMicroorganismsBacteriologyMycologyPhycologyPrionsProtozoaVirologyOthersWeb StoryRecommended BooksCalculator ToolsResearch MethodologyShort type QuestionsSyllabusTop in MicrobiologyOld Question Paper DownloadAnswer KeyBHU Answer KeyCSIR Net Answer KeyGATE Answer KeyIIT JAM BS Answer KeyIIT JAM BT Answer KeyWorksheetFlashcardsVideoMCQBiology MemeAdvertisementsSPONSOR ADLatest NotesMesophiles – Habitat, Adaptations, Roles, Examplesby Sourav BioMarch 9, 2024What are Mesophiles? Habitat of Mesophiles Mesophiles are microorganisms that … Read moreIon exchange mechanism in Ion Exchange Chromatographyby Sourav BioFebruary 20, 2024Ion exchange chromatography (IEC) is a chromatographic technique that allows … Read moreIon Exchange Chromatography – Definition, Principle, Protocol, Applications, Examplesby Sourav BioFebruary 20, 2024omatography) is a method that permits the separation of polar molecules and ions in accordance with their affinity to the ion exchangers.Sampling of Microorganisms From Soilby Sourav BioFebruary 6, 2024Exploring the microscopic world within soil requires precise techniques for … Read moreSampling of Bacteria From Waterby Sourav BioFebruary 6, 2024When examining water samples for bacterial content, direct microscopic observation … Read moreSampling of Bacteria From Airby Sourav BioFebruary 3, 2024The process of collecting bacteria from the air for analysis … Read moreDetermination of Phosphorus In Milkby Sourav BioJanuary 31, 2024Phosphorus is an essential mineral found in many foods, including … Read moreDetermination of Magnesium In Milkby Sourav BioJanuary 30, 2024Magnesium is an essential mineral found in many foods, including … Read moreDetermination of Calcium In Milkby Sourav BioJanuary 29, 2024Milk is widely recognized as a significant source of calcium, … Read moreDetermination of Lactose In Milk by Lane-Eynon Methodby Sourav BioJanuary 29, 2024What is Lane-Eynon Method? Principle of Lane-Eynon Method The Lane-Eynon … Read moreRaw Materials for Production Mediaby Sourav BioJanuary 29, 2024Industrial fermentation processes leverage a wide array of raw materials, … Read moreProduction Media – Definition, Characteristics, Examples, Usesby Sourav BioJanuary 28, 2024What is Production Media? Production media, often associated with the … Read moreWhat is the Difference Between Holobasidium and Phragmobasidium?by Sourav BioJanuary 28, 2024What is Holobasidium? What is Basidium? What is Phragmobasidium? Difference … Read moreWhat is the Difference Between Cloaca and Anus?by Sourav BioJanuary 27, 2024What is Cloaca? Characteristics Features of Cloaca The cloaca is … Read moreBasidiomycetes – Life cycle, Characteristics, Significance, Mycelium and Examplesby MN EditorsJanuary 25, 2024Basidiomycetes are harmful as well as useful. Their attack foods and ornamental plants, cause many different diseases including seedling diseases, wood rots, root and stem rots, seed diseases (smuts), and rusts, on the other hand, it used as humans foods.Deuteromycetes – Reproduction, Characteristics, Classification and Examplesby Sourav BioJanuary 24, 2024Key Points on Deuteromycetes Here are the key points summarizing … Read moreWhat is the Difference Between Basidiomycetes and Deuteromycetesby Sourav BioJanuary 23, 2024What is Basidiomycetes? Basidiomycetes, belonging to the Basidiomycota division, represent … Read moreAmoebiasis, Entamoeba Histolytica, Life cycle, Diagnosisby Sourav BioJanuary 23, 2024What is Entamoeba Histolytica? Definition of Entamoeba Histolytica Entamoeba histolytica … Read moreSecondary Consumers – Definition, Types, Functions, Examplesby Sourav BioJanuary 21, 2024What are Secondary Consumers? Definition of Secondary Consumers Secondary consumers … Read moreDihybrid Cross Worksheetby Sourav BioJanuary 14, 2024A dihybrid cross is a genetic experiment or breeding technique … Read moreChoose your topicMicrobiology Notes

Zoology Notes

Practical Procedure

Microorganisms

Exam Preparation

OthersBasic MicrobiologyBiographyEpidemiologyEnvironmentalDifferencesDiseasesCell BiologyBiotechnologyBiosafetyBiologyBiochemistryBacteriologyAntimicrobial DrugsHuman

AnatomyMolecular BiologyMicroscopeMicrobiologistsMedical MicrobiologyIndustrial MicrobiologyImmunologyGeneticsFood MicrobiologyBioinformaticsZoology BasicsProtistaEcologyNon-chordatesChordatesPhysiologyVertebrataDevelopmental BiologyEvolutionary BiologyPest ManagmentEthologyResearch MethodologyStaining ProcedureSolution PreparationProtocolsMicrobiology TechniquesLaboratory TestsInstrumentationImmunology PracticalHematologyCytopathologyCulture Media Prep.Biochemical TestsProtozoaBacteriaVirusParasitesPrionsAlgaeProtistaFungiIIT JAM BT Answer KeyIIT JAM BS Answer KeyGATE Answer KeyCSIR Net LS Answer KeyBHU Answer KeyCalcutta University MSc Microbiology Old Question PapersCSIR NET Life Science Question PapersBHU

PET Applied microbiology Question PapersWeb StoriesVideoBiology

MCQWorksheetQ&A ForumPrivacy PolicyContact MeAbout UsAdvertise with usAffiliate DisclosureDisclaimerTerms and Conditions© 2023 Microbiologynote.comSearch for:

Adblocker detected! Please consider reading this notice.We've detected that you are using AdBlock Plus or some other adblocking software which is preventing the page from fully loading.We don't have any banner, Flash, animation, obnoxious sound, or popup ad. We do not implement these annoying types of ads!We need money to operate the site, and almost all of it comes from our online advertising.Please add Microbiologynote.com to your ad blocking whitelist or disable your adblocking software.

中国成人念珠菌病诊断与治疗专家共识 - 中华传染病杂志

中国成人念珠菌病诊断与治疗专家共识 - 中华传染病杂志

|

个人中心

0

您有 0 封未读讯息

登录

注册

|

机构详情

点赞 0

分享 0

收藏 0

纠错

• 共识与指南 •

中国成人念珠菌病诊断与治疗专家共识

中国成人念珠菌病诊断与治疗专家共识组

中华传染病杂志, 2020,38(01)

: 29-43. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1000-6680.2020.01.005

摘要本共识主要包括念珠菌病的病原学、危险因素、流行病学、病原学诊断、临床诊断和治疗总则,以及各种常见念珠菌病的诊断与治疗细则。皮肤、黏膜念珠菌病,特别是口咽部、食管、阴道等局部感染不属于侵袭性念珠菌病,但临床较为常见,又常为侵袭性念珠菌病的感染源,抑或侵袭性念珠菌病受累器官,故本共识将其纳入。本共识暂不纳入国内尚未常规开展和应用的新技术及药物,对有别于国外指南之处,也给予相关观点表述。由于各种念珠菌病临床表现各异,各医院的菌种及耐药性也各不相同,故临床治疗应结合患者的具体情况进行个体化选择。

引用本文:

中国成人念珠菌病诊断与治疗专家共识组.

中国成人念珠菌病诊断与治疗专家共识

[J]

. 中华传染病杂志,2020,38

(01): 29-43.

DOI: 10.3760/cma.j.issn.1000-6680.2020.01.005

参考文献导出:  

Endnote   

NoteExpress   

RefWorks   

NoteFirst   

医学文献王

扫  描  看  全  文

正文

作者信息

基金 0  关键词  0

English Abstract

评论

阅读 0  评论  0

相关资源

引用 | 论文 | 视频

版权归中华医学会所有。未经授权,不得转载、摘编本刊文章,不得使用本刊的版式设计。除非特别声明,本刊刊出的所有文章不代表中华医学会和本刊编委会的观点。

念珠菌病(candidiasis)是由各种致病性念珠菌引起的局部或全身感染性疾病。其好发于免疫功能低下患者,可侵犯局部皮肤、黏膜,以及全身各组织、器官,临床表现多样、轻重不一。近年来,随着肿瘤化学治疗、器官移植、糖皮质激素、免疫抑制剂和广谱抗菌药物的广泛应用等危险因素增多,侵袭性念珠菌病(invasive candidiasis)发病率呈明显上升趋势。其中念珠菌菌血症是侵袭性念珠菌病最常见的临床类型,通常预后不佳。早期诊断、及时治疗可明显改善侵袭性念珠菌病患者的预后。因此,近年来欧美等国相继出台并更新了念珠菌病相关诊断和治疗指南,为临床提供有效指导。虽然我国在重症、血液、移植、呼吸等领域也相继出台并更新了侵袭性真菌病相关诊治指南,但迄今尚缺乏集各种念珠菌病诊断和治疗于一体的多学科共识,为此中华医学会感染病学分会组织感染、重症、血液、移植、呼吸、皮肤、风湿免疫、临床微生物、药学、病理、影像学等相关学科专家,结合已发表的相关指南、国内外临床研究数据,经多次讨论、反复修订后形成了本共识。本共识采用GRADE(Grades of Recommendation Assessment, Development, and Evaluation)评估体系,将循证证据等级划分如下。①高等级:高质量随机对照临床研究、权威指南、系统评价/荟萃分析。②中等级:有一定研究局限性的随机对照研究(如无隐蔽分组、未设盲、未报告失访),队列研究、病例系列研究,病例对照研究。③低等级:病例报道、专家意见、无临床资料的抗菌药物体外药物敏感研究。将专家推荐等级划分如下。①强推荐:绝大多数患者、医师和共识制订者都会采纳该方案。②中等推荐:多数人会采纳该方案,但仍有部分人不采纳,要结合患者具体情况做出体现其价值观和意愿的决定。③弱推荐:证据不足,需要患者和医师共同讨论决定。一、病原学念珠菌广泛存在于自然界,为条件致病真菌。临床上以白念珠菌(Candida albicans)最为常见,而非白念珠菌致病菌种多达16种以上,其中以热带念珠菌(Candida tropicalis)、光滑念珠菌(Candida glabrata)、近平滑念珠菌(Candida parapsilosis)和克柔念珠菌(Candida krusei)较为常见。目前普遍认识到很多念珠菌存在复合群,如近平滑念珠菌复合群,包含近平滑念珠菌、似平滑念珠菌和拟平滑念珠菌,其他还有光滑念珠菌复合群、季也蒙念珠菌复合群等。复合群中各菌种的生物学特性存在不同程度的差异,对抗真菌药物的体外敏感性也不尽相同。念珠菌在血琼脂和沙氏琼脂上能生长良好,最适宜温度为25~37 ℃。白念珠菌以出芽方式繁殖,产生芽生孢子,呈圆形或卵圆形,直径为4~6 μm。多数芽生孢子延伸后,不与母细胞脱离,形成假菌丝,也可见真菌丝,但光滑念珠菌不形成菌丝。白念珠菌在沙氏琼脂培养基呈酵母样生长,在米粉吐温琼脂培养基中可形成大量假菌丝和具有特征性的顶端厚壁孢子。念珠菌显色培养基(CHROMagar Candida)有助于临床快速鉴别常见白念珠菌、热带念珠菌、光滑念珠菌和克柔念珠菌。二、危险因素侵袭性念珠菌病是一个由病原体定植、感染到疾病发生的连续过程,多见于抗菌药物使用导致多部位、高强度念珠菌的定植,并伴有生理屏障(解剖屏障、功能屏障和微生物屏障)破坏,或伴有严重基础疾病等机体免疫功能低下的患者。念珠菌定植是发生侵袭性念珠菌病的重要前提,临床有数种方法辅助判断定植和感染。念珠菌定植指数和校正定植指数是指收集痰液(气道分泌物)、尿液、胃液、粪便(直肠拭子)、口咽拭子5个部位标本进行念珠菌定量培养,将培养念珠菌阳性数/培养部位总数(定植指数)≥ 0.5判定为感染可能,为进一步提高其特异度,将定植指数×重度定植部位数/总定植部位数≥0.4判定为感染可能,即校正定植指数[1],但特异度低。另一种方法是根据全胃肠外营养(total parenteral nutrition,TPN)(1分)、腹部外科手术(1分)、多部位定植(1分)、严重脓毒症(2分)建立念珠菌评分预测模型,总分≥3分时患者发生侵袭性念珠菌病的风险为6.83(95%CI 3.81~12.45),该方法的灵敏度为78%,特异度为66%[2,3,4]。此外,有研究将机械通气、广谱抗菌药物使用、中心静脉导管(central venous catheter,CVC)留置,联合以下任何一项危险因素:TPN、透析、腹部大手术、胰腺炎、糖皮质激素或其他免疫抑制剂的使用,作为发生侵袭性念珠菌病的预测指标,其灵敏度为34%,但特异度为90%,阴性预测值可高达97%[5]。也有研究将主要危险因素归为TPN、CVC留置、广谱抗菌药物暴露、糖皮质激素使用、腹部大手术,其灵敏度为84%,特异度为60%,其阴性预测值高达99%[6]。Playford等[7]将ICU患者分为低风险、中风险和高风险,低风险患者无需做特异性真菌生物标志物检测。以上各种危险因素的评估方法可供临床参考,但是需进一步验证。虽然,不同区域、不同医疗机构、不同病种、不同患者侵袭性念珠菌病的易感因素各不相同,但是危险因素评估对促进念珠菌病的早期诊断和及时治疗意义重大。三、流行病学侵袭性念珠菌病多见于免疫功能低下的患者,患病率为(2.1~21)/10万,病死率高达40%~60%。侵袭性念珠菌病以白念珠菌、光滑念珠菌、热带念珠菌、近平滑念珠菌和克柔念珠菌最为常见,白念珠菌占65%~70%,但近年来在ICU、血液系统恶性肿瘤、实体器官移植等患者中,非白念珠菌所占比例高于白念珠菌。我国一项纳入67所医院ICU的前瞻性调查研究结果显示,ICU侵袭性念珠菌病的发病率为0.32%,以白念珠菌为主(41.8%),其次为近平滑念珠菌(23.8%)、热带念珠菌(17.6%)和光滑念珠菌(12.3%)[8]。中国医院侵袭性真菌病监测网(China Hospital Invasive Fungal Surveillance Net,CHIF-NET)一项纳入65所医院5年里8 829株念珠菌的临床分离株数据显示,4种最常见念珠菌依次为白念珠菌(44.9%)、近平滑念珠菌复合群(20.0%)、热带念珠菌(17.2%)和光滑念珠菌复合群(10.8%)[9]。近年来报道的多重耐药耳念珠菌所致新发念珠菌病,因其传播快、耐药广、鉴定难、病死率高而引起全球范围极大关注;我国也已有耳念珠菌病报道,应予高度重视[10,11]。大多数念珠菌对常用新型抗真菌药物的体外敏感性很高。一项1997年至2016年来自全球39个国家20 788株念珠菌的药物敏感试验(以下简称药敏试验)结果显示,对氟康唑或棘白菌素类药物耐药的菌株仍然少见,而光滑念珠菌和热带念珠菌对氟康唑和棘白菌素类药物的耐药率有所增加[12]。我国ICU患者调查结果显示,白念珠菌对氟康唑的耐药率为9.6%,热带念珠菌、近平滑念珠菌、光滑念珠菌对氟康唑的耐药率分别为19.3%、6.0%、4.0%,而白念珠菌、热带念珠菌、近平滑念珠菌、光滑念珠菌对卡泊芬净和两性霉素B均无耐药[13]。另一项纳入中国11所医院3年共1 072株非白念珠菌临床分离株药敏试验的结果显示,4种常见非白念珠菌对两性霉素B和氟胞嘧啶的敏感率均高达99.3%,对棘白菌素类药物的敏感率高达97.7%~100%;近平滑念珠菌对唑类药物的敏感率为97.5%,但热带念珠菌对氟康唑、伏立康唑各有7.1%的耐药率;光滑念珠菌对氟康唑有14.3%的耐药率,其中11.6%对伏立康唑交叉耐药;克柔念珠菌对伏立康唑、泊沙康唑100%敏感[14]。四、病原学诊断侵袭性念珠菌病的病原学诊断方法包括真菌直接镜检(含荧光染色)、真菌培养及鉴定、体外药敏试验、血清学、分子生物学和组织病理检测。由于念珠菌可以侵袭人体各组织、器官,故用于检测的标本来源包括血液、无菌体液、组织、痰液、尿液、粪便、分泌物或脓液等,应尽可能按照要求规范留取并送检合格的病原学检测标本。1.直接镜检:可直接镜检的标本包括无菌体液、痰液、尿液、粪便、分泌物或脓液和活检组织等。查见卵圆形芽孢或孢子、假菌丝或菌丝往往提示念珠菌,而真菌荧光染色可以提高检测阳性率,目前已广泛应用于临床(中等级,强推荐)。标本直接镜检阳性对于无菌体液和组织标本具有诊断意义,但确定菌种还需结合培养结果,直接镜检阴性不能完全除外念珠菌病。2.真菌培养与鉴定:由于念珠菌为人体开放腔道如口腔或胃肠道的常居菌,所以从痰或粪便标本中分离培养出的念珠菌不能作为确诊依据。来源于无菌体液标本如血液、脑脊液、腹水、胸腔积液、关节腔积液等培养阳性,或活检组织标本培养阳性且伴有组织侵袭证据,可作为侵袭性念珠菌病诊断的金标准(高等级,强推荐)。对于非无菌标本,同一部位多次培养阳性或多个部位同时分离到同一种念珠菌,也常提示有侵袭性念珠菌病可能。对所有疑诊侵袭性念珠菌病的患者均应做血液真菌培养,以提高培养阳性率(中等级,强推荐)。培养阳性分离菌株可采用念珠菌显色琼脂、手工或全自动微生物鉴定试剂盒进行菌种鉴定,通过对特定DNA片段进行测序是菌种鉴定的金标准。同时还可以发现少见菌和新菌种。基质辅助激光解吸电离飞行时间质谱法(matrix-assisted laser desorption ionization time of flight mass spectrometry,MALDI-TOF MS)通过将待测菌株的蛋白质谱图与数据库中已知真菌的参考谱图比对后可得出鉴定结果,耗时短(3~5 min)、成本低、通量高、准确性高(中等级,强推荐)。该方法还被尝试用于部分耐药菌菌株快速测定,但其标准操作程序有待大规模的临床评估。3.念珠菌体外药敏试验:念珠菌属抗真菌药物体外敏感试验的标准参考方法为肉汤稀释法,且应使用人工合成的培养基(如RPMI 1640)。临床折点(clinical breakpoints)是结合微生物学特征、药代动力学/药效学(pharmacokinetics/pharmacodynamics,PK/PD)参数和临床预后数据共同确定的。临床微生物实验室技术人员进行念珠菌属药敏试验时,建议参照美国临床与实验室标准协会(Clinical and Laboratory Standards Institute,CLSI)的抗菌药物敏感性试验执行标准CLSI M27(2017版)推荐的方法和流程[15],临床折点和流行病学界值(epidemiological cut-off value,ECV)参照CLSI M59(2018版)、M60(2017版)文件(表1)[16,17](中等级,强推荐)。对于念珠菌等酵母菌,部分商品化体外药物敏感检测试剂与微量肉汤稀释法的一致性较好,可以在临床工作中替代微量肉汤稀释法(中等级,强推荐)。抗真菌药物敏感性试验通常适用于以下特定情况:①作为周期性调查内容,以建立抗真菌药物对个体医疗机构内分离致病菌的抗菌谱;②协助处理难治性念珠菌病,特别是应用抗真菌药物常规剂量治疗失败时;③处理侵袭性念珠菌病,特别是唑类抗真菌药物或其他类别药物的有效性不确定时。但近年来更多学者建议,临床应常规开展唑类药敏试验(低等级,强推荐),而棘白菌素类药敏试验主要用于近期有棘白菌素暴露史者,或者是近平滑念珠菌、光滑念珠菌、耳念珠菌感染者,或抗真菌治疗超过1周仍能分离到念珠菌者(低等级,强推荐)。点击查看表格表1常见抗真菌药物敏感性试验执行标准(μg/mL)表1常见抗真菌药物敏感性试验执行标准(μg/mL)菌种卡泊芬净米卡芬净氟康唑伏立康唑泊沙康唑流行病学界值伊曲康唑流行病学界值两性霉素B流行病学界值氟胞嘧啶流行病学界值敏感中介耐药敏感中介耐药流行病学界值敏感中介剂量依赖敏感耐药流行病学界值敏感中介耐药流行病学界值白念珠菌≤0.250.50≥1.00≤0.250.50≥1.00-≤2.00-4.008.00-≤0.120.25~0.50≥1.00-0.06-2.00-光滑念珠菌≤0.120.25≥0.50≤0.060.120.25---≤32.00≥64.00----0.251.004.002.00-克柔念珠菌≤0.250.50≥1.00≤0.250.50≥1.00------≤0.501.00≥2.00-0.501.002.00-近平滑念珠菌≤2.004.00≥8.00≤2.004.00≥8.00-≤2.00-4.008.00-≤0.120.25~0.50≥1.00-0.25-2.00-热带念珠菌≤0.250.50≥1.00≤0.250.50≥1.00-≤2.00-4.008.00-≤0.120.25~0.50≥1.00-0.120.502.00-季也蒙念珠菌≤2.004.00≥8.00≤2.004.00≥8.00-----8.00----0.50---都柏林念珠菌------0.12----0.50--------注:本执行标准综合参照美国临床与实验室标准协会(Clinical and Laboratory Standards Institute,CLSI)的CLSI M60 (2017版)和CLSI M59 (2018版)抗真菌药物敏感性试验执行标准。"-"为无数据4.血清学检测方法:目前,国内外应用最广泛的是血清真菌特异性细胞壁成分(1,3)-β-D-葡聚糖检测(以下简称真菌G试验)。感染早期即可阳性,且阴性预测值较高(中等级,中等推荐)。该方法主要用于检测空腹血清,也有用于检测支气管肺泡灌洗液、脑脊液标本。但真菌G试验并非念珠菌病的特异性诊断标志,曲霉、肺孢子菌等真菌感染也可阳性,其他含有葡聚糖因素(如血液滤过、腹膜透析、手术纱布),以及溶血、黄疸患者,使用丙种球蛋白,甚至某些细菌感染也会导致其假阳性。其同样也存在假阴性,尤其是近平滑念珠菌病的假阴性率较高[18]。念珠菌甘露聚糖抗原/抗体检测新近已获得国家市场监督管理总局批准用于临床,白念珠菌芽管抗体检测、烯醇酶抗原检测等目前尚未常规用于临床。5.分子生物学检测方法:目前已在临床开展者主要为病原体宏基因组学检测技术,又称二代测序技术(metagenomic next generation sequence,mNGS),该技术不需要培养即可直接检测临床标本,尤其是对一些病因不明的感染或已使用抗感染药物治疗后,仍有一定检测阳性率,为疑难、少见感染病的病原学诊断提供依据,但其结果解释和诊断价值评估需结合临床谨慎进行。6.组织病理检查:感染病灶的组织穿刺、活组织检查对一些疑难病例的诊断非常重要,如肺组织、肝组织、骨组织、脑组织等。标本应分别送病原学检查[新鲜组织标本送临床微生物室,行病原学培养和(或)mNGS]和病理学检查[送病理科常规H-E染色和过碘酸希夫(periodic acid Schiff,PAS)、六胺银染色]。若组织病理切片中查见念珠菌芽孢和假菌丝或真菌丝,且有组织侵袭证据即可确诊(高等级,强推荐),若活检组织培养阳性则对病原学诊断和药物敏感检测意义重大(中等级,强推荐)。五、临床诊断临床诊断主要根据宿主高危因素(如抗菌药物的使用、持续粒细胞缺乏、实体器官或干细胞移植、导管置入、TPN、腹腔手术、胰腺炎、糖皮质激素、其他免疫抑制剂的使用等)、临床特征(临床症状、体征、充分的抗细菌治疗无效等)、病原学检查(各种体液真菌涂片、培养,血清真菌G试验,组织病理学真菌特征性改变等)的结果,进行分层诊断。①拟诊(possible):同时具有宿主危险因素和临床特征。②临床诊断(probable):拟诊基础上兼有微生物学非确诊检查结果阳性。③确诊(proven):无菌体液或组织标本真菌培养为念珠菌和(或)组织病理见侵袭性念珠菌病特征性改变[19,20,21,22]。真菌培养是诊断侵袭性念珠菌病的主要依据,一旦分离到念珠菌,还需行菌种鉴定,推荐进行体外药敏试验,为临床药物选择提供重要参考。由于侵袭性念珠菌病临床表现不典型,大多数通过血培养明确诊断,但血培养阴性不能排除诊断(尸体解剖确诊的侵袭性念珠菌病患者血培养阳性率仅21%~71%)[23]。真菌G试验是诊断侵袭性念珠菌病的一个重要参考指标,灵敏度和特异度分别为76.8%和85.3%[24],真菌G试验的特异度随着检测结果数值的升高而升高[25],动态监测真菌G试验对于疗效判断也有重要意义[26]。建议对高危患者进行每周2次动态监测以提高其特异度,并结合临床表现和其他微生物学检查结果综合判断(中等级,中等推荐)。六、抗真菌药物治疗的基本原则选择抗真菌药物时应主要基于两方面考虑。首先,应尽可能寻找和明确感染部位,积极开展与其相关临床合格标本的收集、真菌涂片、培养、真菌G试验等,以期获得微生物学证据,一旦明确致病菌即可根据感染部位、感染严重程度、患者基础情况、病原菌种类及其药敏试验结果等确定个体化治疗方案。其次,对于严重感染患者,在病原菌未明确前,可根据患者所在病区病原菌及其耐药流行情况,给予经验性抗真菌治疗,一旦明确病原菌,再根据经验性治疗的效果和体外药敏试验结果调整给药方案。目前,国内已上市并常用于治疗侵袭性念珠菌病的抗真菌药物有三唑类药物(氟康唑、伊曲康唑、伏立康唑、泊沙康唑)、棘白菌素类药物(卡泊芬净、米卡芬净)、多烯类药物(两性霉素B及其脂质制剂),以及嘧啶类药物(氟胞嘧啶)。皮肤黏膜念珠菌病可局部用药,全身用药适用于局部用药无效,以及发生侵袭性念珠菌病时。侵袭性念珠菌病患者应选择静脉给药,必要时可联合用药,有指征时需进行外科手术治疗,同时还应对患者全身各器官(特别是肾脏和肝脏)功能障碍程度进行评估与监测,及时调整治疗方案。由于念珠菌菌种和药敏试验结果各异,治疗药物选择和患者预后也有所不同,所以菌种的鉴定和药敏试验十分重要,如克柔念珠菌对氟康唑天然耐药,葡萄牙念珠菌对两性霉素B天然耐药,光滑念珠菌对唑类常用抗真菌药物敏感性下降,甚至对棘白菌素类药物耐药也有所报道,耳念珠菌呈多重耐药。此外,每个抗真菌药物都有其独特的理化特性、PK/PD特点,以及不同程度的毒副不良反应,加之许多真菌感染高危患者常合并其他疾病,需要接受多种药物治疗,因此关注药物间相互作用也极其重要。同时应积极治疗可能存在的基础疾病,调节机体免疫功能。七、抗真菌药物的治疗与预防策略根据前述分级诊断,采取相应的抗真菌分级治疗策略,包括预防治疗(prophylaxis therapy)、经验性治疗(empirical therapy)、诊断驱动治疗(pre-emptive therapy)和目标治疗(targeted therapy),由此选择相应的治疗药物[20,21,22,27,28,29]。1.预防治疗:主要针对血液病中易发生侵袭性真菌病的急性髓性白血病和异基因造血干细胞移植患者,早期氟康唑具有较好的预防效果,而近年泊沙康唑具有更好的预防效果,可能与念珠菌对氟康唑的耐药性增加,以及丝状真菌的存在有关。目前首选药物为泊沙康唑口服混悬液(高等级,强推荐),其次包括伏立康唑、伊曲康唑、米卡芬净、卡泊芬净等(高等级,中等推荐)[27,28,29]。对于实体器官移植的部分高危患者,也推荐使用抗真菌药物进行预防,但移植器官不同,其预防药物选择也不尽相同,如肝移植出现肾衰竭需要血液滤过治疗、再次肝移植术、暴发性肝衰竭、终末期肝病模型(model for end-stage liver disease,MELD)评分≥30分等患者,其继发的真菌感染以念珠菌和曲霉为主,药物选择除了考虑其抗菌活性外,还要考虑其不良反应及药物相互作用,故主要推荐氟康唑用于念珠菌病高危患者的预防(中等级,强推荐),棘白菌素类用于念珠菌和曲霉的高危患者预防(低等级,弱推荐)。肺移植高危患者曲霉感染最为多见,其次为念珠菌,主要选用伏立康唑或伊曲康唑预防。小肠或胰腺移植的围手术期患者以念珠菌感染多见,对于其高危人群多采用足量氟康唑预防(低等级,强推荐);而普通心脏、肾移植患者通常不需要抗真菌药物预防[22](低等级,强推荐)。一般入住ICU患者通常不建议常规抗真菌药物预防(中等级,中等推荐),但对于复发性消化道穿孔、腹部大手术吻合口漏患者,可酌情考虑使用氟康唑预防。2.经验性治疗:是指有念珠菌病高危因素患者,已出现感染临床特征而采取的抗真菌治疗。较多见于血液恶性肿瘤高强度化学治疗或异基因造血干细胞移植患者,因持续发热伴粒细胞缺乏,充分抗细菌药物治疗无效时给予抗真菌治疗,亦称之为发热驱动治疗。此类患者曲霉感染最常见,其次为念珠菌,药物选择主要针对曲霉,同时也需对念珠菌有效,推荐选用棘白菌素类药物或伏立康唑或两性霉素B脂质体[20,28](中等级,强推荐)。美国国立综合癌症网(National Comprehensive Cancer Network,NCCN)肿瘤相关感染的临床实践指南推荐,如果发现持续粒细胞缺乏伴发热患者有口腔念珠菌病,可早期给予氟康唑经验性治疗[30](中等级,强推荐)。经验性治疗也可用于非粒细胞缺乏的高危患者,多见于ICU或实体器官移植患者,以念珠菌常见,但有多项临床研究显示其疗效并不理想,因而欧洲重症与感染学会不建议对这类患者常规推荐经验性治疗[21,31](低等级,强推荐)。有研究表明,念珠菌所致感染性休克患者,若24 h内未开始治疗,其病死率高达97.6%[32,33]。因此,发热伴念珠菌病高危因素患者出现血流动力学不稳定时,应在24 h内及时给予棘白菌素类药物进行经验性抗真菌治疗(中等级,强推荐)。3.诊断驱动治疗(又称抢先治疗):是指有念珠菌病高危因素患者出现感染的临床特征,并有病原学非确诊检查阳性结果时给予的抗真菌治疗[34](中等级,强推荐)。诊断驱动治疗的目的在于尽早控制感染、降低病死率,但仍可能有部分患者因不是侵袭性真菌病而导致过度抗真菌治疗,增加药物耐药性和不良反应的发生,增加医疗费用。目前,念珠菌非确诊检查主要为真菌G试验,另甘露聚糖抗原/抗体、mNGS等病原学检测方法已在进一步临床研究中,有望成为新的诊断手段。真菌G试验结合念珠菌评分和定植指数,可显著提高侵袭性念珠菌病诊断效率[3]。对于有念珠菌高危因素的患者:①病情危重患者推荐棘白菌素类药物(中等级,强推荐);②病情相对稳定、近期未使用过唑类药物或已知氟康唑敏感菌株,可予以足量氟康唑治疗(中等级,强推荐);③如果为耐药菌株,可选用伏立康唑或两性霉素B治疗(中等级,强推荐);④抗真菌治疗5 d左右应进行初步疗效评估[21,27](低等级,强推荐)。4.目标治疗:侵袭性念珠菌病一旦确诊,可根据感染部位、药敏试验结果和经验性或诊断驱动治疗的效果选用抗真菌药物。推荐首选棘白菌素类药物[21,22,27](高等级,强推荐)。棘白菌素类药物不常规推荐用于中枢神经系统和泌尿系统念珠菌病,以及念珠菌性眼内炎等念珠菌病的治疗。2012年Andes等[35]对影响侵袭性念珠菌病的预后因素进行了一项综合分析,纳入7项临床前瞻性随机对照研究,共1 915例侵袭性念珠菌病患者,总体病死率为31.4%,有效率为67.4%。经多元回归分析显示,能显著降低病死率且与治疗相关的因素分别是应用棘白菌素类药物(OR=0.65,95%CI 0.45~0.94,P=0.02)和拔除中心静脉导管(OR=0.50,95%CI 0.35~0.72,P=0.000 1)。早期的临床研究显示,氟康唑、伏立康唑、棘白菌素类药物对于侵袭性念珠菌病的疗效与两性霉素B相当,但两性霉素B因不良反应而终止治疗者显著较多[36,37,38]。另据国外临床资料显示,米卡芬净、卡泊芬净与两性霉素B脂质体的疗效相当,安全性显著优于后者[39,40]。因此,病情相对稳定、近期未使用过唑类药物或已知氟康唑敏感菌株的患者,也可以考虑使用足量氟康唑治疗(高等级,强推荐);难治性病例也可应用伏立康唑或两性霉素B[41]。对于近期有使用棘白菌素类药物治疗4周以上病史者,应警惕发生耐药可能[42](低等级,强推荐)。抗真菌治疗疗程通常需结合患者感染的严重程度、致病菌种类、耐药性和临床疗效等因素综合决定。念珠菌病诊断与治疗细则一、念珠菌菌血症(candidemia)念珠菌菌血症是指血培养一次或数次念珠菌阳性,为常见血流感染之一,早期全身毒血症症状较轻,临床症状、体征无特异性,进展常缓慢,易被原发基础疾病及伴发的其他感染表现掩盖,严重者可发生多器官功能障碍或衰竭,甚至发生感染性休克。高危患者感染后易播散至全身各器官(如感染性心内膜炎、内源性眼内炎、骨髓炎、肝脾脓肿等)。确诊有赖于血培养,但血培养阳性率<50%,故明确局部感染灶、真菌G试验动态监测均有助于临床诊断。血培养一旦阳性,在获得药敏试验结果之前,尽早进行抗真菌治疗以降低患者病死率[43](高等级,强推荐)。建议治疗过程中每周至少行2次血培养(即使体温正常也需进行)(中等级,强推荐)。如果积极抗真菌治疗中出现2次或2次以上血培养阳性,且均为同一种念珠菌,即可明确为持续血流感染,其发生率为8%~15%。持续血流感染者需:①查找和处理原发感染灶;②重复菌株药敏试验,确定有无耐药菌株产生;③仔细排查是否发生播散性感染[44,45](中等级,强推荐)。在获得药敏试验结果前,首选棘白菌素类抗真菌药物[35](高等级,强推荐),对于病情相对不重、无唑类抗真菌药物暴露史,且对其耐药可能性小的患者,可选用氟康唑(高等级,强推荐)。两性霉素B适用于可能对唑类或棘白菌素类耐药者(低等级,强推荐),伏立康唑适用于粒细胞缺乏并需要额外覆盖曲霉感染者(高等级,强推荐)。获得菌种鉴定和药敏试验结果后,应根据药敏试验结果调整用药;敏感菌株首选棘白菌素,尤其是光滑念珠菌感染,次选氟康唑或伏立康唑(高等级,强推荐)。两性霉素B更多用于唑类或棘白菌素类耐药菌株感染者,并须监测其不良反应(低等级,强推荐)。在初始治疗病情稳定、血培养转阴5~7 d后(初始治疗至少10 d以上),可采用降阶梯治疗策略(中等级,强推荐),即改用静脉或口服唑类药物治疗[46,47],对于危重症等免疫功能极度低下的患者,初始治疗疗程应相应延长。通常根据念珠菌药敏试验结果,选用唑类药物降阶梯治疗,且若非克柔念珠菌或耳念珠菌感染,首选氟康唑(中等级,强推荐)。对于一些难治性病例或克柔念珠菌感染,可选择伏立康唑降阶梯治疗(低等级,强推荐),耳念珠菌感染可选棘白菌素类药物。治疗疗程需要在患者感染相关症状、体征消失,血培养转阴性2周后停药,若累及其他器官,抗真菌疗程也应相应延长(低等级,强推荐)。对于念珠菌菌血症患者外周静脉导管的管理[48,49,50]:建议无菌操作拔除导管,并剪下5 cm近心端导管进行半定量培养(高等级,强推荐)。若为CVC或静脉留置管,也可从导管和外周静脉处同时采血做培养,导管血样培养阳性时间一般比外周血快2 h左右,如果相差30 h以上,导管相关可能性小(光滑念珠菌因生长缓慢,判断时间点为48 h)[51,52](中等级,强推荐)。对于确诊的导管相关性念珠菌菌血症,一定要拔除或置换深静脉导管(中等级,强推荐);对于非粒细胞缺乏患者,当疑及导管相关性念珠菌菌血症,也应尽早拔除导管(中等级,强推荐)。对于粒细胞缺乏且未确定导管相关性感染的恶性血液病患者,也可考虑拔除导管(低等级,强推荐);当导管不能拔除或置换时,建议首选棘白菌素类药物或两性霉素B脂质体,因两者均对生物膜有较强抗真菌活性(低等级,强推荐)。二、播散性念珠菌病(disseminated candidiasis)播散性念珠菌病是指念珠菌侵入血液循环,并在血液中生长繁殖后,进一步播散至2个或2个以上不相邻器官,引起相应器官感染。根据临床表现不同而分为急性和慢性播散性念珠菌病。急性播散性念珠菌病(acute disseminated candidiasis)呈急性起病,在念珠菌菌血症急性期可同时出现肝脏、脾脏多发脓肿,皮肤或皮下软组织脓肿,或表现为感染性心内膜炎、骨髓炎、眼内炎、肺炎等[53]。临床表现为寒战、高热,血培养持续阳性,全身各脏器、组织可有多发性小脓肿,病情常会迅速恶化,出现神志淡漠、嗜睡,以及多器官功能障碍或衰竭、感染性休克,预后极差。因此,对于念珠菌菌血症患者需要警惕是否有其他器官的累及(中等级,强推荐)。慢性播散性念珠菌病(chronic disseminated candidiasis)是侵袭性念珠菌病的一种独特表现形式,主要累及肝脏和脾脏,偶可累及肾脏等其他器官,故又称为肝脾念珠菌病(hepatosplenic candidiasis,HSC)[54]。其好发于急性白血病或干细胞移植患者粒细胞缺乏恢复期,当患者中性粒细胞缺乏得以恢复,却仍持续发热时应考虑该病可能,影像学检查可发现肝脏、脾脏,甚至双肾多发感染灶,肝脏增强MRI检查的灵敏度最高,其次为增强CT和超声检查。病灶组织穿刺活组织检查,以及新鲜组织标本真菌培养有助于确诊。组织病理急性期表现为脓肿,病变的中心是坏死物,周围有中心粒细胞浸润,PAS、六胺银及H-E染色在坏死中心可找到念珠菌芽孢和假菌丝或真菌丝。慢性期表现为肉芽肿,病变逐步被栅栏状的组织细胞代替,围以纤维性包裹,病变中仅有少量念珠菌芽孢和假菌丝或真菌丝而难以发现,所以肝组织病理及培养结果阴性不能排除诊断。不论急性还是慢性播散性念珠菌病,在治疗上均推荐分为初始治疗和维持治疗两个阶段。急性播散性念珠菌病建议根据感染部位、菌种及其药物敏感性,以及药物的PK/PD,患者肝肾功能等因素加以选择,如果为皮肤软组织、心脏、肝脏、脾脏、腹腔、骨髓等部位感染时,急性期初始治疗首选棘白菌素类单用或联合氟胞嘧啶(低等级,强推荐),亦可选择两性霉素B或其脂质体。恢复期维持治疗多选用氟康唑或伏立康唑治疗(低等级,强推荐),但具体治疗方案和疗程可参照所累及器官感染的推荐(低等级,强推荐)。慢性播散性念珠菌病初始治疗首选棘白菌素类药物或两性霉素B脂质体(低等级,强推荐);两性霉素B 0.5~0.7 mg/(kg·d)治疗(低等级,中等推荐);对于病情较轻且为氟康唑敏感菌株,也可采用氟康唑(400~800 mg/d)治疗(低等级,强推荐)。初始治疗数周患者病情稳定后,推荐长期口服氟康唑400~800 mg/d[6~12 mg/(kg·d)]治疗(低等级,强推荐),疗程提倡个体化,需影像学检查随访至病灶吸收或者钙化,通常随访6个月以上(低等级,强推荐)。伏立康唑作为备选药物,主要用于对氟康唑天然耐药的克柔念珠菌病。此外,值得注意的是当粒细胞缺乏再次出现时,肝脏影像学改变可以快速缩小或消失,但此好转假象不能作为抗真菌治疗成功的评判标准(低等级,强推荐);慢性播散性念珠菌病也不是化学治疗或造血干细胞移植的禁忌证,但抗真菌治疗必须持续以防止复发(低等级,强推荐)。由于患者多出现在粒细胞缺乏恢复期,提示是一种免疫重建的表现形式,因此有学者认为短程(1~2周)中等剂量糖皮质激素[0.5~1.0 mg/(kg·d)]可迅速缓解发热、腹痛等症状(平均4~5 d),减轻炎症反应(ESR、CRP减低等),但考虑到糖皮质激素并不能缩短影像学表现的改善时间,因此不建议常规应用(低等级,弱推荐)。三、念珠菌性心内膜炎(Candida endocarditis)念珠菌性心内膜炎包括心脏天然瓣膜、人工瓣膜和心脏电子植入装置感染,病死率和复发率均较高。病原菌以白念珠菌和近平滑念珠菌最为常见,临床表现为心脏受累的症状和体征,与其他感染性心内膜炎相似,如发热、贫血、心脏杂音和脾大等表现,但瓣膜赘生物通常较大且脆,栓子易脱落引起栓塞表现,动脉栓塞较细菌性心内膜炎更为常见,预后差。因此,当念珠菌菌血症患者经积极抗真菌治疗仍持续血培养阳性,或出现心脏病理性杂音、心力衰竭、栓塞表现时,应高度警惕念珠菌心内膜炎的发生(中等级,强推荐),及时行经胸壁超声心动图(transthoracic echocardiography,TTE)或经食管超声心动图(transesophageal echocardiography,TEE)检查,明确心脏瓣膜有无赘生物极为关键[27](中等级,强推荐)。也有主张念珠菌菌血症患者常规TTE或TEE检查,以尽早发现心脏瓣膜赘生物[21,55,56]。念珠菌性心内膜炎的治疗主要分为两个阶段,即急性期的感染控制和巩固期的长疗程维持治疗(低等级,强推荐)。在急性期需抗真菌药物和心脏手术联合治疗[57,58,59,60,61,62],首选棘白菌素类药物单用或联合氟胞嘧啶治疗6周以上(低等级,强推荐),次选两性霉素B/两性霉素B脂质体联合氟胞嘧啶治疗6周以上(低等级,强推荐)。心脏手术治疗主要是清除赘生物和感染组织,以及心脏成形术(包括感染瓣膜的修补或置换手术)(低等级,强推荐)。对于植入式心脏电子装置感染患者应完全移除所有装置(中等级,强推荐);心力衰竭患者有急诊手术指征(低等级,强推荐)。对于不接受心脏手术治疗的患者,也可单用抗真菌药物治疗,但疗程需足够长,而且存在心力衰竭、死亡等风险。急性期治疗病情稳定、血培养阴性后,若为氟康唑敏感菌株,可长期给予氟康唑维持治疗,疗程6个月以上(低等级,强推荐),尤其是不能接受手术治疗或瓣膜置换术后感染的患者,维持治疗时间更长,建议治疗2年以上[63](中等级,强推荐),但需注意尽量避免与华法林同时使用。对于少数氟康唑耐药株,如天然耐药的克柔念珠菌,可给予伏立康唑或棘白菌素类药物维持治疗(低等级,强推荐)。在数年内均应长期随访(低等级,强推荐)。四、腹腔念珠菌病(intra-abdominal candidiasis)腹腔念珠菌病是常见的侵袭性念珠菌病之一,主要包括腹膜炎和腹腔脓肿。该病临床表现无特异性,常有弥漫性/局灶性腹膜炎的症状或体征,常与细菌混合感染,可伴有全身毒血症状,病死率为20%~70%。血液、引流液、导管、伤口渗液等培养有助于诊断,但从腹腔分离培养到念珠菌,尚需区分是污染、定植或感染。通常认为以下情况应考虑腹腔念珠菌病[27,64]:①通过手术或经皮穿刺获取的腹腔渗液或坏死物(放置24 h以内的新鲜合格标本)直接镜检念珠菌阳性;②念珠菌在胆管、内置导管,或腹腔内活检组织中培养阳性;③第二、第三类型腹膜炎患者血培养阳性。早期培养阳性率较低,念珠菌多部位定植和真菌G试验阳性对诊断有一定参考价值(中等级,强推荐)。腹腔念珠菌病治疗原则包括尽早应用抗真菌药物和紧急处理局部感染灶(高等级,强推荐)。对于原发性腹膜炎腹水培养念珠菌阳性患者,需积极进行抗真菌治疗,而有侵袭性念珠菌病高危因素的腹腔感染患者,其感染性休克的发生率为20%~40%[33]。因此,对于有侵袭性念珠菌病高危因素的腹腔感染患者,若充分抗细菌治疗效果不佳时,尤其是有多部位念珠菌定植和真菌G试验阳性患者,或已发生感染性休克时,应尽快进行经验性抗真菌治疗,同时清理腹腔感染组织并充分引流腹腔渗液(中等级,强推荐)。抗真菌药物治疗策略同念珠菌菌血症,药物选择根据菌种和当地念珠菌耐药情况确定(中等级,强推荐)。疗程取决于临床疗效和感染源控制状况,通常目标治疗疗程至少10~14 d(低等级,强推荐),经验性治疗的初步疗效判定也需用药后至少3~5 d(低等级,强推荐)。不推荐常规进行预防性抗真菌药物治疗[65](中等级,中等推荐)。五、念珠菌性眼内炎(Candida endophthalmitis)念珠菌性眼内炎可以是由眼部手术和眼外伤所致的外源性感染,但更多见于念珠菌通过血液循环进入眼内的内源性感染[66]。通常亚急性起病,发生于念珠菌菌血症后数日至数周,最初表现为脉络膜炎或脉络膜视网膜炎,然后再突破视网膜进入玻璃体形成眼内炎。初为轻微的眼痛或飞蚊症,如不处理可发生视力减退,视力丧失可在真菌血症后数日至数周出现。故推荐有眼部症状的患者尽快眼科会诊与扩瞳眼底检查[67](高等级,强推荐),粒细胞缺乏患者在粒细胞水平恢复正常后须重复眼科检查[27](低等级,强推荐)。未明确诊断念珠菌菌血症,但眼部表现提示眼内念珠菌感染者,需送眼内液标本(房水或玻璃体)涂片和培养证实。单纯脉络膜视网膜炎患者,可选用氟康唑(低等级,强推荐);对氟康唑耐药而伏立康唑敏感者,可选择伏立康唑治疗[27](低等级,强推荐)。累及黄斑者联合玻璃体腔两性霉素B局部注射(灭菌注射用水稀释至5~10 μg/0.1 mL),或伏立康唑(100 μg/0.1 mL),每3~4 d 1次[68](低等级,强推荐)。根据眼内药物半衰期可重复玻璃体腔注射。密切眼科随访有助于确定合适的疗程,通常推荐疗程4~6周,玻璃体受累的疗程较单纯脉络膜视网膜炎患者疗程更长(低等级,强推荐)。此外,难治性病例还可联合玻璃体切割术以缩短疗程,改善视力。由于两性霉素B、棘白菌素类全身给药不能获得有效玻璃体腔内药物浓度,所以即使在血视网膜屏障受损时亦然,故不予推荐(高等级,强推荐)。六、支气管-肺念珠菌病(bronchopulmonary candidiasis)支气管-肺念珠菌病主要有念珠菌气管-支气管炎(Candida tracheobronchitis)和念珠菌肺炎(Candida pneumonia)两种类型。念珠菌是人体正常菌群,在健康人群痰液中有20%~55%的分离率,在机械通气患者的下呼吸道分泌物中分离率更高。下呼吸道标本直接镜检和分离培养出的念珠菌无法区分定植与感染,临床意义不大(低等级,强推荐);但我国一项回顾性临床研究显示在危重症患者中,念珠菌所致下呼吸道感染,尤其是念珠菌支气管炎并不少见[69](低等级,强推荐)。支气管镜检查可发现气道管腔内有较多黏膜白斑、充血、水肿,严重者可出现糜烂、溃疡、出血,甚至可以引起气道阻塞,病灶组织病理可见黏膜炎、沿气道分布的多发脓肿及念珠菌菌丝,无明显血管侵犯。Su等[70]研究提示,支气管分泌物或支气管肺泡灌洗液的真菌G试验有助于诊断,其灵敏度和特异度分别是89%和86%。另有研究提示呼吸道念珠菌定植会增加医院获得性细菌性肺炎的发生率,延长ICU住院时间,显著增加耐药细菌感染发生率和铜绿假单胞菌、鲍曼不动杆菌所致呼吸机相关性肺炎(ventilator-associated pneumonia,VAP)的发生风险,增加危重症患者念珠菌病发病率和病死率[71,72,73]。而抗真菌治疗可以减少铜绿假单胞菌相关VAP的发生或气道定植,缩短抗菌治疗疗程[74,75]。对于侵袭性念珠菌病的高危患者,当原有肺部细菌感染经恰当抗菌药物治疗无效,下呼吸道标本多次念珠菌培养或直接镜检阳性时,应考虑念珠菌气管-支气管炎或肺炎可能,可酌情考虑经验性抗念珠菌治疗(低等级,中等推荐)。支气管镜检查及气道分泌物或支气管肺泡灌洗液真菌G试验阳性,对其诊断有一定参考价值,组织病理检查有助于确诊。但是当患者影像学检查有新出现、持续或加重的肺部渗出灶,尽管呼吸道标本念珠菌培养多次阳性,还应高度警惕细菌性肺炎、侵袭性曲霉病或毛霉病,甚至结核病等可能。原发性念珠菌肺炎在临床上较为少见[76],主要是血行播散所致继发性肺炎。临床可表现为畏寒、发热等明显全身毒血症症状,病理除肺炎改变及菌丝帮助确诊外,常见血管侵犯。重症念珠菌下呼吸道感染推荐棘白菌素类药物治疗(低等级,中等推荐),轻症者根据药敏试验也可选用氟康唑、伊曲康唑或伏立康唑治疗(低等级,中等推荐)。血行播散性念珠菌肺炎治疗参照急性播散性念珠菌病治疗方案(低等级,中等推荐)。对于肺脓肿或胸腔积液培养出念珠菌等特殊临床类型念珠菌病,参照念珠菌菌血症治疗方案。七、中枢神经系统念珠菌病(central nervous system candidiasis)早期尸体解剖研究结果显示,在侵袭性念珠菌病死亡的患者中,半数累及中枢神经系统。临床表现常有发热、头痛和不同程度的意识障碍(如谵妄、昏迷等),可有脑膜刺激征、脑积水,脑脊液中细胞计数轻度增多,糖含量正常或偏低,蛋白质含量明显升高。确诊有赖于脑组织或脑脊液标本中找到真菌,但脑脊液检查早期不易发现真菌,需多次脑脊液真菌涂片和培养,脑脊液的真菌G试验检测有一定的参考价值[77]。早期诊断和积极治疗可显著降低病死率。对于疑难患者,可酌情留取脑脊液或脑组织送检病原微生物mNGS[78],以及排除自身免疫性脑炎等非感染性疾病。中枢神经系统念珠菌病有多种治疗方案[79,80],目前推荐两性霉素B[0.5~0.7 mg/(kg·d)]或两性霉素B脂质体单用或联合氟胞嘧啶治疗(中等级,强推荐)。氟康唑每日400~800 mg(6~12 mg/kg)单用或联合氟胞嘧啶作为次选方案,适用于两性霉素B不能耐受,或病情相对较轻的患者(中等级,强推荐)。其次,两性霉素B与氟康唑联合可用于补救治疗,氟康唑治疗失败者可加用两性霉素B治疗;或两性霉素B治疗过程中出现显著不良反应时,可减少两性霉素B的剂量或停用,同时加用氟康唑治疗(低等级,弱推荐)。初始单用两性霉素B或联合氟胞嘧啶治疗病情得到改善后,也可单用氟康唑每日400~800 mg或氟康唑联合氟胞嘧啶维持治疗(中等级,强推荐)。由于伏立康唑在脑脊液中有较高浓度,对于光滑念珠菌或克柔念珠菌所致中枢神经系统感染患者,可考虑初始治疗应用两性霉素B联合氟胞嘧啶,病情稳定后改用伏立康唑维持治疗(低等级,强推荐)。建议治疗数周后待患者症状、体征消失,脑脊液常规、生物化学指标恢复正常,以及颅脑炎性病灶均消失后停药(低等级,强推荐)。除积极抗真菌治疗外,部分患者还需外科手术治疗,其指征包括[81]:①诊断不明患者,需做脑实质或脑膜活组织检查;②急性或慢性颅内压升高者,需行脑室引流(或分流)术;③脑脓肿或肉芽肿者也可考虑手术切除;④如果念珠菌脑膜炎系脑脊液置管引流术所致,建议在有效抗真菌治疗的同时,应拔除或置换引流管(低等级,强推荐)。八、念珠菌性骨髓炎(Candida osteomyelitis)与念珠菌性关节炎(Candida septic arthritis)念珠菌性骨髓炎常以亚急性或慢性方式起病,近70%的患者因血行播散所致,其次为直接种植或邻近组织感染。白念珠菌感染最为常见,混合细菌感染也时有发生,特别是金黄色葡萄球菌感染并不少见[82,83]。成人椎体尤其是腰椎最易受累,并常累及多个部位,故当证实某一部位感染后,应继续寻找是否有其他感染部位。此外,当局部病灶疼痛不能缓解时,尤其是免疫功能低下患者,应高度警惕该病发生的可能,ESR、CRP仅轻度升高,而增强MRI检查有助于尽早发现感染灶,CT引导下细针穿刺活组织检查和培养有助于确诊,血培养阳性率为30%~50%,故对于疑似患者,即使体温正常也建议血培养检查。由于该病相对少见,故治疗上主要根据病例报道和病例分析数据做出推荐,初始首选两性霉素B[0.5~0.7 mg/(kg·d)]或棘白菌素类药物治疗2周,随后以氟康唑400 mg/d(6 mg/kg)维持治疗6~12个月以上(低等级,强推荐);也可首选氟康唑或伊曲康唑静脉滴注,待病情稳定后口服序贯治疗(低等级,中等推荐)。对于复杂病例如椎体不稳、脊髓受压、脓肿形成、神经系统严重受累患者,或内科保守治疗病情仍在进展患者,可考虑联合手术治疗(低等级,强推荐)。念珠菌性关节炎较为少见,通常为播散性念珠菌病的一部分,也可为关节术后植入物相关感染。受累关节局部疼痛、触痛、水肿为其常见临床表现,发热相对少见。当侵袭性念珠菌病尤其是念珠菌菌血症患者出现关节肿痛,或关节术后感染行抗细菌治疗无效时,应高度警惕该病可能(低等级,强推荐),建议行关节穿刺术或关节镜检查(低等级,强推荐),关节液培养分离到念珠菌可确诊。治疗目标是缓解症状、清除局部感染灶、预防关节损伤和关节功能重建。3/4的患者经抗真菌或联合外科治疗有效,而早期诊断和积极治疗可缩短疗程、避免关节破坏和功能丧失。但因总体病例数较少,目前尚缺乏确切治疗标准。抗真菌治疗常推荐两性霉素B或氟康唑治疗6周(低等级,强推荐);也有认为棘白菌素类、两性霉素B脂质体对念珠菌生物膜有抗菌活性,推荐初始采用棘白菌素或两性霉素B脂质体治疗2周,随后氟康唑维持治疗4周以上[84,85,86](低等级,强推荐)。部分患者需要联合外科治疗,包括关节腔冲洗、引流和清创术(低等级,强推荐),既可提高疗效,还可缩短病程,但不建议关节腔内注射抗真菌药物。若为植入的人工关节感染,仅用抗真菌药物治疗效果不理想,通常需要置换人工关节,而去除人工关节到再次置换的间期建议为3~6个月,置换后继续治疗12周以上。如果植入装置不能移除,抗真菌药物需长期维持治疗。九、黏膜念珠菌病(mucosal candidiasis)1.口咽部念珠菌病:包括急性假膜性念珠菌病(鹅口疮)、念珠菌口角炎、急慢性萎缩性口炎、慢性增生性念珠菌病等临床类型[87],以鹅口疮最为多见,AIDS、恶性肿瘤、长期广谱抗细菌药物或糖皮质激素应用等免疫功能低下患者易感,并常伴有消化道和播散性念珠菌病的可能。轻症患者予1%~4%碳酸氢钠溶液、0.2%氯己定溶液含漱,制霉菌素悬液(10万单位/mL)每日4次,每次4~6 mL,疗程为7~14 d。中重度患者口服氟康唑200~400 mg/d,治疗14~28 d。替代方案可选用伊曲康唑口服液200 mg,每日1次或泊沙康唑混悬液200~400 mg,每日2次,治疗3 d后改为每日1次,总疗程为14~28 d。氟康唑治疗无效患者可给予伊曲康唑口服液(200 mg/d)、泊沙康唑口服液(初始3 d每日2次,每次400 mg;而后400 mg/d,治疗不超过4周),或两性霉素B混悬液(100 mg/mL,每日4次);也可给予伏立康唑200 mg/次,每日2次。或棘白菌素或两性霉素B 0.3 mg/(kg·d)静脉滴注。复发性念珠菌口咽炎可口服氟康唑100 mg,每周3次。义齿相关念珠菌病患者应清洗义齿和抗真菌药物联合治疗。艾滋病患者为减少复发,尽早抗HIV治疗至关重要。2.念珠菌性食管炎:最常见的症状为吞咽疼痛、吞咽困难,吞咽食物时胸骨后疼痛或烧灼感,还常伴有鹅口疮,恶心、呕吐、食欲减退,体质量减轻,而全身毒血症症状相对较轻。内镜检查多见下段食管壁局部黏膜充血、水肿,假性白斑或表浅溃疡。念珠菌性食管炎是引起食管溃疡的主要原因之一,如不及时治疗可致坏死性食管炎。首选氟康唑口服,每日200~400 mg,疗程为14~21 d;口服不能耐受时,可静脉滴注氟康唑400 mg/d,或棘白菌素类,也可给予两性霉素B[0.3~0.7 mg/(kg·d)](高等级,强推荐)。氟康唑治疗无效者,可选用伊曲康唑口服液、伏立康唑、棘白菌素类、两性霉素B、泊沙康唑混悬液治疗。对于复发患者,建议口服氟康唑每周3次,每次100~200 mg。AIDS患者应尽早行抗HIV治疗[88]。3.肠道念珠菌病:初起轻度腹泻,表现为泡沫样或黏液样便,偶有便中带血,后期为脓血便,出血多时为暗红色糊状黏液便。多数患者伴有腹胀,累及直肠和肛门可引起肛周不适。粪便镜检可见大量菌丝、芽孢,培养有念珠菌生长。通常以对症和支持治疗为主,也可口服制霉菌素50万~100万单位,每日3次,严重或全身播散者治疗方案参照播散性念珠菌病。4.外阴阴道念珠菌病:较为常见,孕妇好发。外阴部红肿、剧烈瘙痒和烧灼感是本病的突出症状。阴道壁充血、水肿,阴道黏膜上有灰色假膜,阴道分泌物浓稠,黄色或乳酪样,有时杂有豆腐渣样白色小块,但无恶臭。确诊需分泌物涂片见真菌孢子或菌丝,涂片阴性者需培养证实。外阴阴道念珠菌病的治疗分为局部或口服用药,治疗单纯外阴阴道念珠菌病,无论免疫功能低下与否均可局部用药。局部药物包括咪康唑软胶囊、克霉唑阴道片或制霉菌素泡腾片;也可选用氟康唑150 mg单剂口服,疗效可达90%以上。对于严重急性外阴阴道念珠菌病,给予氟康唑每72 h 150 mg,2~3剂即可。若为光滑念珠菌所致外阴阴道念珠菌病,唑类药物效果不佳时,给予阴道局部硼酸栓剂每日600 mg,疗程为14 d。也可用制霉菌素栓每日10万单位阴道局部给药,疗程为14 d。复发性外阴阴道念珠菌病,局部或口服氟康唑初始治疗10~14 d,然后氟康唑每周150 mg连续治疗6个月[89]。5.泌尿系统念珠菌病:患者常有尿频、尿急、排尿困难,甚至血尿等膀胱炎症状,少数患者也可出现无症状菌尿,常继发于有长期导尿管留置、糖尿病、多发肾结石、输尿管狭窄等易感因素患者。此外,播散性念珠菌病可经血行播散侵犯肾脏,肾皮质和髓质均可累及,形成脓肿、坏死,以及导致肾功能损伤,临床表现为发热、寒战、腰痛和腹痛。尿常规检查可见红细胞和白细胞,直接镜检可发现念珠菌菌丝和芽孢,脓肿穿刺培养可获阳性结果。但尿培养阳性难以界定污染、定植或感染,同样尿念珠菌菌落计数对于有导尿管的患者也不能鉴别定植或感染。泌尿道超声或CT检查有助于发现泌尿系统结构异常、肾积水、脓肿、气性肾盂肾炎,以及真菌球。前列腺、睾丸或附睾局部感染较少。氟康唑因其通过原型经尿排出,为治疗敏感菌株感染的首选[90]。氟胞嘧啶对除克柔念珠菌以外其他念珠菌有较好抗菌活性,但因其不良反应及单药使用易发生耐药,而建议联合用药。两性霉素B对绝大多数念珠菌有较好抗菌活性,推荐用于难治性感染,但需动态监测肾功能。两性霉素B脂质体因尿中药物浓度低而不推荐使用。其他现有唑类或棘白菌素类抗真菌药物因尿中药物浓度低,常规不推荐使用,但因其有一定肾组织浓度,对于难治性感染患者也可酌情使用。对于无症状菌尿患者,多数为定植,以去除易感因素为主[91]。但对于有粒细胞缺乏、准备开展泌尿系统手术等侵入性操作的菌尿患者,建议口服氟康唑400 mg/d,或静脉滴注两性霉素B 0.3~0.6 mg/(kg·d),手术患者在术前、术后数日内使用。对于有症状的膀胱炎患者建议氟康唑口服200~300 mg/d,疗程为2周;复发患者可联合氟胞嘧啶口服,每次25 mg/kg,每日4次,疗程为7~14 d;对于光滑念珠菌、克柔念珠菌等唑类耐药菌株,建议两性霉素B 0.3~0.6 mg/(kg·d),疗程为1~7 d,也可以注射用水稀释的两性霉素B(50 mg/L)每日膀胱冲洗5 d。念珠菌肾盂肾炎患者可口服氟康唑200~400 mg/d,疗程为2周;对于氟康唑耐药菌株,采用两性霉素B 0.3~0.6 mg/(kg·d)治疗1~7 d,也可联合氟胞嘧啶治疗[92]。泌尿系统真菌球可通过外科手术或膀胱镜摘除,同时予以抗真菌治疗。对于肾造瘘管、支架植入患者,条件许可时建议给予拔除或置换,可通过肾造瘘管给予两性霉素B(25~50 mg,以200~500 mL注射用水稀释)冲洗。对于同时并发念珠菌菌血症患者,初始治疗也可选用棘白菌素类抗真菌药物[93]。十、皮肤念珠菌病(cutaneous candidiasis)皮肤念珠菌病好发于皮肤褶皱处,如腋窝、腹股沟、乳房下、肛门周围、会阴部和指(趾)间等皮肤潮湿部位。主要有念珠菌性间擦疹、丘疹型皮肤念珠菌病、念珠菌性甲沟炎、慢性皮肤黏膜念珠菌病等临床类型。播散性念珠菌病皮肤受累易见于严重免疫功能低下患者,皮损标本的真菌直接镜检和培养有助于诊断。治疗原则首先应保持创面干燥和局部外用抗真菌药物治疗,常用的药物有克霉唑、益康唑、咪康唑、酮康唑、舍他康唑、卢立康唑、联苯苄唑、特比萘芬、布替萘芬、环吡酮胺、利拉萘酯、阿莫罗芬等乳膏、凝胶、溶液或洗剂,每日1~2次,疗程1~2周,适用于多种皮肤念珠菌病。对于严重的慢性皮肤黏膜念珠菌病和播散性念珠菌病皮肤累及患者,尚需口服或静脉应用抗真菌药物,其中氟康唑和伊曲康唑最为常用。根据基本类型选择适宜的疗程和疗法,有些慢性感染需要持续数月至数年[94]。执笔:朱利平(复旦大学附属华山医院感染科)顾问:翁心华(复旦大学附属华山医院感染科)核心小组成员(按姓名汉语拼音为序):曹彬(中日友好医院呼吸内科),常青(复旦大学附属眼耳鼻喉科医院眼科),陈佰义(中国医科大学附属第一医院感染科),陈德昌(上海交通大学附属瑞金医院重症医学科),陈忠清(复旦大学附属华山医院病理科),黄英姿(东南大学附属中大医院重症医学科),黎元(复旦大学附属华山医院放射科),刘正印(北京协和医院感染科),吕良敬(上海交通大学附属仁济医院风湿病科),吕晓菊(四川大学附属华西医院感染科),王辉(北京大学人民医院检验科),吴德沛(苏州大学附属第一医院血液内科),余进(北京大学第一医院皮肤性病科),俞云松(浙江大学附属邵逸夫医院感染科),郑波(北京大学第一医院临床药理研究所)指导小组成员(按姓名汉语拼音为序):管向东(中山大学附属第一医院重症医学科),黄晓军(北京大学血液病研究所),李若瑜(北京大学第一医院皮肤性病科),李太生(北京协和医院感染科),刘又宁(中国人民解放军总医院呼吸病研究所),倪语星(上海交通大学附属瑞金医院检验科),邱海波(东南大学附属中大医院重症医学科),瞿介明(上海交通大学附属瑞金医院呼吸内科),王睿(解放军总医院临床药理研究所),徐英春(北京协和医院检验科),章强强(复旦大学附属华山医院皮肤科),张文宏(复旦大学附属华山医院感染科),赵鸿(北京大学第一医院感染科)利益冲突利益冲突 所有作者均声明不存在利益冲突参考文献[1]EggimannP, PittetD. Candida colonization index and subsequent infection incritically ill surgical patients: 20 years later[J]. Intensive Care Med, 2014,40(10):1429-1448. DOI:10.1007/s00134-014-3355-z.[2]LeónC, Ruiz-SantanaS, SaavedraP, et al. Usefulness of the "Candida score" for discriminating between Candida colonization and invasive candidiasis in non-neutropenic Critically ill patients: a prospective multicenter study [J]. Crit Care Med, 2009,37(5):1624-1633. DOI:10.1097/CCM.0b013e31819daa14.[3]PosteraroB, De PascaleG, TumbarelloM, et al. Early diagnosis of candidemia in intensive care unit patients with sepsis: a prospective comparison of(1→3)-β-D-glucan assay, Candida score, and colonization index[J/OL]. Crit Care, 2011,15(5):R249(2011-10-22)[2019-10-30].https://ccforum.biomedcentral.com/articles/10.1186/cc10507.DOI:10.1186/cc10507.[4]LeroyG, LambiotteF, ThéveninD, et al. Evaluation of "Candida score" in critically ill patients: a prospective,multicenter, observational, cohort study [J/OL]. Ann Intensive Care, 2011,1(1):50(2011-11-30)[2019-10-30].https://annalsofintensivecare.springeropen.com/articles/10.1186/2110-5820-1-50.DOI:10.1186/2110-5820-1-50.[5]Ostrosky-ZeichnerL, SableC, SobelJ,et al. Multicenter retrospective development and validation of a clinical prediction rule for nosocomial invasive candidiasis in the intensive care setting[J]. Eur J Clin Microbiol Infect Dis, 2007, 26(4):271-276. DOI:10.1007/s10096-007-0270-z.[6]HermsenED, ZapapasMK, MaiefskiM,et al. Validation and comparison of clinical prediction rules for invasive candidiasis in intensive care unit patients: a matched case-control study[J/OL]. Crit Care, 2011,15(4):R198(2011-08-09)[2019-10-30].https://ccforum.biomedcentral.com/articles/10.1186/cc10366.DOI:10.1186/cc10366.[7]PlayfordEG, LipmanJ, JonesM, et al.Problematic dichotomization of risk for intensive care unit (ICU)-acquired invasive candidiasis: results using a risk-predictive model to categorize 3 levels of risk from a multicenter prospective cohort of Australian ICU patients[J]. Clin InfectDis, 2016,63(11):1463-1469.DOI:10.1093/cid/ciw610.[8]GuoF, YangY, KangY, et al. Invasive candidiasis in intensive care units in China: a multicentre prospective observational study[J]. J Antimicrob Chemother, 2013,68(7):1660-1668. DOI:10.1093/jac/dkt083.[9]XiaoM, SunZY, KangM, et al. Five-year national surveillance of invasive candidiasis: species distribution and azole susceptibility from the China hospital invasive fungal surveillance net (CHIF-NET) study[J/OL]. J Clin Microbiol, 2018,56(7): e00577-18(2018-06-25)[2019-10-30].https://jcm.asm.org/content/56/7/e00577-18.long. DOI:10.1128/JCM.00577-18.[10]WangX, BingJ, ZhengQ, et al. The first isolate of Candida auris in China: clinical and biological aspects [J/OL]. Emerg Microbes Infect,2018,7(1):93 (2018-05-18)[2019-10-30].https://doi.org/10.1038/s41426-018-0095-0.[11]TianS, RongC, NianH, et al. First cases and risk factors of super yeast Candida auris infection or colonization from Shenyang,China [J/OL]. Emerg Microbes Infect, 2018,7(1):128(2018-07-11)[2019-10-30].https://doi.org/10.1038/s41426-018-0131-0.[12]PfallerMA, DiekemaDJ, TurnidgeJD, et al. Twenty years of the SENTRY antifungal surveillance program: results for Candida species from 1997-2016[J]. Open Forum Infect Dis, 2019,6Suppl 1:S79-94. DOI:10.1093/ofid/ofy358.[13]LiuW, TanJ, SunJ, et al. Invasive candidiasis in intensive care units in China: in vitro antifungal susceptibility in the China-SCAN study[J]. J Antimicrob Chemother,2014,69(1):162-167. DOI:10.1093/jac/dkt330.[14]XiaoM, FanX, ChenSC, et al.Antifungal susceptibilities of Candida glabrata species complex, Candida krusei, Candida parapsilosis species complex and Candida tropicalis causing invasive candidiasis in China: 3 year national surveillance[J]. J Antimicrob Chemother, 2015,70(3):802-810. DOI:10.1093/jac/dku460.[15]CLSI. M27 Reference method for broth dilution antifungal susceptibility testing of yeasts [S]. 4th ed. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute,2017.[16]CLSI. M59 Epidemiological cutoff values for antifungal susceptibility testing [S]. 2nd ed. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute,2018.[17]CLSI. M60 Performance standards for antifungal susceptibility testing of yeasts[S]. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute,2017.[18]MikulskaM, GiacobbeDR, FurfaroE, et al. Lower sensitivity of serum (1,3)-β-D-glucan for the diagnosis of candidaemia due to Candida parapsilosis[J]. Clin Microbiol Infect, 2016,22(7):646.e5-646.e8. DOI:10.1016/j.cmi.2016.05.020.[19]ScudellerL, BassettiM, ConciaE, et al. MEDical wards Invasive Candidiasis Algorithms(MEDICAL):consensus proposal for management[J]. Eur J Intern Med, 2016, 34:45-53.DOI:10.1016/j.ejim.2016.07.007.[20]TissotF, AgrawalS, PaganoL, et al. ECIL-6 guidelines for the treatment of invasive candidiasis, aspergillosis and mucormycosis in leukemia and hematopoietic stem cell transplant patients[J]. Haematologica, 2017,102(3):433-444. DOI:10.3324/haematol.2016.152900.[21]Martin-LoechesI, AntonelliM, Cuenca-EstrellaM, et al. ESICM/ESCMID task force on practical management of invasive candidiasis in critically ill patients[J]. Intensive Care Med, 2019,45(6):789-805. DOI:10.1007/s00134-019-05599-w.[22]AslamS, RotsteinC. Candida infections in solid organ transplantation: guidelines from the American Society of Transplantation Infectious Diseases Community of Practice[J/OL]. Clin Transplant,2019, 33(9):e13623(2019-06-02)[2019-10-30]. https://doi.org/10.1111/ctr.13623.[23]ClancyCJ, NguyenMH. Finding the "missing 50%" of invasive candidiasis: how nonculture diagnostics will improve understanding of disease spectrum and transform patient care[J]. Clin Infect Dis, 2013,56(9):1284-1292. DOI:10.1093/cid/cit006.[24]LuY, ChenYQ, GuoYL, et al.Diagnosis of invasive fungal disease using serum (1→3)-β-D-glucan: a bivariate meta-analysis[J]. Intern Med,2011,50(22):2783-2791. DOI:10.2169/internalmedicine.50.6175.[25]MurriR, CamiciM, PosteraroB,et al. Performance evaluation of the (1,3)-β-D-glucan detection assay in non-intensive care unit adult patients[J]. Infect Drug Resist, 2018,12:19-24. DOI:10.2147/IDR.S181489.[26]JaijakulS, VazquezJA, SwansonRN, et al. (1,3)-β-D-glucan as aprognostic marker of treatment response in invasive candidiasis[J]. Clin Infect Dis,2012,55(4):521-526. DOI:10.1093/cid/cis456.[27]PappasPG, KauffmanCA, AndesDR, et al. Clinical practice guideline for the management of candidiasis: 2016 update by the Infectious Diseases Society of America[J]. Clin Infect Dis, 2016,62(4):e1-e50.DOI:10.1093/cid/civ933.[28]PattersonTF, ThompsonGR 3rd, DenningDW, et al.Practice guidelines for the diagnosis and management of aspergillosis: 2016 update by the Infectious Diseases Society of America[J]. Clin Infect Dis, 2016,63(4):e1-e60. DOI:10.1093/cid/ciw326.[29]MaertensJA, GirmeniaC, BrüggemannRJ, et al.European guidelines for primary antifungal prophylaxis in adult haematology patients: summary of the updated recommendations from the European Conference on Infections in Leukaemia[J]. J Antimicrob Chemother, 2018,73(12):3221-3230.DOI:10.1093/jac/dky286.[30]MedSci. NCCN clinical practice guidelines in oncology: prevention and treatment of cancer-related infections(version 1.2019)[EB/OL]. (2018-10-25)[2019-10-30].http://www.medsci.cn/guideline/show_article.do?id=fe8e21c001660af2.[31]SchusterMG, EdwardsJE,, SobelJD,et al. Empirical fluconazole versus placebo for intensive care unit patients: a randomized trial[J]. Ann Intern Med, 2008,149(2):83-90. DOI:10.7326/0003-4819-149-2-200807150-00004.[32]KollefM, MicekS, HamptonN, et al.Septic shock attributed to Candida infection: importance of empiric therapy and source control[J]. Clin Infect Dis, 2012,54(12):1739-1746. DOI:10.1093/cid/cis305.[33]BassettiM, RighiE, AnsaldiF,et al. A multicenter study of septic shock due to candidemia: outcomes and predictors of mortality[J]. Intensive Care Med, 2014,40(6):839-845. DOI:10.1007/s00134-014-3310-z.[34]TimsitJF, AzoulayE, SchwebelC, et al.Empirical micafungin treatment and survival without invasive fungal infection in adults with ICU-acquired sepsis, Candida colonization, and multiple organ failure: the EMPIRICUS randomized clinical trial[J]. JAMA, 2016,316(15):1555-1564. DOI:10.1001/jama.2016.14655.[35]AndesDR, SafdarN, BaddleyJW, et al.Impact of treatment strategy on outcomes in patients with candidemia and other forms of invasive candidiasis: apatient-level quantitative review of randomized trials[J]. Clin Infect Dis, 2012,54(8):1110-1122. DOI:10.1093/cid/cis021.[36]RexJH, BennettJE, SugarAM, et al. A randomized trial comparing fluconazole with amphotericin B for the treatment of candidemia in patients without neutropenia. Candidemia Study Group and the National Institute[J]. N Engl J Med,1994,331(20):1325-1330. DOI:10.1056/NEJM199411173312001.[37]Mora-DuarteJ, BettsR, RotsteinC, et al. Comparison of caspofungin and amphotericin B for invasive candidiasis[J]. N Engl J Med, 2002,347(25):2020-2029. DOI:10.1056/NEJMoa021585.[38]KullbergBJ, SobelJD, RuhnkeM, et al.Voriconazole versus a regimen of amphotericin B followed by fluconazole for candidaemia in non-neutropenic patients: a randomised non-inferiority trial[J].Lancet, 2005,366(9495):1435-1434. DOI:10.1016/S0140-6736(05)67490-9.[39]KuseER, ChetchotisakdP, da CunhaCA,et al. Micafungin versus liposomal amphotericin B for candidaemia and invasive candidosis: a phase Ⅲ randomised double-blind trial[J]. Lancet, 2007,369(9572):1519-1527. DOI:10.1016/S0140-6736(07)60605-9.[40]PappasPG, RotsteinCM, BettsRF, et al. Micafungin versus caspofungin for treatment of candidemia and other forms of invasive candidiasis[J]. Clin Infect Dis, 2007,45(7):883-893. DOI:10.1086/520980.[41]KeaneS, GeogheganP, PovoaP,et al.Systematic review on the first line treatment of amphotericin B in critically ill adults with candidemia or invasive candidiasis[J]. Expert Rev Anti Infect Ther, 2018,16(11):839-847. DOI:10.1080/14787210.2018.1528872.[42]ShieldsRK, NguyenMH, PressEG, et al. Caspofungin MICs correlate with treatment outcomes among patients with Candida glabrata invasive candidiasis and prior echinocandin exposure[J]. Antimicrob Agents Chemother, 2013,57(8):3528-3535. DOI:10.1128/AAC.00136-13.[43]MorrellM, FraserVJ, KollefMH. Delaying the empiric treatment of Candida bloodstream infection until positive blood culture results are obtained: apotential risk factor for hospital mortality[J]. Antimicrob Agents Chemother, 2005,49(9):3640-3645. DOI:10.1128/AAC.49.9.3640-3645.2005.[44]KangSJ, KimSE, KimUJ, et al. Clinical characteristics and risk factors for mortality in adult patients with persistent candidemia[J]. J Infect, 2017,75(3):246-253. DOI:10.1016/j.jinf.2017.05.019.[45]AgnelliC, ValerioM, BouzaE, et al. Persistent Candidemia in adults: underlying causes and clinical significance in the antifungal stewardship era[J]. Eur J Clin Microbiol Infect Dis,2019,38(3):607-614. DOI:10.1007/s10096-019-03477-3.[46]VazquezJ, ReboliAC, PappasPG, et al. Evaluation of an early step-down strategy from intravenous anidulafungin to oral azole therapy for the treatment of candidemia and other forms of invasive candidiasis: results from an open-label trial[J/OL]. BMC Infect Dis, 2014,14:97(2014-02-21)[2019-10-30].https://bmcinfectdis.biomedcentral.com/articles/10.1186/1471-2334-14-97.DOI:10.1186/1471-2334-14-97.[47]JaffalK, PoissyJ, RouzeA, et al.De-escalation of antifungal treatment in critically ill patients with suspected invasive Candida infection: incidence, associated factors, and safety[J/OL]. Ann Intensive Care, 2018,8(1):49(2018-04-19)[2019-10-30].https://annalsofintensivecare.springeropen.com/articles/10.1186/s13613-018-0392-8.DOI:10.1186/s13613-018-0392-8.[48]Garnacho-MonteroJ, Díaz-MartínA, García-CabreraE, et al. Impact on hospital mortality of catheter removal and adequate antifungal therapy in Candida spp. bloodstream infections[J]. J Antimicrob Chemother, 2013,68(1):206-213. DOI:10.1093/jac/dks347.[49]Puig-AsensioM, PadillaB, Garnacho-MonteroJ,et al. Epidemiology and predictive factors for early and late mortality in Candida bloodstream infections: a population-based surveillance in Spain[J]. Clin Microbiol Infect, 2014,20(4):O245-254. DOI:10.1111/1469-0691.12380.[50]Puig-AsensioM, Ruiz-CampsI, Fernández-RuizM, et al. Epidemiology and outcome of candidaemia in patients with oncological and haematological malignancies: results from a population-based surveillance in Spain[J]. Clin Microbiol Infect, 2015,21(5):491.e1-491.e10. DOI:10.1016/j.cmi.2014.12.027.[51]ParkKH, LeeMS, LeeSO, et al.Diagnostic usefulness of differential time to positivity for catheter-related candidemia[J]. J Clin Microbiol, 2014, 52(7):2566-2572. DOI:10.1128/JCM.00605-14.[52]StempelJM, FarmakiotisD, TarrandJJ, et al. Time-to-reporting of blood culture positivity and central venous catheter-associated Candida glabrata fungemia in cancer patients[J]. Diagn Microbiol Infect Dis, 2016,85(3):391-393. DOI:10.1016/j.diagmicrobio.2016.04.001.[53]GuaranaM, NucciM. Acute disseminated candidiasis with skin lesions: a systematic review[J]. Clin Microbiol Infect, 2018,24(3):246-250. DOI:10.1016/j.cmi.2017.08.016.[54]De CastroN, MazoyerE, PorcherR, et al. Hepatosplenic candidiasis in the era of new antifungal drugs: a study in Paris 2000-2007[J]. Clin Microbiol Infect,2012,18(6):E185-187. DOI:10.1111/j.1469-0691.2012.03819.x.[55]CornelyOA, BassettiM, CalandraT, et al. ESCMID guideline for the diagnosis and management of Candida diseases 2012: non-neutropenic adult patients[J]. Clin Microbiol Infect, 2012,18Suppl 7:S19-37. DOI:10.1111/1469-0691.12039.[56]Fernández-CruzA, Cruz MenárguezM, MuñozP, et al. The search for endocarditis in patients with candidemia: a systematic recommendation for echocardiography? A prospective cohort[J]. Eur J Clin Microbiol Infect Dis, 2015,34(8):1543-1549. DOI:10.1007/s10096-015-2384-z.[57]SteinbachWJ, PerfectJR, CabellCH,et al. A meta-analysis of medical versus surgical therapy for Candida endocarditis[J]. J Infect, 2005,51(3):230-247. DOI:10.1016/j.jinf.2004.10.016.[58]RivoisyC, VenaA, SchaefferL,et al. Prosthetic valve Candida spp. endocarditis: new insights into long-term prognosis-the ESCAPE study[J]. Clin Infect Dis, 2018,66(6):825-832. DOI:10.1093/cid/cix913.[59]ArnoldCJ, JohnsonM, BayerAS, et al. Candida infective endocarditis:an observational cohort study with a focus on therapy[J]. Antimicrob Agents Chemother, 2015,59(4):2365-2373. DOI:10.1128/AAC.04867-14.[60]SmegoRA,, AhmadH. The role of fluconazole in the treatment of Candida endocarditis: a meta-analysis[J]. Medicine (Baltimore), 2011,90(4):237-249. DOI:10.1097/MD.0b013e3182259d38.[61]GiulianoS, GuastalegnameM, RussoA, et al. Candida endocarditis:systematic literature review from 1997 to 2014 and analysis of 29 cases from the Italian Study of Endocarditis[J]. Expert Rev Anti Infect Ther, 2017,15(9):807-818. DOI:10.1080/14787210.2017.1372749.[62]SandoeJA, BarlowG, ChambersJB, et al. Guidelines for the diagnosis, prevention and management of implantable cardiac electronic device infection. Report of a joint Working Party project on behalf of the British Society for Antimicrobial Chemotherapy (BSAC,host organization), British Heart Rhythm Society (BHRS), British Cardiovascular Society (BCS), British Heart Valve Society (BHVS) and British Society for Echocardiography (BSE)[J]. J Antimicrob Chemother, 2015,70(2):325-359. DOI:10.1093/jac/dku383.[63]BaddourLM. Long-term suppressive antimicrobial therapy for intravascular device-related infections[J]. Am J Med Sci, 2001,322(4):209-212. DOI:10.1097/00000441-200110000-00011.[64]BassettiM, PeghinM, CarneluttiA, et al.Clinical characteristics and predictors of mortality in cirrhotic patients with candidemia and intra-abdominal candidiasis: a multicenter study[J]. Intensive Care Med, 2017,43(4):509-518. DOI:10.1007/s00134-017-4717-0.[65]PetersenMW, PernerA, RavnF, et al. Untargeted antifungal therapy in adult patients with complicated intra-abdominal infection: a systematic review[J]. Acta Anaesthesiol Scand, 2018,62(1):6-18. DOI:10.1111/aas.13031.[66]Oude LashofAM, RothovaA, SobelJD, et al. Ocular manifestations of candidemia[J]. Clin Infect Dis, 2011,53(3):262-268. DOI:10.1093/cid/cir355.[67]BreazzanoMP, DayHR,, BlochKC, et al. Utility of ophthalmologic screening for patients with Candida bloodstream infections: a systematic review[J]. JAMA Ophthalmol, 2019,137(6):698-710. DOI:10.1001/jamaophthalmol.2019.0733.[68]RiddellJ 4th, ComerGM, KauffmanCA. Treatment of endogenous fungal endophthalmitis: focus on new antifungal agents[J]. Clin Infect Dis, 2011,52(5):648-653. DOI:10.1093/cid/ciq204.[69]刘又宁,佘丹阳,孙铁英,等.中国1998年至2007年临床确诊的肺真菌病患者的多中心回顾性调查[J].中华结核和呼吸杂志,2011,34(2):86-90. DOI:10.3760/cma.j.issn.1001-0939.2011.02.004.[70]SuKC, ChouKT, HsiaoYH, et al. Measuring(1,3)-β-D-glucan in tracheal aspirate, bronchoalveolar lavage fluid, and serum for detection of suspected Candida pneumonia in immunocompromised and critically ill patients: a prospective observational study [J/OL]. BMC Infect Dis, 2017,17(1):252(2017-04-08)[2019-10-30].https://bmcinfectdis.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12879-017-2364-2.DOI:10.1186/s12879-017-2364-2.[71]AzoulayE, TimsitJF, TaffletM, et al.Candida colonization of the respiratory tract and subsequent pseudomonas ventilator-associated pneumonia [J]. Chest, 2006, 129(1):110-117. DOI:10.1378/chest.129.1.110.[72]TanX, ZhuS, YanD, et al. Candida spp. airway colonization: a potential risk factor for Acinetobacter baumannii ventilator-associated pneumonia [J]. Med Mycol, 2016,54(6):557-566. DOI:10.1093/mmy/myw009.[73]XieJ, YangY, HuangY, et al. The current epidemiological landscape of ventilator-associated pneumonia in the intensive care unit: a multicenter prospective observational study in China[J]. Clin Infect Dis, 2018,67Suppl 2:S153-161. DOI:10.1093/cid/ciy692.[74]NseirS, JozefowiczE, CavestriB, et al. Impact of antifungal treatment on Candida-Pseudomonas interaction: a preliminary retrospective case-control study[J]. Intensive Care Med, 2007,33(1):137-142. DOI:10.1007/s00134-006-0422-0.[75]YuYT, LiJ, WangSL, et al. Effect of Candida albicans bronchial colonization on hospital-acquired bacterial pneumonia in patients with systemic lupus erythematosus[J/OL]. Ann Transl Med, 2019,7(22):673(2019-09-25)[2019-10-30].http://dx.doi.org/10.21037/atm.2019.10.44.[76]DermawanJKT, GhoshS, KeatingMK,et al.Candida pneumonia with severe clinical course, recovery with antifungal therapy and unusual pathologic findings: a case report[J/OL]. Medicine (Baltimore), 2018,97(2):e9650(2018-01-12)[2019-10-30]. https://insights.ovid.com/crossref?an=00005792-201801120-00059. DOI:10.1097/MD.0000000000009650.[77]SalvatoreCM, ChenTK, ToussiSS, et al. (1→3)-β-D-glucan in cerebrospinal fluid as a biomarker for Candida and Aspergillus infections of the central nervous system in pediatric patients[J]. J Pediatric Infect Dis Soc, 2016,5(3):277-286. DOI:10.1093/jpids/piv014.[78]SimnerPJ, MillerHB, BreitwieserFP, et al. Development and optimization of metagenomic next-generation sequencing methods for cerebrospinal fluid diagnostics[J/OL]. J Clin Microbiol, 2018,56(9): e00472-18(2018-08-27)[2019-10-30].https://jcm.asm.org/content/56/9/e00472-18.long.DOI:10.1128/JCM.00472-18.[79]Schmidt-HieberM, SillingG, SchalkE, et al. CNS infections in patients with hematological disorders (including allogeneic stem-cell transplantation)-Guidelines of the Infectious Diseases Working Party (AGIHO) of the German Society of Hematology and Medical Oncology(DGHO)[J]. Ann Oncol, 2016, 27(7):1207-1225. DOI:10.1093/annonc/mdw155.[80]O′BrienD, StevensNT, LimCH, et al. Candida infection of the central nervous system following neurosurgery: a 12-year review [J]. Acta Neurochir (Wien), 2011, 153(6):1347-1350. DOI:10.1007/s00701-011-0990-9.[81]TunkelAR, HasbunR, BhimrajA,et al. 2017 Infectious Diseases Society of America′s clinical practice guidelines for healthcare-associated ventriculitis and meningitis [J]. Clin Infect Dis, 2017,64(6):e34-65. DOI:10.1093/cid/ciw861.[82]GamaletsouMN, KontoyiannisDP, SipsasNV, et al. Candida osteomyelitis: analysis of 207 pediatric and adult cases (1970-2011)[J]. Clin Infect Dis, 2012,55(10):1338-1351. DOI:10.1093/cid/cis660.[83]RichaudC, De LastoursV, PanhardX, et al. Candida vertebral osteomyelitis (CVO) 28 cases from a 10-year retrospective study in France[J/OL]. Medicine (Baltimore), 2017,96(31):e7525(2017-08-04)[2019-10-30].https://insights.ovid.com/crossref?an=00005792-201708040-00007.DOI:10.1097/MD.0000000000007525.[84]CoboF, Rodríguez-GrangerJ, LópezEM, et al. Candida-induced prosthetic joint infection. A literatu rereview including 72 cases and a case report [J]. Infect Dis (Lond), 2017,49(2):81-94. DOI:10.1080/23744235.2016.1219456.[85]Escolà-VergéL, Rodríguez-PardoD, Lora-TamayoJ, et al. Candida periprosthetic joint infection: a rare and difficult-to-treat infection [J]. J Infect, 2018, 77(2):151-157. DOI:10.1016/j.jinf.2018.03.012.[86]LeeYR, KimHJ, LeeEJ, et al. Prosthetic joint infections caused by Candida species: a systematic review and a case series [J]. Mycopathologia,2019,184(1):23-33. DOI:10.1007/s11046-018-0286-1.[87]LewisMAO, WilliamsDW. Diagnosis and management of oral candidosis [J]. Br Dent J, 2017,223(9):675-681. DOI:10.1038/sj.bdj.2017.886.[88]HoverstenP, OtakiF, KatzkaDA. Course of esophageal candidiasis and outcomes of patients at a single center [J]. Clin Gastroenterol Hepatol, 2019,17(1):200-202.e1. DOI:10.1016/j.cgh.2018.04.035.[89]SobelJD. Recurrent vulvovaginal candidiasis[J]. Am J Obstet Gynecol, 2016, 214(1):15-21. DOI:10.1016/j.ajog.2015.06.067.[90]SobelJD, KauffmanCA, McKinseyD,et al. Candiduria: a randomized, double-blind study of treatment with fluconazole and placebo. The National Institute of Allergy and Infectious Diseases (NIAID) Mycoses Study Group[J]. Clin Infect Dis, 2000,30(1):19-24.DOI:10.1086/313580.[91]JacobsDM, DilworthTJ, BeydaND, et al. Overtreatment of asymptomatic candiduria among hospitalized patients: a multi-institutional study[J/OL].Antimicrob Agents Chemother, 2017,62(1): e01464-17(2017-12-21)[2019-10-30].https://aac.asm.org/content/62/1/e01464-17.long.DOI:10.1128/AAC.01464-17.[92]KauffmanCA, VazquezJA, SobelJD, et al. Prospective multicenter surveillance study of funguria in hospitalized patients. The National Institute for Allergy and Infectious Diseases (NIAID) Mycoses Study Group [J]. Clin Infect Dis, 2000,30(1):14-18. DOI:10.1086/313583.[93]CuervoG, Garcia-VidalC, Puig-AsensioM, et al. Echinocandins compared to fluconazole for candidemia of a urinary tract source: a propensity score analysis[J]. Clin Infect Dis, 2017,64(10):1374-1379. DOI:10.1093/cid/cix033.[94]MetinA, DilekN, BilgiliSG. Recurrent candidal intertrigo: challenges and solutions[J]. Clin Cosmet Investig Dermatol, 2018,11:175-185. DOI:10.2147/CCID.S127841.

贡献者信息

中国成人念珠菌病诊断与治疗专家共识组

通信作者

王贵强

北京大学第一医院感染科 100034

Email:John131212@hotmail.com

关键词

念珠菌病;

诊断;

治疗;

利益冲突

利益冲突 所有作者均声明不存在利益冲突

历史

出版日期:2020-01-15

收稿日期:2019-10-30

本文编辑

蒋蔚娜 沈漱瑜 

Consensus and Guideline

Chinese consensus on the diagnosis and management of adult candidiasis

Chinese Adult Candidiasis Consensus Group

Published 2020-01-15

Cite as Chin J Infect Dis, 2020,38(01): 29-43. DOI: 10.3760/cma.j.issn.1000-6680.2020.01.005

Contributor Information

Chinese Adult Candidiasis Consensus Group

共有条评论

验证码

发布

本文被引情况

CSCD:

0次

万方数据:

0次

Scopus:

0次

施引文献(最多仅列5条文献,进入CSCD官网发现更多)

未获取施引文献信息...

暂无相关资源

相关视频

查看更多

无相关视频

无相关视频

无相关视频

 

 

展开/关闭提纲

查看图表详情

回到顶部

放大字体

缩小字体

标签

关键词

念珠菌病

诊断

治疗

侵袭性念珠菌病

两性霉素B

氟康唑

诊断和治疗

诊断与治疗

棘白菌素类

抗真菌治疗

念珠菌病

诊断

治疗

中华医学会及《中华医学杂志》社有限责任公司版权所有 未经书面授权禁止使用

京ICP备07035254号 京公网安备11010102000192号 出版物经营许可证 新出发京零 字第东130025号

向我们报错

PDF与文章不符错误

PDF失效

文档错误

出处错误

作者姓名或顺序错误

作者单位错误

或请将文献题目、链接及错误信息发邮件club.ph@cma.org.cn

请选择PDF下载会员类型

取消

下载

出    处:中华传染病杂志2020年38卷01期

文    题:中国成人念珠菌病诊断与治疗专家共识

优惠价:0 元

账户余额支付

账户余额:0 元

余额足够时不再提示

取消

直接购买

刊    期:中华传染病杂志2020年38卷01期

优惠价:0 元    原价:0 元

账户余额支付

账户余额:0 元

余额足够时不再提示

取消

直接购买

支付成功!

关闭

购买失败,请稍后再试!

取消

去充值

点赞成功!

关闭

收藏成功!

关闭

没有权限下载,请稍后再试!

关闭

收藏

选择收藏夹:

第二个

第二个

新建收藏夹

分享到我的朋友圈

网络异常,请联系客服

取消

Share

微信

新浪微博

有道笔记

Twitter

Facebook

Google+

Evernote

Reddit

Diigo

LinkedIn

Instapaper

i贴吧

FriendFeed

豆瓣网

复制网址

收藏夹

Gmail

Poco网

ReadItLater

念珠菌病 - 感染 - 《默沙东诊疗手册大众版》

念珠菌病 - 感染 - 《默沙东诊疗手册大众版》

默沙东 诊疗手册

Please confirm that you are not located inside the Russian Federation

我是专业医学人士

我不是专业医学人士

要离开本网站吗?

您选择的链接将带您前往第三方网站。我们无法控制任何第三方网站的内容或对其负责。

继续

取消

honeypot link

提供者

公司简介

职业生涯

研究

环球链接

Common.SkipToMainContent

默沙东诊疗手册

大众版

自 1899 年备受信任的医学信息提供者

浏览专业版

A

A

A

A

A

A

浏览专业版

搜索

Enter search terms to find related medical topics, multimedia and more.

Advanced Search:

• Use “ “ for phrases

o [ “pediatric abdominal pain” ]

• Use – to remove results with certain terms

o [ “abdominal pain” –pediatric ]

• Use OR to account for alternate terms

o [teenager OR adolescent ]

搜索

首页

医学主题

症状

急症

资源

关于

免责声明

隐私

使用条件

联系我们

兽医手册(仅有英文版)

家庭版

/

感染

/

真菌感染

/

念珠菌病

/

在该主题中

本章节的其他主题

真菌感染概述

曲霉菌病

皮炎芽生菌病

念珠菌病

球孢子菌病

隐球菌病

组织胞浆菌病

毛霉菌病

副球孢子菌病

孢子丝菌病

念珠菌病

(念珠菌病;念珠菌病;酵母菌感染)

作者:

Sanjay G. Revankar

, MD, Wayne State University School of Medicine

全面审查/修订4月 2021

浏览专业版

小知识

症状

诊断

治疗

主题资源

3D 模型 (0)

图片 (4)

鹅口疮(假牙下和舌上)

鹅口疮(唇)

鹅口疮(舌)

食道念珠菌病

实验室检测 (0)

表格 (0)

视频 (0)

音频 (0)

念珠菌病是由多种称为念珠菌的酵母菌引起的真菌感染,尤其是白色念珠菌。 最常见的念珠菌病是口腔、阴道或皮肤的浅表感染,症状包括白斑和/或红斑以及瘙痒和刺激症状。 免疫系统薄弱者可致食道和其它内脏器官严重感染。 感染物显微镜下检查和送痰培养确定诊断。 抗真菌药可表面应用或口服,严重感染需静脉治疗。 正常情况下念珠菌存在于皮肤、肠道及女性生殖道。这些部位的念珠菌通常不致病。但是,真菌有时会引起 皮肤感染 念珠菌病(酵母菌感染) 念珠菌病是酵母菌念珠菌引起的感染。 念珠菌病易发生在潮湿的皮肤部位。 念珠菌病可能会导致皮疹、鳞屑、瘙痒和肿胀。 医生检查受累部位,并在显微镜下观察皮肤样本或通过培养来观察。 抗真菌乳膏或口服抗真菌药物通常可治愈念珠菌病。 阅读更多 、 口腔感染 鹅口疮 念珠菌病是酵母菌念珠菌引起的感染。 念珠菌病易发生在潮湿的皮肤部位。 念珠菌病可能会导致皮疹、鳞屑、瘙痒和肿胀。 医生检查受累部位,并在显微镜下观察皮肤样本或通过培养来观察。 抗真菌乳膏或口服抗真菌药物通常可治愈念珠菌病。 阅读更多 (影响粘膜)或 阴道感染 阴道炎概述(阴道感染或炎症) 阴道感染是女性就诊的最常见原因之一,每年约有数百万女性因此而就诊。 阴道感染是由感染性微生物(如细菌或酵母菌)引起。 感染通常引起阴道分泌物,伴随阴道和外阴(阴唇)瘙痒、红肿,有时还有烧灼感和疼痛。 医生可从阴道或宫颈取得分泌物检测感染性微生物。... 阅读更多 。上述情况虽然免疫正常人群可发生,但糖尿病、肿瘤、AIDS及孕妇更常见,感染也更持久。口腔和食道念珠菌病常见于艾滋病患者。念珠菌病在服用抗生素的人群中也很常见,因为抗生素会杀死通常存在于体内并与念珠菌竞争的细菌,从而使念珠菌不受控制地生长。 念珠菌病大都不舒服,但很少有生命危险。然而,某些形式的念珠菌病是严重的。它们包括 侵袭性念珠菌病 念珠菌血症(侵袭性念珠菌病的最常见形式) (也请参见 真菌感染概述 真菌感染概述 真菌既非植物也非动物。虽然一度将其归入植物但现在将其归入独立的一类生物。一些真菌可引起人体感染。 因真菌孢子常存在于空气或土壤中,故真菌感染常最先从肺或皮肤开始。 除非免疫系统由于药物或疾病而受损,否则真菌感染很少是严重的。 真菌感染一般进展缓慢。... 阅读更多 、皮肤 念珠菌病 念珠菌病(酵母菌感染) 念珠菌病是酵母菌念珠菌引起的感染。 念珠菌病易发生在潮湿的皮肤部位。 念珠菌病可能会导致皮疹、鳞屑、瘙痒和肿胀。 医生检查受累部位,并在显微镜下观察皮肤样本或通过培养来观察。 抗真菌乳膏或口服抗真菌药物通常可治愈念珠菌病。 阅读更多 和 阴道酵母菌感染 阴道酵母菌感染(念珠菌病) 阴道酵母菌感染(也称为 念珠菌病)是由一种称为念珠菌的感染性微生物引起,通常是白色念珠菌。 阴道酵母菌感染可导致阴道和外阴剧烈瘙痒,女性通常有粘稠的白色、凝乳样分泌物。 如果症状表明是阴道感染,医生会检阴道分泌物样本,并可能检查子宫颈分泌物,判断是否为感染性微生物引发的感染。 抗真菌药——乳膏、阴道栓剂或口服药——是有效的治疗方法。 怀孕、糖尿病或免疫系统减弱会增加阴道酵母菌感染的风险。 阅读更多 。)。 在侵袭性念珠菌病中,感染扩散到身体的其它部位,如心脏瓣膜、脑部、脾脏、肾脏和眼睛。侵袭性念珠菌病主要发生于免疫系统功能低下的人和住院患者。念珠菌病是最常见的医院获得性感染之一。 食道念珠菌病是表明艾滋病病毒(HIV)感染已经发展成为 艾滋病 获得性免疫缺陷综合征(AIDS) 人类免疫缺陷病毒 (HIV) 感染是一种病毒性感染,可逐渐破坏某些白细胞,并应用抗逆转录病毒药物治疗。如果不治疗,可引起获得性免疫缺陷综合征 (AIDS)。 HIV 通过与感染者的体液(精液、阴道液、血液、母乳)交换传播,通常通过阴道或肛门性交、共用针头或从母亲到孩子(怀孕、分娩或哺乳期间)传播。... 阅读更多 的疾病(称为艾滋病界定疾病)之一。 念珠菌血症是一种严重的血流感染。在美国,念珠菌是血流感染的常见原因。在下列情况下发生本感染的风险会增大: 大手术 静脉导管或导管的使用——特别是插入颈部、上胸部或腹股沟(中心静脉导管)的大静脉之一的导管或用于提供营养(静脉喂养 静脉营养 静脉营养可用于消化道不能充分吸收营养素(如重度 吸收不良性疾病)的患者。静脉营养也可用于消化道必须暂时禁食的患者,例如 溃疡性结肠炎的某些阶段。 静脉营养可以为患者提供部分营养(部分肠外营养),以作为经口进食的补充。或者静脉营养也可以为患者提供全部的营养(全肠外营养)。 胃肠外营养需要使用较粗的静脉导管。该类导管(称为中央静脉导管)必须插入大静脉,如位于锁骨下的锁骨下静脉。胃肠外营养可在家里或在医院进行。... 阅读更多 )的导管 某些抗生素的使用 如果不及时治疗,念珠菌血症通常是致命的。 念珠菌病的症状 口腔感染(鹅口疮)引起以下症状: 奶油状、白色、疼痛的黏膜斑。 口角裂口(唇炎)。 发红、疼痛、光滑的舌体。 口腔念珠菌病 鹅口疮(假牙下和舌上) 如患口腔念珠菌病,口腔中会形成引起疼痛的白色斑块——例如,假牙下(上图)或舌头上(下图)。 图片由 Jonathan Ship 医学博士惠赠。 鹅口疮(唇) 如患口腔念珠菌病,嘴唇内可能会形成引起疼痛的白色斑块。 © Springer Science+Business Media 鹅口疮(舌) 如患口腔念珠菌病,舌上可能会形成引起疼痛的白色斑块。 © Springer Science+Business Media 食道上斑块会引起吞咽疼痛或吞咽困难。 皮肤感染可出现有烧灼感皮疹。有些类型的 尿布疹 尿布疹(尿布性皮炎) 皮疹是皮肤纹理或颜色的异常改变。 皮疹的已知原因包括刺激、过敏、药物和细菌、真菌或病毒感染。 皮疹包括发红、白色或黄色鳞屑和珍珠状丘疹、肿块或囊肿。 皮疹可瘙痒、刺激或疼痛,或无症状。 温和清洁剂、保湿膏、抗生素或皮质类固醇膏和/或止痒药对需要治疗的皮疹很有帮助。 阅读更多 系由念珠菌感染所致。 感染播散至机体其它部位时症状会加重。可出现发热、心脏杂音、脾大、危险的低血压(休克 休克 休克是一种危及生命的状况,这时流向器官的血液少,导致输氧量减少,从而引起器官损伤,有时甚至造成死亡。血压通常很低。 (也可参见 低血压。) 有若干原因可引起休克:血容量低、心脏泵血功能不全或血管过度增宽(扩张)。 当休克的病因是血容量低或心脏泵血功能不全时,患者可能无精打采、困倦或意识模糊、皮肤湿冷、肤色通常发青或苍白。 当休克是由于血管过度扩张引起时,症状有所不同,皮肤温暖、潮红,脉搏强而有力,而不是脉无力。 阅读更多 )和少尿。视网膜和眼内感染可致盲。若感染进一步加重,可出现多脏衰或死亡。 念珠菌病的诊断 对血液或感染组织样本的检查,有时进行培养 有时做血液检查 许多念珠菌病单凭症状就很典型。 但要确定诊断,必须将皮肤标本于显微镜下进行检查确定真菌。血液或感染组织标本可送实验室培养或检查以确定真菌存在。 医生可能会进行称为 T2Candida® 全套的血液化验,以快速、准确地检测血液中的念珠菌。可能会进行其它 检测微生物中遗传物质的检验 微生物遗传物质检测 感染性疾病由 细菌、 病毒、 真菌和 寄生虫等微生物引起。 医生根据患者的症状、体检结果以及高危因素即可初步确定是否为感染。首先,医生确认患者所患疾病为感染而非其它类型疾病。例如,患者的咳嗽和呼吸困难可能是肺炎(肺感染)的症状,然而,患者可能患有并非由感染引起的哮喘或心力衰竭。对于这种患者,医生可借... 阅读更多 ,包括聚合酶链反应 (PCR)。PCR 测试用于从微生物中产生基因的许多拷贝,从而使微生物更容易鉴定。 如果确诊念珠菌血症,医生可以检查眼睛以确定眼睛是否受到感染。 念珠菌病的治疗 抗真菌药 皮肤、口腔或阴道念珠菌病可局部使用抗真菌药(如克霉唑和制霉菌素)治疗,医生还可能会开具口服抗真菌药氟康唑的处方。 对于食道感染,医生会开具口服抗真菌药物(如氟康唑或伊曲康唑)。如果这些药物无效,或者感染严重,应使用其它抗真菌药物。选择包括阿尼芬净、卡泊芬净、米卡芬净或两性霉素 B 静脉(静脉内)注射、口服或静脉注射伏立康唑、口服艾沙康唑和口服泊沙康唑。 全身传播的念珠菌病通常用静脉注射的阿尼芬净、卡泊芬净或米卡芬净或用静脉注射或口服的氟康唑治疗。 合并某些基础疾病如糖尿病时病情严重、治疗反应差。糖尿病人血糖控制有利于改善治疗效果。

注:

此为家庭版。

医生:

浏览专业版

浏览专业版

版权所有 © 2024 Merck & Co., Inc., Rahway, NJ, USA 及其附属公司。保留所有权利。

皮炎芽生菌病

此页对您是否有帮助?

球孢子菌病

Test your knowledge

Take a Quiz! 

Merck & Co., Inc., Rahway, NJ, USA 及其附属公司。保留所有权利。(美加以外地区称为默沙东)是努力改善全球福祉的健康护理引领者。从开发治疗和预防疾病的新疗法,到满足人们需求,我们致力于改善全世界人们的健康和福祉。 本手册于 1899 年作为一项社区服务首次出版。 在北美之外,这一重要遗留资源仍以 MSD 手册的形式继续提供。详细了解我们对全球医学知识的承诺。

 

关于

免责声明

许可权限

隐私

使用条件

许可授权

联系我们

兽医手册(仅有英文版)

沪ICP备13026779号-7

沪公网安备

31010402001203号

沪ICP备13026779号-7

沪公网安备

31010402001203号

版权所有 © 2024 Merck & Co., Inc., Rahway, NJ, USA 及其附属公司。保留所有权利。

顶部

在该主题中

白色念珠菌 - 维基百科,自由的百科全书

白色念珠菌 - 维基百科,自由的百科全书

跳转到内容

主菜单

主菜单

移至侧栏

隐藏

导航

首页分类索引特色内容新闻动态最近更改随机条目资助维基百科

帮助

帮助维基社群方针与指引互助客栈知识问答字词转换IRC即时聊天联络我们关于维基百科

搜索

搜索

创建账号

登录

个人工具

创建账号 登录

未登录编辑者的页面 了解详情

贡献讨论

目录

移至侧栏

隐藏

序言

1名稱與分類

开关名稱與分類子章节

1.1種系發生

2基因组

开关基因组子章节

2.1研究工具

3型態

开关型態子章节

3.1酵母菌型─菌絲型轉換

3.2高頻率轉換

3.2.1白色型─混濁型轉換

3.2.2其他轉換

4生殖

5致病機制

开关致病機制子章节

5.1生物薄膜

6感染

开关感染子章节

6.1淺表與局部感染

6.1.1口腔感染

6.1.2食道感染

6.1.3陰道感染

6.1.4其他

6.2全身性感染

7註腳

8參考資料

9外部連結

开关目录

白色念珠菌

41种语言

العربيةمصرىБългарскиBanjarBosanskiCatalàCebuanoکوردیČeštinaDanskDeutschΕλληνικάEnglishEsperantoEspañolEestiEuskaraفارسیSuomiFrançaisGaeilgeGalegoעבריתMagyarBahasa IndonesiaItalianoNederlandsNorsk nynorskNorsk bokmålPolskiPortuguêsРусскийSimple EnglishSlovenščinaСрпски / srpskiSvenskaไทยTürkçeУкраїнськаTiếng ViệtWinaray

编辑链接

条目讨论

不转换

不转换简体繁體大陆简体香港繁體澳門繁體大马简体新加坡简体臺灣正體

阅读编辑查看历史

工具

工具

移至侧栏

隐藏

操作

阅读编辑查看历史

常规

链入页面相关更改上传文件特殊页面固定链接页面信息引用本页获取短URL下载二维码维基数据项目

打印/导出

下载为PDF打印页面

在其他项目中

维基共享资源维基物种

维基百科,自由的百科全书

白色念珠菌

生長於沙鮑弱氏瓊脂的白色念珠菌

科学分类

界:

真菌界 Fungi

门:

子囊菌门 Ascomycota

纲:

酵母菌綱 Saccharomycetes

目:

酵母菌目 Saccharomycetales

科:

酵母菌科 Saccharomycetaceae

属:

念珠菌屬 Candida

种:

白色念珠菌 C. albicans

二名法

Candida albicans(C.P.Robin(英语:Charles-Philippe Robin)) Berkhout(英语:Christine Marie Berkhout) (1923)

異名

Candida stellatoidea[1]

Monilia albicans [2][3]

Oidium albicans[4]

白色念珠菌(學名:Candida albicans)是一種能造成伺機性感染的酵母菌[5],常見於人類消化道與泌尿生殖道的菌群,約有四成至六成健康成人的口腔與消化道中都有白色念珠菌[6][7],平時與人體行片利共生,但可在人體免疫缺陷[8]時過度生長[7][9]而造成念珠菌症[7][9],是念珠菌屬最常見的致病菌種,與熱帶念珠菌(英语:Candida tropicalis)、近平滑念珠菌(英语:Candida parapsilosis)、光滑念珠菌(英语:Candida glabrata)和克魯斯念珠菌(英语:Candida krusei)合計造成了95%的念珠菌症感染[9][10][11],其中白色念珠菌便占了66%,但此比例正持續下降中[12]。白色念珠菌造成的感染有口腔、食道與陰道等處的局部粘膜感染,也有嚴重的全身性感染,有研究指出後者的致死率高達40%[13],另有一項統計顯示白色念珠菌造成的院內感染在美国每年造成2,800至11,200人死亡[14]。白色念珠菌也是最常在醫療器材上形成生物薄膜的真菌,生物薄膜中的白色念珠菌抗性比游離成長者還高,可隨著醫療器材入侵血液而造成嚴重感染[15][16]。

白色念珠菌多以雙倍體的型式存在,不同於多數真菌為單倍體,但近年漸有研究發現少數情況下白色念珠菌也可形成單倍體與四倍體[17],其雙倍體的基因組長度為29Mb[18],另外其基因組中,CUG密碼子對應的胺基酸為絲胺酸,與絕大多數生物中對應的白胺酸不同,是相當罕見的遺傳密碼例外情形。白色念珠菌常被當作真菌感染研究的模式生物,容易在實驗室中培養,並可以改變培養基成分的方式控制其生長型態[19]。白色念珠菌屬於雙態性真菌,可以酵母型或菌絲型兩種方式生長[20],除此之外還可在多種不同的形態表型間互相轉換,如白色型-混濁型轉換可以改變菌落的外形與基因表現,進而促進準性生殖[21]。

名稱與分類[编辑]

白色念珠菌的學名Candida albicans為一同義反覆,其中屬名Candida來自拉丁文的candidus,意指白色,種小名albicans來自拉丁文的albicō,意思亦為白色[22]。早在西元前400年,希波克拉底在其著作《論流行病》(Of the Epidemics)中即提到了鵝口瘡,可能是白色念珠菌感染的最早記載[2][23]。

白色念珠菌的同物異名有多達上百個[2][24],最早於1853年由法國生物學家查爾斯-菲力毗·羅賓(英语:Charles-Philippe Robin)發表描述,命名為Oidium albicans,1890年,德國真菌學家弗里德里希·威廉·措普夫(英语:Friedrich Wilhelm Zopf)調整其分類,改其學名為Monilia albicans(其中Monilia來自拉丁文的monile,意指項鍊[22])。1923年,荷蘭真菌學家克里斯汀·瑪麗·別爾克豪特(英语:Christine Marie Berkhout)發表了新屬念珠菌屬,並將白色念珠菌歸入該屬,改為現名Candida albicans[25]。

種系發生[编辑]

已有許多分子種系發生學的研究以不同數量、種類的基因序列分析念珠菌屬中各物種的親緣關係[11][26][27]。念珠菌屬中,與白色念珠菌關係最近的物種為都柏林念珠菌(英语:Candida dubliniensis)(C. dubliniensis),兩者組成的演化支與熱帶念珠菌(英语:Candida tropicalis)(C. tropicalis)互為姊妹群,而三者組成的演化支又與近平滑念珠菌(英语:Candida parapsilosis)(C. parapsilosis)和长孢洛德酵母(英语:Lodderomyces elongisporus)(Lodderomyces elongisporus)組成的演化支互為姊妹群,以上類群均以雙倍體的形式存在,不同於多數真菌為單倍體,顯示其共祖可能發生了單倍體-雙倍體的轉換。這些雙倍體的類群與其他單倍體的類群(季也蒙念珠菌(英语:Candida guilliermondii)、葡萄牙念珠菌(英语:Candida lusitaniae)與汉逊德巴利酵母(英语:Debaryomyces hansenii))共同組成念珠菌演化支(Candida clade),以上類群均將密碼子CUG編碼為絲胺酸,而不像絕大多數生物將其編碼為白胺酸,顯示念珠菌演化支的共祖可能發生了一次CUG密碼子對應的tRNA重组。念珠菌屬並非單系群[28],同屬念珠菌屬的光滑念珠菌(英语:Candida glabrata)不屬於念珠菌演化支,而是與釀酒酵母等酵母菌關係較近,共同組成酵母菌演化支(Saccharomyces clade),與其他念珠菌的親緣關係較遠[11]。

念珠菌演化支

(雙倍體)

白色念珠菌

都柏林念珠菌(英语:Candida dubliniensis)

熱帶念珠菌(英语:Candida tropicalis)

近平滑念珠菌(英语:Candida parapsilosis)

长孢洛德酵母(英语:Lodderomyces elongisporus)

(單倍體)

季也蒙念珠菌(英语:Candida guilliermondii)

汉逊德巴利酵母(英语:Debaryomyces hansenii)

葡萄牙念珠菌(英语:Candida lusitaniae)

酵母菌演化支

釀酒酵母等酵母屬物種、光滑念珠菌(英语:Candida glabrata)等

基因组[编辑]

掃描電子顯微鏡下的白色念珠菌

单倍体的白色念珠菌的基因组的大小約为15Mb(雙倍體約為29Mb)[29],由8條染色体对组成,二倍體中其中一組染色體分別称为chr1A、chr2A、chr3A、chr4A、chr5A、chr6A、chr7A和chrRA,另一組染色體具有相似的名称,但最后一个字為B,如chr1B、chr2B、...和chrRB。整个基因组包含6198个开放阅读框(ORF),截至2019年2月,这些ORF中仍有70%尚未被鉴定[30]。有研究使用四環素轉錄調控系統控制白色念珠菌各個基因的表現,建構了一個GRACE(基因置换和条件表达)資料庫,研究白色念珠菌基因组中各基因對其生長的必要性,結果顯示其中有567個基因是其生長所必須的[31][32]。研究白色念珠菌最常用的菌株是WO-1和SC5314菌株,WO-1菌株可高频率地在白色型(white)與混濁型(opaque)之间互相轉換,而SC5314菌株是用作基因組参考序列的菌株[33]。白色念珠菌两种常用菌株的基因组已經完成全基因組定序[8],其中SC5314菌株完成于2004年[34],是较早完成测序的真菌(英语:List of sequenced fungi genomes)之一。

白色念珠菌核基因組的一大特色是密碼子CUG對應的胺基酸不像其他生物中為白胺酸,而是絲胺酸,同屬念珠菌演化支的其他物種亦有此現象[11],這種遺傳密碼發生例外的情形在真核生物的细胞核基因组中是相當罕見的,在原核生物中也仅出現在起始密碼子[35][36][37]。此現象可能使白色念珠菌長期處在熱休克反應(英语:Heat shock response)的狀態,有助於提升其對逆境的抗性[38]。有研究分析比較白色念珠菌與釀酒酵母基因中的CUG密碼子,發現白色念珠菌的CUG密碼子(編碼絲胺酸)在釀酒酵母的同源序列中大多是對應編碼絲胺酸與其他親水胺基酸的密碼子,而釀酒酵母的CUG密碼子(編碼白胺酸)在白色念珠菌的同源序列中大多是對應編碼白胺酸與其他疏水胺基酸的密碼子,顯示CUG密碼子功能的改變并未对蛋白质的构象造成太大变化[11]。有研究将白色念珠菌识别CUG密碼子的tRNA导入到釀酒酵母中表現,使其轉譯時隨機將部分CUG密碼子辨認為對應絲胺酸,結果啟動了抗逆境反應,造成酵母維持在二倍體的狀態,且抑制了交配[39]。非標準的遺傳密碼使白色念珠菌蛋白質交互作用的研究難以在模式生物釀酒酵母中進行,對此已有研究團隊開發了白色念珠菌的雙雜合系統[40]。

白色念珠菌的基因组有高度杂合性,有着大量的SNP位点,常因染色体長度多型性(重複序列的長度不一)、相互易位、染色體刪除與個別染色體成為三體等因素,造成染色體數量或結構上的變異,諸如此類核型的改变會导致表型的改变,是這種真菌對不同環境适应的機制之一。随着白色念珠菌基因组資訊的成功解碼,關於這些機制的研究正持續進行中[41][42][43]。

研究工具[编辑]

白色念珠菌是用來研究真菌感染的重要模式生物[44],許多研究團隊開發了白色念珠菌的各種資料庫與其分子生物學研究的工具[8]。2004年,多位研究者合作開發了念珠菌基因組資料庫(Candida Genome Database, CGD),該資料庫是由酵母菌基因組資料庫(英语:Saccharomyces Genome Database)修改而來,許多開發者過去也曾參與酵母菌基因組資料庫的構建[45]。念珠菌基因組資料庫最初提供白色念珠菌SC5314菌株的基因組資訊,以全基因組霰彈槍定序法定序[46]。後來也陸續加入白色念珠菌的其他菌株與念珠菌屬的其他物種[45]。

對白色念珠菌進行基因轉殖後,常用的選擇性標記包括CaNAT1(抗諾爾絲菌素(英语:nourseothricin))、MPAr 與IMH3r(抗黴酚酸)等,也有使用營養缺陷型(英语:Auxotrophy)者,例如URA3基因的產物為乳清酸核苷-5'-磷酸脱羧酶,是合成單磷酸尿苷所需的酵素,為白色念珠菌生長所必須,因此URA3營養缺陷型的突變株只有在成功轉殖帶有URA3的質粒後才能在不含尿嘧啶的特殊培養基中生長,URA3因而可作為基因轉殖後的選擇性標記,但許多研究顯示轉殖的URA3從質粒整合進染色體上的位點不同,會使其表現量不同而影響白色念珠菌的致病能力,而可能造成研究中判斷轉殖基因功能的困難[47],為此已有研究團隊開發組胺酸(HIS1)、白胺酸(LEU2)與精胺酸(ARG4)營養缺陷型的菌株與相應質粒,這些基因的轉殖不會影響白色念珠菌的致病能力,以避免使用基因轉殖研究特定基因對致病能力影響時,對研究結果造成干擾[48]。

以質粒進行基因轉殖時,常用於釀酒酵母的質粒在白色念珠菌中多有在染色體外不穩定或基因表達效率低下的問題,有研究團隊開發了適用於白色念珠菌基因轉殖的CIp10(Candida integrating plasmid 10)質粒,以核糖體蛋白RP10[註 1]基因為整合進染色體中的同源序列,並帶有用作選擇性標記的URA3基因[50],因其整合進染色體的位置固定,可避免URA3表現量因整合位點不同而有異,進而影響致病能力[48]。CIp10質粒可以高效率的轉殖進白色念珠菌中,並有多個研究團隊對其進行微調,設計出各種衍生的質粒[51][52]。

型態[编辑]

白色念珠菌的菌落,下方為平滑型(smooth),上方則為皺紋型(wrinkled)

白色念珠菌有許多不同的形態表型,除了作為雙態性真菌,可以在酵母菌型態與菌絲型態間轉換之外,還可以進行通稱為「高頻率轉換」(high-frequency switching)之多種其他表型間的轉換,其中被研究最多的一種轉換則是某些菌株白色型-混濁型間的轉換[53],另外還有許多其他不同的轉換系統,例如SC5314菌株可在七種表型間互相轉換[54][55]。酵母菌型-菌絲型轉換的過程相當快速,且通常整個菌落的所有細胞都會一起轉換;高頻率轉換則可能只在菌落中的部分細胞中發生,且經轉換後的細胞通常仍能進行酵母菌型-菌絲型轉換。這些轉換均為可逆,且常受到二氧化碳濃度、氧氣濃度、培養基種類與溫度等環境因子的影響[56]。

酵母菌型─菌絲型轉換[编辑]

白色念珠菌為雙態性真菌,可以酵母菌或菌絲的型式生長,其中酵母菌型生長時可進行出芽生殖,有時出芽產生的子細胞沒有立即脫離,而形成類似菌絲的絲狀外觀,稱為假菌絲(pseudohypha)[57]。白色念珠菌在實驗室常用的標準培養液生長時通常呈酵母菌型,呈卵圓形,長約6微米[20],不過溫度、二氧化碳濃度、養分與酸鹼值的些許改變便可能使其轉換成菌絲型[58][59],在模擬人體生理環境的培養基中生長時亦呈菌絲型。在適合其生長的環境下,白色念珠菌菌絲萌發時直徑約為2.6微米,成熟菌絲直徑則約為3.4微米[20]。兩種型態在白色念珠菌感染人體時各有功能,酵母菌型較適合在血液中散播,菌絲型則有助於穿透組織、在器官中著生、躲避巨噬細胞的攻擊、以及在醫療器材上形成生物薄膜[57][60][61],這種型態轉換與其致病力密切相關,不過仍有研究指出有無法進行此轉換的菌株亦可進行感染。以小分子藥物抑制白色念珠菌的酵母菌型─菌絲型轉換可能有助於抑制其感染。[62][63]

另外白色念珠菌還在環境條件惡劣時,可以形成對逆境抗性較高的厚垣孢子。厚垣孢子多著生於從菌絲分枝出去之瓶狀突起的端點[64]。

白色念珠菌(酵母菌型,正進行出芽生殖)白色念珠菌(酵母菌型,形成假菌絲)白色念珠菌(菌絲型)

高頻率轉換[编辑]

上方為白色型的白色念珠菌,細胞呈圓形;下方則為混濁型,細胞形狀較長。比例尺為5微米

除了酵母菌型-菌絲型轉換外,白色念珠菌亦可進行高頻率轉換(high-frequency switching),在多種表型間相互轉換,這種轉換常是自然發生,並非由特定環境因子調控,且只發生在菌落中的部分細胞[56]。高頻率轉換最早於1985年由美國生物學家大衛·索爾(英语:David R. Soll)的團隊在SC5314菌株中發現,這種菌株可以在平滑(smooth)[註 2]、星狀(star)、不規則皺紋狀(irregular wrinkle)、環狀(ring)、點狀(stipple)、帽狀(hat)與絨毛狀(fuzzy)等七種表型間進行轉換,不同表型間轉換發生的頻率各異,介於萬分之一至十分之一之間,且紫外線的照射可大幅提升轉換發生的頻率[53][55]。高頻率轉換可能與某些基因表現的改變有關,有研究發現缺乏組蛋白脫乙醯酶SIR2的菌株出現高頻率轉換的機率大幅上升,顯示控制轉換的基因平時可能為SIR2所抑制[65]。在各種表型間轉換的能力有助於白色念珠菌在不同環境下的生長[66]。

白色型─混濁型轉換[编辑]

此調控圖中,白色與金色框線分別代表在白色型中與混濁型中表現增加的基因,藍色調控線條為根據上位效應實驗結果所繪,紅色調控線條表示WOR1對各基因的調控,為根據染色質免疫沉澱實驗結果所繪,而箭頭(表示促進)與橫槓(表示抑制)為根據兩種表型中各基因的表現增減判定。

白色型─混濁型轉換(white-to-opaque switching)是白色念珠菌第二種被發現的高頻率轉換,於1986年由大衛·索爾團隊在WO-1菌株中發現,其中白色型(white)的細胞呈圓形,形成白色、平滑的菌落,混濁型(opaque)的細胞形狀則較長,形成灰色且較為扁平的菌落[54]。此轉換是由WOR1(White to Opaque Regulator 1)蛋白調控,WOR1蛋白則受MTL基因調控,當MTLa與MTLα基因同時存在時,會產生a1-α2複合體,抑制WOR1蛋白的表現,進而抑制白色型─混濁型的轉換[67],又因混濁型是發生準性生殖的主要表型,進行準性生殖的機率比白色型高上百萬倍[68][69],自然環境中有高達95%的白色念珠菌都屬MTLa/α型,因此難有此轉換與交配發生[21][68]。

白色型─混濁型轉換受到許多環境因子調控,其中氧化壓力會促進白色念珠菌轉為混濁型,溫度的提升則會促進其轉為白色型,因此在宿主體內(攝氏37度)生長時白色念珠菌多為白色型,但缺氧[註 3]、二氧化碳與N-乙酰葡糖胺[註 4]濃度高的環境(例如消化道中)可以亦可刺激白色型─混濁型轉換,使白色念珠菌呈混濁型,因此感染宿主的白色念珠菌亦可能發生交配[71]。另外當白色念珠菌生長速率降低時,可能因細胞中得以累積足夠濃度的WOR1蛋白,不因細胞分裂而快速被稀釋,進而促進白色型─混濁型轉換[68]。白色型─混濁型轉換對白色念珠菌的致病力也有關聯。白色型較適於體內的全身性感染,混濁型則較適於皮膚的淺表感染,兩種型態對宿主免疫系統的反應與耐受性也有所不同,可能有助於感染[68]。

除了白色念珠菌外,同為念珠菌屬且亦可感染人體的都柏林念珠菌(英语:Candida dubliniensis)與熱帶念珠菌(英语:Candida tropicalis)也能進行白色型─混濁型轉換[72]。2014年,有研究發現除了白色型與混濁型外,還有一種「灰色型」可與兩型態相互轉換,灰色型的白色念珠菌造成皮膚感染的能力比另外兩種型態還強,發生交配的機率則介於兩者之間,且白色型─灰色型的轉換不需WOR1的參與。三種型態各有不同的基因表現,造成其型態、代謝、致病能力、適應宿主體內的環境與對逆境的抗性皆有所不同[72]。

其他轉換[编辑]

除了白色型─混濁型轉換外,還有許多新的白色念珠菌表型轉換機制陸續被發現,分別存在不同菌株中[56]。從人體陰道中分離的部分菌株可以在菌絲量多與菌絲量少的菌落型態之間互相轉換[73]。SC5314菌株還可進行白色型─消化道型的轉換,消化道型(Gastrointestinally-IndUced Transition, GUT)是存在宿主消化道中的類型,其外型與混濁型相似,細胞形狀較長、形成的菌落較扁,且從白色型轉換的過程亦需WOR1蛋白參與,但以電子顯微鏡觀察時可見其表面沒有混濁型常有的突起,且基因表現亦與混濁型不同,並因維持MTLa/α的基因型而不像混濁型可以進行交配。消化道中可能含有刺激白色型白色念珠菌轉換為消化道型的訊息,此型的白色念珠菌主要在宿主消化道中行片利共生,不對宿主健康造成負面影響[74][75]。

生殖[编辑]

白色念珠菌準性生殖的過程

主条目:準性生殖

白色念珠菌過去被認為只能以有絲分裂進行無性生殖,不能進行減數分裂和產生孢子,沒有以有性生殖繁殖的途徑。現代研究則發現白色念珠菌亦可進行準性生殖[76],但僅限於MTLa或MTLα基因型的個體,MTLa/α者因會抑制白色型-混濁型轉換而難以交配(詳見#白色型─混濁型轉換一節)[21]。混濁型的MTLa與MTLα的個體可分別釋放MFa與MFα費洛蒙,與彼此細胞表面的受體結合而啟動停止細胞週期、改變細胞型態等交配機制[77],並可形成一種稱為性菌膜(sexual biofilm)的生物薄膜,有助於交配進行[76][78]。最終兩細胞可進行核融合(英语:karyogamy)而形成四倍體。四倍體在某些環境下不穩定,有絲分裂時可能發生染色體不分離而產生非整倍體,進而在多次有絲分裂後回復為二倍體[79],其中染色體缺失的過程有協同效應,即丟失數個染色體後,在後續的有絲分裂中繼續丟失其他染色體的機率會提升[80]。有絲分裂時Spo11蛋白可以切割DNA,促使同源染色體間發生同源重組[76][79]。

白色念珠菌因為雙倍體,其準性生殖為二倍體-四倍體-二倍體的過程,而不同於其他真菌的單倍體-二倍體-單倍體。不過白色念珠菌的二倍體亦可能丟失染色體而形成單倍體,單倍體的a與α菌株亦可交配而形成二倍體[76][81]。

致病機制[编辑]

白色念珠菌可以分泌天冬胺酸蛋白酶(secreted aspartic proteinases, Saps)、磷脂酶與脂酶,可分解宿主細胞的胞外基質與細胞膜表面物質[82],有助其黏著、侵入宿主的組織中[83],甚至可能可以用以破壞免疫細胞[82]。2016年,有研究發現白色念珠菌感染宿主粘膜時,從酵母菌型轉為菌絲型後,會分泌一種稱為念珠菌素(英语:Candidalysin)的毒素(英语:Mycotoxin),念珠菌素長31個胺基酸,是由Kex2p蛋白酶切割Ece1p產生的一種多肽,可造成宿主上皮細胞的損傷,並刺激宿主的免疫反應[84]。

酵母菌型-菌絲型轉換對白色念珠菌的致病能力相當重要。吞噬細胞是宿主抗真菌免疫反應中的重要環節,白色念珠菌被巨噬細胞內吞後,並由酵母菌型轉換為菌絲型,最終穿透巨噬細胞而重新回到組織中。在巨噬細胞內部,白色念珠菌會啟動許多基因的表現,改變其代謝與促進型態轉換,其中許多基因為念珠菌所特有,釀酒酵母中不存在同源基因者,很可能與白色念珠菌的致病能力有關[85]。另外菌絲型的白色念珠菌菌絲表面有Hwp1(英语:Hwp1)(Hyphal wall protein 1)蛋白,該蛋白可與宿主上皮細胞表面的轉麩醯胺酶(英语:Transglutaminase)結合,有助白色念珠菌黏附於宿主細胞,進而造成感染[86]。

生物薄膜[编辑]

白色念珠菌形成的生物薄膜

白色念珠菌還可形成結構複雜的生物薄膜,由圓球形的酵母菌、假菌絲與菌絲等各種型態的細胞與胞外基質組成,其基因表現與游離的細胞有很大的不同,其中Efg1、Tec1、Bcr1、Ndt80、Brg1與Rob1等六個轉錄因子對生物薄膜的形成特別重要,另外可能有上千個基因都對生物薄膜的形成有所影響[87][88]。生物薄膜可以多種機制提高白色念珠菌對抗真菌劑的抗性,包括增加外排泵(英语:Efflux (microbiology))的表現以將藥物排出胞外,以胞外基質中的水解酶分解藥物,以及形成抗性很強的休眠細胞(persister cells)。生物薄膜中的酵母菌還可以向外傳播,這些細胞比起正常的酵母菌型細胞有較強的黏附力,形成新的生物薄膜的能力較強,具有較高的致病能力[88]。

白色念珠菌在環境中與人體中皆可形成生物薄膜。在醫療器材上,白色念珠菌是最常被發現的真菌種類[15],導尿管、靜脈導管、心律調節器、人工瓣膜(英语:Artificial heart valve)、人工關節、隱形眼鏡與假牙等醫療器材上均可能有白色念珠菌的生物薄膜生長。生物薄膜中的白色念珠菌較正常游離者對人體免疫系統的抗性較高,可能藉由醫療器材入侵循環系統,造成嚴重的全身性感染,還可能使這些醫療器材無法正常運作[88]。

在人體中,白色念珠菌還可能與許多細菌共同形成生物薄膜,包括口腔中的轉糖鏈球菌(英语:Streptococcus mutans)、格氏鏈球菌(英语:Streptococcus gordonii)、粘性放线菌或細梭菌(英语:Fusobacterium),腸道中的鬆脆桿菌(英语:Bacteroides fragilis)、產氣莢膜梭菌、大腸桿菌、克雷伯氏肺炎菌與糞腸球菌(英语:Enterococcus faecalis),陰道中的乳桿菌屬細菌與囊腫纖維症患者肺中的綠膿桿菌,白色念珠菌與這些細菌可透過實際接觸、分泌訊息分子或改變環境因子來影響彼此的行為,例如綠膿桿菌可分泌一種內酯,抑制生物薄膜中白色念珠菌菌絲的形成,但不影響其整體生長速率[88][89]。還有研究顯示白色念珠菌形成的生物薄膜提供了缺氧的微環境,使鬆脆桿菌與產氣莢膜梭菌等厭氧細菌得以生長,且這些細菌可能可以促進白色念珠菌形成生物薄膜,以利自己在有氧環境下生長。白色念珠菌與細菌共同形成的生物薄膜對人體健康的影響仍不清楚[88]。

感染[编辑]

维基百科中的醫學内容仅供参考,並不能視作專業意見。如需獲取醫療幫助或意見,请咨询专业人士。詳見醫學聲明。

主条目:念珠菌症

白色念珠菌為伺機性感染的致病真菌,平時可生長於人體的皮膚與粘膜組織中而不造成負面影響,但當其過度生長時可能造成念珠菌症的感染。念珠菌症又可依感染部位分為若干類型,包括感染口部的鵝口瘡、感染陰道的念珠菌性外陰陰道炎、感染食道的念珠菌性食道炎(英语:esophageal candidiasis)等,甚至可能造成全身的侵入性感染,侵犯多個器官,並造成念珠菌血症(Candidemia)[90]。念珠菌症在健康成人中比較少見,小於一個月的新生兒、愛滋病患者、癌症患者、糖尿病患者與服用抗生素與皮質類固醇等免疫缺乏者感染的風險較高[91]。白色念珠菌也常造成醫療照顧相關感染[92]。

淺表與局部感染[编辑]

口腔感染[编辑]

鵝口瘡為白色念珠菌感染口腔造成

主条目:鵝口瘡

據統計,世界上有一半的人群口腔中有白色念珠菌[6],甚至有更精密的方法顯示90%的人皆有,但絕大多數不造成任何感染症狀[93],免疫缺乏、高糖份的飲食、配戴假牙、抽菸與口乾皆會造成口腔中白色念珠菌出現的機率增加[94]。若白色念珠菌造成口腔粘膜損傷即為鵝口瘡,通常不伴隨其他症狀且沒有痛感,只有部分患者會有灼痛感[95],其他可能的症狀還包括味覺改變、觸感改變、患部發紅等[91]。醫護人員常透過簡單觀察口腔即作出鵝口瘡的診斷,有時則需取小量檢體進行培養,再於顯微鏡下觀察鑑別。治療鵝口瘡使用的抗真菌劑包括克催瑪汝、咪康唑與耐絲菌素,較嚴重者則可能施以氟康唑[91]。

食道感染[编辑]

念珠菌性食道炎(英语:esophageal candidiasis)為白色念珠菌造成的食道感染,多發生於愛滋病患者、接受化療的癌症患者等免疫缺乏的人群,但有時亦見於免疫力正常者中。念珠菌性食道炎的症狀包括疼痛與吞嚥困難,其診斷多為使用內視鏡,治療多使用氟康唑。感染念珠菌性食道炎的患者通常同時患有口腔感染[91]。

陰道感染[编辑]

白色念珠菌造成的陰道感染示意圖

主条目:念珠菌性外陰陰道炎

白色念珠菌為兩成女性陰道菌叢的正常成分,並不造成感染,若因激素、服用藥物或免疫力下降導致陰道環境改變,而使白色念珠菌大量增殖,便可能導致念珠菌性外陰陰道炎。免疫缺乏、服用避孕藥、服用抗生素與妊娠均會增加感染機會,症狀包括陰道痛癢、性交與排尿時有痛感與異常的分泌物,診斷多需取小量樣本進行培養,再於顯微鏡下觀察鑑別。治療方式於陰道塗抹抗真菌劑或口服氟康唑,嚴重者除繼續口服氟康唑外,還可能於患部施以硼酸、耐絲菌素或氟胞嘧啶[96]。

念珠菌性外陰陰道炎是第二常見的陰道炎,僅次於細菌性陰道病[97]。有高達75%的女性在其一生中得過至少一次念珠菌性外陰陰道炎,接近半數超過兩次[98][99]。約5%的女性在一年中被感染三次以上[99]。

其他[编辑]

除了以上部位之外,白色念珠菌還可感染指甲而造成念珠菌性甲癬(英语:Candidal onychomycosis)[100],感染甲溝造成念珠菌性甲溝炎[101],感染嘴角造成口角炎[102],感染舌頭導致正中菱形舌炎(英语:median rhomboid glossitis)[102],感染男性生殖器導致龜頭炎[103],感染毛囊導致毛囊炎[103],在消化道過度生長而造成腸胃不適等[104]。產道存有白色念珠菌的孕婦若發生早期羊膜囊破裂,可能造成新生兒感染先天性皮肤念珠菌病(英语:Congenital cutaneous candidiasis)[105]。

全身性感染[编辑]

白色念珠菌亦可造成全身性的感染,侵入血液、心臟、眼、骨骼等部位,其中最常見者為念珠菌血症(Candidemia),為常見的醫療照顧相關感染,在美國每年約有46000例[106],患者多為原本就患有其他重大疾病者[107],高風險者包括裝置靜脈導管的患者、住院期間長的患者、加護病房的患者、施用廣效型抗生素的患者、燒燙傷患者、接受全靜脈營養治療者與嗜中性白血球低下者[92]。

全身性念珠菌症通常是以血液樣本培養進行診斷,多數患者最初治療的推薦用藥為棘白菌素(英语:echinocandin),感染的菌株種類與抗藥性確認後則改為氟康唑,部分患者也會以氟康唑為起始用藥。成功將血液中的白色念珠菌清除並消除症狀後,療程還需持續兩週[108]。1999年,一篇發表於《Clinical Infectious Diseases(英语:Clinical Infectious Diseases)》的研究統計美國49間醫院3年間所有在院內發生的血液感染,共記錄了超過一萬起感染,其中念珠菌屬真菌為第四常見的病原,且以白色念珠菌為大宗[57][109]。念珠菌血症的死亡率可高達40%-60%[8][110],每年造成的醫療花費超過十億美元[57]。

註腳[编辑]

^ 與釀酒酵母的RPS10A, RPS10B基因同源[49]。

^ 又分為轉換前的原始平滑(original smooth)與轉換後由其他表型回復的回復平滑(revertant smooth),兩者型態可能有所差異。[55]

^ 可能原因為缺氧狀態下麥角固醇缺乏而刺激白色型─混濁型轉換[70]

^ 宿主腸道菌叢分泌的醣類[71]。

參考資料[编辑]

^

Candida albicans at NCBI Taxonomy browser (页面存档备份,存于互联网档案馆)

^ 2.0 2.1 2.2 Kurtzman, C. P.; Fell, Jack W. The yeasts, a taxonomic study 4. 1998. ISBN 978-0444813121. 

^

Simi, Vincent. Origin of the Names of Species of Candida (PDF). [2018-12-06]. (原始内容存档 (PDF)于2015-06-21). 

^ McClary, Dan Otho. Factors Affecting the Morphology of Candida Albicans. Annals of the Missouri Botanical Garden. May 1952, 39 (2): 137–164. JSTOR 2394509. doi:10.2307/2394509. 

^ Gow, N.A.R. Microbe Profile: Candida albicans: a shape-changing, opportunistic pathogenic fungus of humans. Microbiology. 2017, 163 (8): 1145–1147. PMID 28809155. doi:10.1099/mic.0.000499. 

^ 6.0 6.1 Kerawala C, Newlands C (编). Oral and maxillofacial surgery. Oxford: Oxford University Press. 2010: 446, 447. ISBN 978-0-19-920483-0. 

^ 7.0 7.1 7.2 Erdogan A, Rao SS. Small intestinal fungal overgrowth. Curr Gastroenterol Rep. April 2015, 17 (4): 16. PMID 25786900. doi:10.1007/s11894-015-0436-2. 

^ 8.0 8.1 8.2 8.3 Calderone A, Clancy CJ (编). Candida and Candidiasis 2nd. ASM Press. 2012. ISBN 978-1-55581-539-4. 

^ 9.0 9.1 9.2 Martins N, Ferreira IC, Barros L, Silva S, Henriques M. Candidiasis: predisposing factors, prevention, diagnosis and alternative treatment. Mycopathologia. June 2014, 177 (5–6): 223–240. PMID 24789109. doi:10.1007/s11046-014-9749-1. 

^ Pfaller MA, Diekema DJ. Epidemiology of invasive candidiasis: a persistent public health problem. Clin Microbiol Rev. January 2007, 20 (1): 133–163. PMC 1797637 . PMID 17223626. doi:10.1128/CMR.00029-06. 

^ 11.0 11.1 11.2 11.3 11.4 Geraldine Butler, Matthew D. Rasmussen, Christina A. Cuomo. Evolution of pathogenicity and sexual reproduction in eight Candida genomes. Nature. 2009, 459 (7247): 657-662. doi:10.1038/nature08064. 

^ M. A. Pfaller, D. J. Diekema. Epidemiology of Invasive Candidiasis: a Persistent Public Health Problem. Clinical Microbiology Reviews. 2007, 20 (1): 133-163. doi:10.1128/CMR.00029-06. 

^ Singh, Rachna; Chakrabarti, Arunaloke. Invasive Candidiasis in the Southeast-Asian Region. Prasad, Rajendra (编). Candida albicans: Cellular and Molecular Biology 2. Switzerland: Springer International Publishing AG. 2017: 27. ISBN 978-3-319-50408-7. 

^ Pfaller, M. A.; Diekema, D. J. Epidemiology of Invasive Candidiasis: A Persistent Public Health Problem. Clinical Microbiology Reviews. 2007, 20 (1): 133–63. PMC 1797637 . PMID 17223626. doi:10.1128/CMR.00029-06. 

^ 15.0 15.1 Kumamoto CA. Candida biofilms. Current Opinion in Microbiology. 2002, 5 (6): 608–11. PMID 12457706. doi:10.1016/s1369-5274(02)00371-5. 

^ Donlan RM. Biofilm formation: a clinically relevant microbiological process. Clinical Infectious Diseases. 2001, 33 (8): 1387–92. PMID 11565080. doi:10.1086/322972. 

^ Hickman MA, Zeng G, Forche A, Hirasawa MP, Abbey D, Harrison BD, Wang YM, Su CH, Bennett RJ, Wang Y, Berman J. The 'obligate diploid' Candida albicans forms mating-competent haploids. Nature. 2016, 494 (7435): 55–59. Bibcode:2013Natur.494...55H. PMC 3583542 . PMID 23364695. doi:10.1038/nature11865. 

^

Candida albicans SC5314 Genome Snapshot/Overview. www.candidagenome.org. [2018-03-27]. (原始内容存档于2018-11-16). 

^ Development of Candida albicans Hyphae in Different Growth Media – Variations in Growth Rates, Cell Dimensions and Timing of Morphogenetic Events (PDF) (132). 1986. 

^ 20.0 20.1 20.2 Frans M. Klis, Chris G. de Koster, Stanley Brul. Cell Wall-Related Bionumbers and Bioestimates of Saccharomyces cerevisiae and Candida albicans. Eukaryot Cell. 2014, 13 (1): 2–9. doi:10.1128/EC.00250-13. 

^ 21.0 21.1 21.2 Christina M. Hull, Ryan M. Raisner, Alexander D. Johnson. Evidence for Mating of the "Asexual" Yeast Candida albicans in a Mammalian Host. Science. 2000, 289 (5477): 307-310. doi:10.1126/science.289.5477.307. 

^ 22.0 22.1 William S. Haubrich. Medical Meanings: A Glossary of Word Origins. ACP Press. 2003: 39 [2019-02-22]. ISBN 1930513496. (原始内容存档于2021-11-02). 

^

McCool, Logan. The Discovery and Naming of Candida albicans (PDF). antimicrobe.org. [2019-02-22]. (原始内容存档 (PDF)于2018-05-05). 

^

Candida albicans. MycoBank. [2019-02-22]. (原始内容存档于2019-02-22). 

^

Simi, Vincent. Origin of the Names of Species of Candida (PDF). antimicrobe.org. [2018-12-06]. (原始内容存档 (PDF)于2015-06-21). 

^ Sung-Oui Suh, Meredith Blackwell, Cletus P. Kurtzman, Marc-André Lachance. Phylogenetics of Saccharomycetales, the ascomycete yeasts. Mycologia. 2006, 98 (6): 1006-1017. doi:10.1080/15572536.2006.11832629. 

^ Stephanie Diezmann, Cymon J. Cox, Gabriele Schönian, Rytas J. Vilgalys, Thomas G. Mitchell. Phylogeny and Evolution of Medical Species of Candida and Related Taxa: a Multigenic Analysis. Journal of Clinical Microbiology. 2004, 42 (12): 5624–5635. doi:10.1128/JCM.42.12.5624-5635.2004. 

^ Stefanie Mühlhausen, Martin Kollmar. Molecular Phylogeny of Sequenced Saccharomycetes Reveals Polyphyly of the Alternative Yeast Codon Usage. Genome Biol Evol. 2014, 6 (12): 3222–3237. doi:10.1093/gbe/evu152. 

^ Ted Jones, Nancy A. Federspiel, Hiroji Chibana, Jan Dungan, Sue Kalman, B. B. Magee, George Newport,Yvonne R. Thorstenson, Nina Agabian, P. T. Magee, Ronald W. Davis, Stewart Scherer. The diploid genome sequence of Candida albicans. PNAS. 2004, 101 (19): 7329–7334. doi:10.1073/pnas.0401648101. 

^

Skrzypek MS, Binkley J, Binkley G, Miyasato SR, Simison M, and Sherlock G. Candida albicans SC5314 Genome Snapshot/Overview. Candida Genome Database. 2019-02-19 [2018-12-06]. (原始内容存档于2018-11-16). 

^ Roemer T, Jiang B, Davison J, Ketela T, Veillette K, Breton A, Tandia F, Linteau A, Sillaots S, Marta C, Martel N, Veronneau S, Lemieux S, Kauffman S, Becker J, Storms R, Boone C, Bussey H. Large-scale essential gene identification in Candida albicans and applications to antifungal drug discovery. Mol Microbiol. 2003, 38 (19): 167–81. PMID 14507372. doi:10.1046/j.1365-2958.2003.03697.x. 

^

Candida Community News. www.candidagenome.org. [2018-03-27]. (原始内容存档于2018-10-27). 

^

Candida Strains. www.candidagenome.org. [2018-03-27]. (原始内容存档于2018-10-27). 

^ Jones T, Federspiel NA, Chibana H, Dungan J, Kalman S, Magee BB, Newport G, Thorstenson YR, Agabian N, Magee PT, Davis RW, Scherer S. The diploid genome sequence of Candida albicans. Proc Natl Acad Sci U S A. 2004, 101 (19): 7329–7334. PMC 409918 . PMID 15123810. doi:10.1073/pnas.0401648101. 

^ Ohama, T; Suzuki, Tsutomu; Mori, Miki; Osawa, Syozo; Ueda, Takuya; Watanabe, Kimitsuna; Nakase, Takashi. Non-universal decoding of the leucine codon CUG in several Candida species. Nucleic Acids Research. August 1993, 21 (17): 1039–4045. PMC 309997 . PMID 8371978. doi:10.1093/nar/21.17.4039. 

^ Arnaud, MB; Costanzo, MC; Inglis, DO; Skrzypek, MS; Binkley, J; Shah, P; Binkley, G; Miyasato, SR; Sherlock, G. CGD Help: Non-standard Genetic Codes. Candida Genome Database. [2011-10-30]. (原始内容存档于2018-11-01). 

^

Andrzej (Anjay) Elzanowski and Jim Ostell. The Alternative Yeast Nuclear Code. The Genetic Codes. Bethesda, Maryland, U.S.A.: National Center for Biotechnology Information (NCBI). 2010-07-07 [2011-10-30]. (原始内容存档于2011-05-13). 

^ Santos, MA; Cheesman, C; Costa, V; Moradas-Ferreira, P; Tuite, MF. Selective advantages created by codon ambiguity allowed for the evolution of an alternative genetic code in Candida spp.. Molecular Microbiology. February 1999, 31 (3): 937–947. PMID 10048036. doi:10.1046/j.1365-2958.1999.01233.x. 

^ Raquel M Silva, João A Paredes, Gabriela R Moura, Bruno Manadas, Tatiana Lima‐Costa, Rita Rocha, Isabel Miranda, Ana C Gomes, Marian JG Koerkamp, Michel Perrot, Frank CP Holstege, Hélian Boucherie, Manuel A S Santos. Critical roles for a genetic code alteration in the evolution of the genus Candida. EMBO J. October 2007, 26 (21): 4555–65. PMC 2063480 . PMID 17932489. doi:10.1038/sj.emboj.7601876. 

^ Stynen, B; Van Dijck, P; Tournu, H. A CUG codon adapted two-hybrid system for the pathogenic fungus Candida albicans. Nucleic Acids Res. October 2010, 38 (19): e184. PMC 2965261 . PMID 20719741. doi:10.1093/nar/gkq725. 

^ Rustchenko-Bulgac, E. P. Variations of Candida albicans Electrophoretic Karyotypes. J. Bacteriol. 1991, 173 (20): 6586–6596. PMC 208996 . PMID 1917880. doi:10.1128/jb.173.20.6586-6596.1991. 

^ Holmes, Ann R.; Tsao, Sarah; Ong, Soo-Wee; Lamping, Erwin; Niimi, Kyoko; Monk, Brian C.; Niimi, Masakazu; Kaneko, Aki; Holland, Barbara R.; Schmid, Jan; Cannon, Richard D. Heterozygosity and functional allelic variation in the Candida albicans efflux pump genes CDR1 and CDR2. Molecular Microbiology. 2006, 62 (1): 170–86. PMID 16942600. doi:10.1111/j.1365-2958.2006.05357.x. 

^ Jones, T.; Federspiel, N. A.; Chibana, H.; Dungan, J.; Kalman, S.; Magee, B. B.; Newport, G.; Thorstenson, Y. R.; Agabian, N.; Magee, P. T.; Davis, R. W.; Scherer, S. The diploid genome sequence of Candida albicans. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2004, 101 (19): 7329–7334. Bibcode:2004PNAS..101.7329J. PMC 409918 . PMID 15123810. doi:10.1073/pnas.0401648101. 

^ Maria C. Costanzo, Martha B. Arnaud, Marek S. Skrzypek, Gail Binkley, Christopher Lane, Stuart R. Miyasato, Gavin Sherlock. The Candida Genome Database: Facilitating research on Candida albicans molecular biology. FEMS Yeast Research. 2006, 6 (5): 671-684. doi:10.1111/j.1567-1364.2006.00074.x. 

^ 45.0 45.1 Marek S. Skrzypek, Jonathan Binkley, Gavin Sherlock. Using the Candida Genome Database. Methods Mol Biol: 31–47. doi:10.1007/978-1-4939-7737-6_3. 

^ van het Hoog, Marco; Rast, Timothy J; Martchenko, Mikhail; Grindle, Suzanne; Dignard, Daniel; Hogues, Hervé; Cuomo, Christine; Berriman, Matthew; Scherer, Stewart; Magee, BB; Whiteway, Malcolm; Chibana, Hiroji; Nantel, André; Magee, PT. Assembly of the Candida albicans genome into sixteen supercontigs aligned on the eight chromosomes. Genome Biology. 2007, 8 (4): R52. PMC 1896002 . PMID 17419877. doi:10.1186/gb-2007-8-4-r52. 

^ Cheng, S; Nguyen, M. H; Zhang, Z; Jia, H; Handfield, M; Clancy, C. J. Evaluation of the Roles of Four Candida albicans Genes in Virulence by Using Gene Disruption Strains That Express URA3 from the Native Locus. Infection and Immunity. 2003, 71 (10): 6101–3. PMC 201070 . PMID 14500538. doi:10.1128/IAI.71.10.6101-6103.2003. 

^ 48.0 48.1 Noble, S. M; Johnson, A. D. Strains and strategies for large-scale gene deletion studies of the diploid human fungal pathogen Candida albicans. Eukaryotic Cell. 2005, 4 (2): 298–309. PMC 549318 . PMID 15701792. doi:10.1128/EC.4.2.298-309.2005. 

^ Swoboda RK, Broadbent ID, Bertram G, Budge S, Gooday GW, Gow NA, Brown AJ. Structure and regulation of a Candida albicans RP10 gene which encodes an immunogenic protein homologous to Saccharomyces cerevisiae ribosomal protein 10. J Bacteriol. 1995, 177 (5): 1239-1246. doi:10.1128/jb.177.5.1239-1246.1995. 

^ Abdul Munir Abdul Murad, Philip R. Lee, Ian D. Broadbent, Caroline J. Barelle, Alistair J. P. Brown. CIp10, an efficient and convenient integrating vector for Candida albicans. Yeast. 2000, 14 (4): 325-327. doi:10.1002/1097-0061(20000315)16:4<325::AID-YEA538>3.0.CO;2-%23. 

^ Chauvel, Murielle; Nesseir, Audrey; Cabral, Vitor; Znaidi, Sadri; Goyard, Sophie; Bachellier-Bassi, Sophie; Firon, Arnaud; Legrand, Mélanie; Diogo, Dorothée; Naulleau, Claire; Rossignol, Tristan; d'Enfert, Christophe. A Versatile Overexpression Strategy in the Pathogenic Yeast Candida albicans: Identification of Regulators of Morphogenesis and Fitness. PLOS One. 2012, 7 (9): e45912. Bibcode:2012PLoSO...745912C. PMC 3457969 . PMID 23049891. doi:10.1371/journal.pone.0045912. 

^ Walker, Louise A.; MacCallum, Donna M.; Bertram, Gwyneth; Gow, Neil A.R.; Odds, Frank C.; Brown, Alistair J.P. Genome-wide analysis of Candida albicans gene expression patterns during infection of the mammalian kidney. Fungal Genetics and Biology. 2009, 46 (2): 210–9. PMC 2698078 . PMID 19032986. doi:10.1016/j.fgb.2008.10.012. 

^ 53.0 53.1 Neena Jain, Fahmi Hasan, Bettina C. Fries. Phenotypic Switching in Fungi. Curr Fungal Infect Rep. 2008, 2 (3). doi:10.1007/s12281-008-0026-y. 

^ 54.0 54.1 Slutsky, B; Staebell, M; Anderson, J; Risen, L; Pfaller, M; Soll, DR. "White-opaque transition": a second high-frequency switching system in Candida albicans.. J. Bacteriol. 1987, 1 (169): 189–197. PMC 211752 . PMID 3539914. doi:10.1128/jb.169.1.189-197.1987. 

^ 55.0 55.1 55.2 Slutsky, B; Buffo, J; Soll, D. R. High-frequency switching of colony morphology in Candida albicans. Science. 1985, 230 (4726): 666–9. Bibcode:1985Sci...230..666S. PMID 3901258. doi:10.1126/science.3901258. 

^ 56.0 56.1 56.2 Soll, DR. High-frequency switching in Candida albicans. Clin Microbiol Rev. 1992, 5 (2): 183–203. PMC 358234 . PMID 1576587. doi:10.1128/cmr.5.2.183. 

^ 57.0 57.1 57.2 57.3 Sudbery, P; Gow, N; Berman, J. The distinct morphogenic states of Candida albicans. Trends in Microbiology. 2004, 12 (7): 317–24. PMID 15223059. doi:10.1016/j.tim.2004.05.008. 

^ Si H, Hernday AD, Hirasawa MP, Johnson AD, Bennett RJ. Candida albicans White and Opaque Cells Undergo Distinct Programs of Filamentous Growth. PLoS Pathog. 2013, 9 (3): e1003210. PMC 3591317 . PMID 23505370. doi:10.1371/journal.ppat.1003210. 

^

Peter E. Sudbery. Growth of Candida albicans hyphae (PDF). Nature Reviews Microbiology. 2011, 9 (10): 737–748. PMID 21844880. doi:10.1038/nrmicro2636. 。參見figure 2 (页面存档备份,存于互联网档案馆)

^ Jiménez-López, Claudia; Lorenz, Michael C. Fungal Immune Evasion in a Model Host–Pathogen Interaction: Candida albicans Versus Macrophages. PLoS Pathogens. 2013, 9 (11): e1003741. PMC 3836912 . PMID 24278014. doi:10.1371/journal.ppat.1003741. 

^ Berman J, Sudbery PE. Candida Albicans: a molecular revolution built on lessons from budding yeast. Nature Reviews Genetics. 2002, 3 (12): 918–930. PMID 12459722. doi:10.1038/nrg948. 

^ Shareck, J.; Belhumeur, P. Modulation of Morphogenesis in Candida albicans by Various Small Molecules. Eukaryotic Cell. 2011, 10 (8): 1004–12. PMC 3165445 . PMID 21642508. doi:10.1128/EC.05030-11. 

^ Suzanne M Noble, Sarah French, Lisa A Kohn, Victoria Chen, Alexander D Johnson. Systematic screens of a Candida albicanshomozygous deletion library decouple morphogenetic switching and pathogenicity. Nature Genetics. 2010, 42 (7): 590–598. doi:10.1038/ng.605. 

^ Peter Staib, Joachim Morschhäuser. Chlamydospore formation in Candida albicans and Candida dubliniensis– an enigmatic developmental programme. Mycoses. 2006, 50 (1): 1-12. doi:10.1111/j.1439-0507.2006.01308.x. 

^ José Pérez‐Martín, José Antonio Uría, Alexander D. Johnson. Phenotypic switching in Candida albicans is controlled by a SIR2 gene. The EMBO Journal. 1999, 18 (9): 2580-2592. doi:10.1093/emboj/18.9.2580. 

^ Tao L, Du H, Guan G, Dai Y, Nobile C, Liang W, Cao C, Zhang Q, Zhong J, Huang G. Discovery of a "White-Gray-Opaque" Tristable Phenotypic Switching System in Candida albicans: Roles of Non-genetic Diversity in Host Adaptation. PLoS Biol. 2014, 12 (4): e1001830. PMC 3972085 . PMID 24691005. doi:10.1371/journal.pbio.1001830. 

^ Morschhäuser J. Regulation of white-opaque switching in Candida albicans. Med Microbiol Immunol.. 2010, 199 (3): 165–172. PMID 20390300. doi:10.1007/s00430-010-0147-0. 

^ 68.0 68.1 68.2 68.3 Lohse MB, Johnson AD. White-opaque switching in Candida albicans. Curr Opin Microbiol. 2009, 12 (6): 650–654. PMC 2812476 . PMID 19853498. doi:10.1016/j.mib.2009.09.010. 

^ Hnisz D, Tscherner M, Kuchler K. Opaque-white phenotype transition: a programmed morphological transition in Candida albicans. Methods Mol. Biol. Methods in Molecular Biology. 2011, 734 (2): 303–315. ISBN 978-1-61779-085-0. PMID 21468996. doi:10.1007/978-1-61779-086-7_15. 

^ Bernardo Ramírez-Zavala, Oliver Reuß, Yang-Nim Park, Knut Ohlsen,Joachim Morschhäuser. Environmental Induction of White–Opaque Switching in Candida albicans. PLoS Pathogens. 2008, 4 (6): e1000089. doi:10.1371/journal.ppat.1000089. 

^ 71.0 71.1 Guanghua Huang, Song Yi, Nidhi Sahni, Karla J. Daniels, Thyagarajan Srikantha, David R. Soll. N-Acetylglucosamine Induces White to Opaque Switching, a Mating Prerequisite in Candida albicans. PLoS Pathogens. 2010, 6 (3): e1000806. doi:10.1371/journal.ppat.1000806. 

^ 72.0 72.1 Li Tao, Han Du, Guobo Guan, Yu Dai, Clarissa J. Nobile, Weihong Liang, Chengjun Cao, Qiuyu Zhang, Jin Zhong, Guanghua Huang. Discovery of a “White-Gray-Opaque” Tristable Phenotypic Switching System in Candida albicans: Roles of Non-genetic Diversity in Host Adaptation. PLoS Biology. 2014, 12 (4): e1001830. doi:10.1371/journal.pbio.1001830. 

^

D R Soll, C J Langtimm, J McDowell, J Hicks, R Galask. High-frequency switching in Candida strains isolated from vaginitis patients. Journal of Clinical Microbiology. 1987, 25 (9): 1611-1622 [2019-03-01]. (原始内容存档于2019-03-01). 

^ Pande, Kalyan; Chen, Changbin; Noble, Suzanne M. Passage through the mammalian gut triggers a phenotypic switch that promotes Candida albicans commensalism. Nature Genetics. 2013, 45 (9): 1088–91. PMC 3758371 . PMID 23892606. doi:10.1038/ng.2710. 

^ Noble, Suzanne M.; Gianetti, Brittany A.; Witchley, Jessica N. Candida albicans cell-type switching and functional plasticity in the mammalian host. Nature Reviews Microbiology. 2016, 15 (2): 96–108. PMC 5957277 . PMID 27867199. doi:10.1038/nrmicro.2016.157. 

^ 76.0 76.1 76.2 76.3 Richard J Bennett. The parasexual lifestyle of Candida albicans. Current Opinion in Microbiology. 2015, 28: 10-17. doi:10.1016/j.mib.2015.06.017. 

^ Kevin Alby, Richard J. Bennett. Sexual reproduction in the Candida clade: cryptic cycles, diverse mechanisms, and alternative functions. Cell Mol Life Sci.. 2010, 67 (19): 3275–3285. doi:10.1007/s00018-010-0421-8. 

^ Yang-Nim Park, Karla J. Daniels, Claude Pujol, Thyagarajan Srikantha, David R. Soll. Candida albicans Forms a Specialized “Sexual” as Well as “Pathogenic” Biofilm. Eukaryotic Cell. 2013, 12 (8): 1120-1131. doi:10.1128/EC.00112-13. 

^ 79.0 79.1 Anja Forche, Kevin Alby, Dana Schaefer, Alexander D Johnson, Judith Berman, Richard J Bennett. The Parasexual Cycle in Candida albicans Provides an Alternative Pathway to Meiosis for the Formation of Recombinant Strains. PLoS Biology. 2008, 6 (5): e110. doi:10.1371/journal.pbio.0060110. 

^ Richard J. Bennett, Alexander D. Johnson. Completion of a parasexual cycle in Candida albicans by induced chromosome loss in tetraploid strains. The EMBO Journal: 2505-2515. doi:10.1093/emboj/cdg235. 

^ Meleah A. Hickman, Guisheng Zeng, Anja Forche, Matthew P. Hirakawa, Darren Abbey, Benjamin D. Harrison, Yan-Ming Wang, Ching-hua Su, Richard J. Bennett, Yue Wang, Judith Berman. The ‘obligate diploid’ Candida albicansforms mating-competent haploids. Nature. 2013, 494 (7435): 55-59. doi:10.1038/nature11865. 

^ 82.0 82.1 Schaller M, Borelli C, Korting HC, Hube B. Hydrolytic enzymes as virulence factors of Candida albicans. Mycoses. 2005, 48 (6): 365-377. doi:10.1111/j.1439-0507.2005.01165.x. 

^ Monika S, Małgorzata B, Zbigniew O. Contribution of Aspartic Proteases in Candida Virulence. Protease Inhibitors against Candida Infections. Curr Protein Pept Sci.. 2017, 18 (10): 1050-1062. doi:10.2174/1389203717666160809155749. 

^ Duncan Wilson; Julian R. Naglik; Bernhard Hube. The Missing Link between Candida albicans Hyphal Morphogenesis and Host Cell Damage. PLoS Pathog. 2016, 12 (10): e1005867. PMC 5072684 . PMID 27764260. doi:10.1371/journal.ppat.1005867. 

^ Lorenz, M. C; Bender, J. A; Fink, G. R. Transcriptional Response of Candida albicans upon Internalization by Macrophages. Eukaryotic Cell. 2004, 3 (5): 1076–87. PMC 522606 . PMID 15470236. doi:10.1128/EC.3.5.1076-1087.2004. 

^ Staab, J. F. Adhesive and Mammalian Transglutaminase Substrate Properties of Candida albicans Hwp1. Science. 1999, 283 (5407): 1535–1538. Bibcode:1999Sci...283.1535S. ISSN 0036-8075. doi:10.1126/science.283.5407.1535. 

^ Clarissa J. Nobile, Emily P.Fox, Jeniel E.Nett, Trevor R. Sorrells, Quinn M. Mitrovich, Aaron D. Hernday, Brian B. Tuch, David R.Andes, Alexander D. Johnson. A Recently Evolved Transcriptional Network Controls Biofilm Development in Candida albicans. Cell. 2012, 148 (1-2): 126-138. doi:10.1016/j.cell.2011.10.048. 

^ 88.0 88.1 88.2 88.3 88.4 Clarissa J. Nobile and Alexander D. Johnson. Candida albicans Biofilms and Human Disease. Annu Rev Microbiol.. 2015, 69: 71-92. doi:10.1146/annurev-micro-091014-104330. 

^ Deborah A. Hogan, Åshild Vik, Roberto Kolter. A Pseudomonas aeruginosa quorum‐sensing molecule influences Candida albicans morphology. Molecular Microbiology. 2004, 54 (5): 1212=1223. doi:10.1111/j.1365-2958.2004.04349.x. 

^

Invasive Candidiasis. Centers for Disease Control and Prevention. 2015-06-12 [2019-03-01]. (原始内容存档于2019-01-09). 

^ 91.0 91.1 91.2 91.3

Candida infections of the mouth, throat, and esophagus. Centers for Disease Control and Prevention. 2017-08-04 [2019-03-01]. (原始内容存档于2019-01-09). 

^ 92.0 92.1 Emily R. M. Sydnor, Trish M. Perl. Hospital Epidemiology and Infection Control in Acute-Care Settings. Clinical Microbioly Review. 2011, 24 (1): 141–173. doi:10.1128/CMR.00027-10. 

^ Greenberg MS, Glick M, Ship JA. Burket's oral medicine 11th. Hamilton, Ont.: BC Decker. 2008: 79–84. ISBN 9781550093452. 

^ Scully C. Oral and maxillofacial medicine : the basis of diagnosis and treatment 3rd. Edinburgh: Churchill Livingstone. 2013: 254–267. ISBN 9780702049484. 

^

Rhodus, NL. Treatment of oral candidiasis (PDF). Northwest Dentistry. Mar–Apr 2012, 91 (2): 32–3 [2019-03-01]. PMID 22662470. (原始内容 (PDF)存档于2013-11-02). 

^

Vaginal Candidiasis. Centers for Disease Control and Prevention. 2017-08-04 [2019-03-01]. (原始内容存档于2014-12-29). 

^ Ilkit, M; Guzel, AB. The epidemiology, pathogenesis, and diagnosis of vulvovaginal candidosis: a mycological perspective. Critical Reviews in Microbiology. August 2011, 37 (3): 250–61. PMID 21599498. doi:10.3109/1040841X.2011.576332. 

^ Vaginal yeast infections fact sheet. womenshealth.gov. 2014-12-23 [2015-03-05]. (原始内容存档于2015-03-04). 

^ 99.0 99.1 Egan ME, Lipsky MS. Diagnosis of vaginitis. Am Fam Physician. September 2000, 62 (5): 1095–104. PMID 10997533. (原始内容存档于2011-06-06). 

^ James, William D.; Berger, Timothy G. Andrews' Diseases of the Skin: clinical Dermatology. Saunders Elsevier. 2006: 305. ISBN 0-7216-2921-0. 

^ James, William D.; Berger, Timothy G. Andrews' Diseases of the Skin: clinical Dermatology. Saunders Elsevier. 2006: 310. ISBN 978-0-7216-2921-6. 

^ 102.0 102.1 Patil S, Rao RS, Majumdar B, Anil S. Clinical Appearance of Oral Candida Infection and Therapeutic Strategies. Front. Microbiol. December 2015, 6: 1391. PMC 4681845 . PMID 26733948. doi:10.3389/fmicb.2015.01391. 

^ 103.0 103.1 Hidalgo JA, Vazquez JA. Candidiasis: Clinical Presentation. Medscape. WebMD. 2015-08-18 [2016-06-22]. (原始内容存档于2016-06-01). 

^ Wang ZK, Yang YS, Stefka AT, Sun G, Peng LH. Review article: fungal microbiota and digestive diseases. Aliment. Pharmacol. Ther. April 2014, 39 (8): 751–766. PMID 24612332. doi:10.1111/apt.12665. 

^ James, William D.; Berger, Timothy G. Andrews' Diseases of the Skin: clinical Dermatology. Saunders Elsevier. 2006: 309. ISBN 0-7216-2921-0. 

^

Invasive Candidiasis Statistics. Centers for Disease Control and Prevention. 2017-01-25 [2019-03-01]. (原始内容存档于2014-12-29). 

^

Symptoms of Invasive Candidiasis. Centers for Disease Control and Prevention. 2015-06-12 [2019-03-01]. (原始内容存档于2014-12-29). 

^

Information for Healthcare Professionals about Invasive Candidiasis. Centers for Disease Control and Prevention. 2015-06-12 [2019-03-01]. (原始内容存档于2019-01-09). 

^ Michael B. Edmond, Sarah E. Wallace, Donna K. McClish, Michael A. Pfaller, Ronald N. Jones, and Richard P. Wenzel. Nosocomial Bloodstream Infections in United States Hospitals: A Three-Year Analysis. Clinical Infectious Diseases. 1999, 29 (2): 239–244. doi:10.1086/520192. 

^ Weinberger, M. Characteristics of candidaemia with Candida-albicans compared with non-albicans Candida species and predictors of mortality. J Hosp Infect. 2016-04-16, 61 (2): 146–54. PMID 16009456. doi:10.1016/j.jhin.2005.02.009. 

外部連結[编辑]

维基共享资源中相关的多媒体资源:白色念珠菌

Candida Genome Database (页面存档备份,存于互联网档案馆)

U.S. National Institutes of Health on the Candida albicans genome

Mycobank上白色念珠菌的頁面 (页面存档备份,存于互联网档案馆)

研究念珠菌的實驗室列表 (页面存档备份,存于互联网档案馆)

Protein-protein interactions for Candida albicans (页面存档备份,存于互联网档案馆)

查论编传染病 · 真菌病及中孢子虫纲(英语:Mesomycetozoea) (B35–B49, 110–118)浅表性及皮肤性真菌病(皮肤真菌病(英语:Dermatomycosis)):癣(皮肤)毛孢子菌病(毛外/毛内癣菌,头发)子囊菌门皮癣菌(癣)部位鬚(英语:Tinea barbae)/头 (秃疮癣) · 体 (环癣, 园癣) · 股 · 手 · 足 · 甲 (白色 · 甲下(远端/近端))斗士体癣 · 叠瓦癣 · 难辨认癣 ·病原絮状表皮癣菌 · 犬小孢癣菌 · 羊毛状微小孢子菌 · 毛癬菌( 下颔毛癬菌 · 断发毛癣菌 · 许兰毛癣菌 · 红色毛癣菌)其它威尼克外瓶黴 (黑癣) · 何德毛结节菌/病担子菌门马拉色菌属 (花斑癬, 糠秕孢子菌毛囊炎(英语:Pityrosporum folliculitis)) · 丝孢酵母属 (白色毛结节菌病(英语:White piedra))皮下、全身性及伺机性真菌病子囊菌门雙態性(酵母+霉菌)爪甲团囊菌目粗球孢子菌/普赛德斯球抱子菌 (弥漫性/皮肤/肺球孢子菌病) · 荚膜组织胞浆菌 (皮肤/肺/播散型组织胞浆菌病) · 杜氏组织胞浆菌/病 · 洛博芽生菌/病 · 巴西副球孢子菌/病其它皮炎芽生菌 (北美/南美芽生菌病) · 申克氏孢子絲菌/孢子丝菌病) · 马尔尼菲青霉菌/病)酵母样白色念珠菌(口腔/食道/外阴/皮肤/抗生素抗生素/甲/甲沟/先天性/肛周/全身性念珠菌症, 念珠菌疹/间擦疹/尿布疹, 芽生菌性指间糜烂) · 光滑念珠菌 · 热带念珠菌 · 葡萄牙假丝酵母 · 卡氏肺孢子虫病/肺炎霉菌样曲霉菌 (曲霉菌病/肿, 过敏性支气管肺/原发性皮肤曲霉病) · 甄氏外瓶霉/病 · 裴氏/紧密/疣状着色霉 (着色芽生菌病) · 白地霉( (地霉病) · 波氏足肿菌 (波氏阿利什利霉病)担子菌门新型隐球菌/隱球菌病, 丝孢酵母属 (丝孢酵母菌病)接合菌门/病毛霉菌目/病米根霉 · 印度毛霉 · 伞枝犁头霉 · 总状共头霉蟲黴目/病)蛙粪霉/病 · 冠状/异孢耳霉 (耳霉病)微孢子蟲/病比氏肠胞微孢子虫/肠脑炎微孢子虫中孢子虫纲(英语:Mesomycetozoea)西伯鼻孢子菌(英语:Rhinosporidium seeberi) ( 鼻孢子菌病(英语:Rhinosporidiosis))未分类链格孢病 · 真菌毛囊​​炎(英语:Fungal folliculitis) · 镰刀菌属/病 · 婴儿臀部肉芽肿(英语:Granuloma gluteale infantum) · 透明丝孢霉病 · 真菌性耳炎(英语:Otomycosis) · 暗色丝孢霉病

医学导航 · 真菌病

真菌 · 分類

疾病

藥物(抗真菌藥)

分類單元識別碼Candida albicans

维基数据: Q310443

維基物種: Candida albicans

AusFungi: 60022019

臺灣物種名錄: 143709

EoL: 1013921

EPPO: CANDAL

真菌索引: 256187

GBIF: 2599597

iNaturalist: 895618

IRMNG: 10482576

ITIS: 194598

MycoBank: 256187

NBN: BMSSYS0000003266

NCBI: 5476

NZOR: b68ca8b8-874a-49f7-9ff7-a62b630b0c79

Oidium albicans

维基数据: Q59452981

AusFungi: 60022020

真菌索引: 247312

GBIF: 2599599

IRMNG: 11304730

MycoBank: 247312

NZOR: b7ae58a4-9f40-4b87-aea9-01bcd7b10b59

真菌主题分子與細胞生物學主题遺傳學主题醫學主题

取自“https://zh.wikipedia.org/w/index.php?title=白色念珠菌&oldid=80846271”

分类:​念珠菌屬肠道菌群真菌性疾病酵母隐藏分类:​典范条目物种微格式条目含有拉丁語的條目含有英語的條目包含医学声明的条目

本页面最后修订于2024年2月9日 (星期五) 01:52。

本站的全部文字在知识共享 署名-相同方式共享 4.0协议之条款下提供,附加条款亦可能应用。(请参阅使用条款)

Wikipedia®和维基百科标志是维基媒体基金会的注册商标;维基™是维基媒体基金会的商标。

维基媒体基金会是按美国国內稅收法501(c)(3)登记的非营利慈善机构。

隐私政策

关于维基百科

免责声明

行为准则

开发者

统计

Cookie声明

手机版视图

开关有限宽度模式

白色念珠菌 - 搜狗百科

菌 - 搜狗百科白色念珠菌(Canidia Albicans,又称白假丝酵母菌、白色念球菌)是一种真菌,通常存在于正常人口腔、上呼吸道、肠道及阴道[1],一般在正常机体中数量少,不引起疾病。 白色念珠菌在机体免疫功能、一般防御力下降或正常菌群相互制约作用失调时,才会大量繁殖并改变生长形式(芽生菌丝相)侵入细胞引起疾病。网页微信知乎图片视频医疗汉语问问百科更多»登录帮助首页任务任务中心公益百科积分商城个人中心白色念珠菌编辑词条添加义项同义词收藏分享分享到QQ空间新浪微博白色念珠菌(Canidia Albicans,又称白假丝酵母菌、白色念球菌)是一种真菌,通常存在于正常人口腔、上呼吸道、肠道及阴道[1],一般在正常机体中数量少,不引起疾病。白色念珠菌在机体免疫功能、一般防御力下降或正常菌群相互制约作用失调时,才会大量繁殖并改变生长形式(芽生菌丝相)侵入细胞引起疾病。别称白假丝酵母菌、白色念球菌展开外文名Monilia albican展开存在部位正常人口腔、上呼吸道、肠道及阴道展开特征细胞呈圆形或卵圆形、很象酵母菌展开繁殖方式出芽方式繁殖展开生长适宜环境pH值为5.5展开界真菌界展开分布区域正常人口腔、上呼吸道、肠道及阴道展开中文名白色念珠菌展开类型真菌展开直径3~6μm展开种类81个种展开引起疾病皮肤念珠菌病、粘膜念珠菌病、内脏及中枢神经念珠菌病展开拉丁学名Candida albicans展开门真菌门展开展开参考资料:1. 白色念珠菌是什么有来医生[引用日期2021-12-09]2. 王桂琴、强华.《医学微生物学》.中国医药科技出版社.2016.3. 王桂琴、强华.《医学微生物学》.中国医药科技出版社.2016.4. 沈守荣、金龙玉.《常见病处方速查手册》.湖南科学技术出版社.2014.词条标签:真菌微生物免责声明搜狗百科词条内容由用户共同创建和维护,不代表搜狗百科立场。如果您需要医学、法律、投资理财等专业领域的建议,我们强烈建议您独自对内容的可信性进行评估,并咨询相关专业人士。词条信息词条浏览:360586次最近更新:23.05.23编辑次数:36次创建者:可凡突出贡献者:新手指引了解百科编辑规范用户体系商城兑换问题解答关于审核关于编辑关于创建常见问题意见反馈及投诉举报与质疑举报非法用户未通过申诉反馈侵权信息对外合作邮件合作任务领取官方微博微信公众号搜索词条编辑词条 收藏 查看我的收藏分享分享到QQ空间新浪微博投诉登录企业推广免责声明用户协议隐私政策编辑帮助意见反馈及投诉© SOGOU.COM 京ICP备11001839号-1 京公网安备110000020000